Том 92, № 4 (2023)
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
PALUDISPHAERA MUCOSA SP. NOV., новый планктомицет семейства ISOSPHAERACEAE из бореального низинного болота
Аннотация
Планктомицеты являются типичными обитателями северных болотных экосистем. В настоящей работе новый планктомицет рода Paludisphaera, штамм Pla2T, был выделен из низинного болота бореальной зоны России. Изолят был представлен розово-пигментированными, одиночными или собранными в небольшие группы неподвижными сферическими клетками, размножающимися почкованием. Штамм Pla2T являлся хемоорганотрофным психротолерантным мезофилом с оптимумом роста при pH 5.5‒6 и температуре 15‒20°C. Предпочтительными ростовыми субстратами нового планктомицета являлись полисахариды ксилан, ксантановая камедь и фитагель, а также некоторые сахара. Наиболее высокое сходство последовательности гена 16S рРНК штамма Pla2T (97.9%) наблюдалось с последовательностью планктомицета “Paludisphaera soli” JC670Т, выделенного из почвы высокогорья Гималаев. С другими представителями рода Paludisphaera, “P. rhizosphae-rae” JC665Т и P. borealis PX4Т, это сходство составляло 97.0 и 93.8% соответственно. Геном штамма Pla2T, размером 8.21 млн п.о., содержал около 6.5 тыс. белок-кодирующих генов и 3 копии оперона рРНК. Содержание пар Г + Ц в ДНК составляло 67 мол. %. Сходство нуклеотидных последовательностей генома штамма Pla2Т и ранее описанных представителей рода Paludisphaera составило от 79.4 до 82.6%. Эти генотипические отличия, а также ряд фенотипических особенностей позволили отнести планктомицет из низинного болота к новому виду рода Paludisphaera, Paludisphaera mucosa sp. nov. с типовым штаммом Pla2T (=KCTC92668T = VKM B-3698T).
DESULFOBOTULUS PELOPHILUS SP. NOV. – алкалифильная сульфатвосстанавливающая бактерия из наземного грязевого вулкана
Аннотация
Алкалифильная сульфатвосстанавливающая анаэробная бактерия (штамм Н1T) была выделена из наземного грязевого вулкана Таманского полуострова. Клетки изолята представляют собой грамотрицательные подвижные вибрионы толщиной 1 мкм и длиной 2.0–2.5 мкм. Штамм Н1T растет при температуре 14–42°C (оптимум 37°C), pH 8.5–10.5 (оптимум 9.5) и концентрации NaCl 0.5–6% (вес/об.) (оптимум 0.5–1.5%); использует пируват, лактат, бутират, капроат, каприлат и пеларгонат в качестве донора электронов и элементную серу, сульфит и сульфат в качестве акцептора электронов. Сбраживает пируват и лактат. Не способен к росту в присутствии кислорода. Штамм H1T не использует тиосульфат, ДМСО, фумарат, нитрат, нитрит, арсенат, селенит и Fe(III) в качестве акцептора электронов, не диспропорционирует элементную серу, тиосульфат и сульфит и не сбраживает глюкозу, фруктозу, сахарозу, трегалозу, галактозу, ксилозу, фумарат, цитрат, дрожжевой экстракт и пептон. В жирнокислотном составе клеток преобладают C20:0 (54.2%), C22:0 (24.6%) и C18:0 (11.1%). Геном штамма Н1T имеет размер 3.66 Мп и содержание Г + Ц 51.1%. В геноме содержатся гены, кодирующие ферменты диссимиляционной сульфатредукции и β-окисления жирных кислот. По результатам анализа гена 16S рРНК ближайшим родственным микроорганизмом штамма Н1Т является Desulfobotulus mexicanus (98.3% сходства). На основании фенотипических характеристик и данных филогенетического анализа предлагается отнести данный изолят к новому виду рода Desulfobotulus, как Desulfobotulus pelophilus sp. nov. с типовым штаммом H1T (=DSM 112796T = VKM B-3697Т =UQM 41590T).
Роль структурных и регуляторных генов, кодирующих белки теплового шока, в синтезе биоcурфактантов бактериями Rhodococcus pyridinivorans 5Ap
Аннотация
В результате проведенного исследования впервые установлена роль структурных groESL, dnaJ и регуляторного генов hrcA, кодирующих синтез белков теплового шока, в синтезе биосурфактантов бактериями R. pyridinivorans 5Ар. Для регуляторного белка, кодируемого геном hrcA, сайты связывания CIRCE выявлены в промоторных участках генов groESL, groEL2 и fmdB. Установлено, что по сравнению с температурой 28°С в поздней логарифмической фазе роста в среде с гексадеканом при 42°С экспрессия генов groESL и groEL2 возрастала в 4.4 и в 5.3 раза соответственно. В то же время при разных температурных режимах (28 и 42°С) изменение экспрессии генов hrcA и fmdB не регистрировали. В отсутствии негативного регулятора HrcA увеличивалась экспрессия генов groESL в 14.4 и 3.5 раза, гена groEL2 – в 9.6 и 2.7 раза и гена fmdB – в 1.82 и 2.52 раза при температуре 28 и 42°С соответственно. Продукты генов dnaJ и hrcA необходимы для синтеза трегалолипидов при разных температурных режимах, причем их роль возрастала при повышенной температуре (у мутанта с нарушенным геном dnaJ синтез трегалолипидов при температуре 28 и 42°С снижался в 1.8 и в 2.5 раз соответственно, а у мутанта с нарушенным геном hrcA – в 1.5 и в 6.6 раз соответственно). В то же время эмульгирующая активность не изменялась у всех мутантных вариантов при 28°С и уменьшалась при температуре 42°С в 1.4 и 1.9 раз, соответственно, у мутантов с нарушенным геном groESL и hrcA. Полученные результаты свидетельствуют о сложной химической природе биоПАВ, продуцируемых бактериями R. pyridinivorans 5Ар (эмульгаторы, включающие трегалолипиды и соединения иного химического состава). В синтезе этих соединений при разных температурных режимах ключевую роль играют шапероны Gro и регуляторный белок HrcA, тогда как продукт гена dnaJ необходим только для синтеза трегалолипидов.
Влияние гормонов и биогенных аминов на рост и выживание ENTEROCOCCUS DURANS
Аннотация
Молочнокислые бактерии (МКБ) являются важной составляющей микробиома человека. Они могут синтезировать и реагировать на сигналы гуморальной системы регуляции человека (гормоны, нейромедиаторы), однако феноменология и механизмы отклика МКБ на эти медиаторы исследованы недостаточно. В работе показано, что эстроген замедляет рост и развитие E. durans, норадреналин, эстроген, мозговой натрийуретический пептид дозозависимо продлевают стационарную фазу роста культуры. Сердечный натрийуретический пептид и эстроген стимулируют развитие биопленок культуры E. durans, что отмечено впервые. Частота образования персистеров зависит от типа роста бактерий – планктонного или биопленочного, и более выражена при биопленочном росте. Адреналин и норадреналин дозозависимо стимулировали, а остальные гормоны ингибировали образование персистеров в жидких культурах МКБ. В биопленках действие на образование персистеров имело иной характер: натрийуретические пептиды дозозависимо стимулировали образование персистеров, существенного ингибирования не оказывал ни один из гормонов. Клетки-персистеры E. durans через несколько месяцев инкубации созревали в термотолерантные анабиотические формы покоя, характеризующиеся типичными ультраструктурными особенностями. Впервые показано, что популяция покоящихся форм E. durans включает формы, различающиеся глубиной покоя, в том числе жизнеспособные, но некультивируемые формы.
Физиологические особенности Saccharomyces cerevisiae при сверхэкспрессии полифосфатазы Pрх1
Аннотация
Экзополифосфатаза Ррх1 дрожжей ‒ конститутивный белок, локализованный преимущественно в цитоплазме. Очищенный фермент гидролизует неорганические полифосфаты с высокой активностью, но у нокаут-мутанта ∆ppx1 Saccharomyces cerevisiae не выявлено изменений в физиологических свойствах. С целью выяснения функций этого фермента мы изучили физиологические особенности штамма Saccharomyces cerevisiae, сверхэкcпрессирующего полифосфатазу Ppx1. При культивировании на среде YPD штамм не проявил особенностей роста по сравнению с родительским штаммом. В клетках S. cerevisiae, сверхэкспрессирующих полифосфатазу Ррх1, в стационарной фазе роста в 9 раз увеличился уровень АТФ, значительно снизилась активность вакуолярной АТФазы, увеличилась чувствительность к перекиси по сравнению с родительским штаммом. Уровень АФК при этом был почти вдвое выше, чем у родительского штамма, по степени окисленности липидов различий не наблюдали. Cверхэкспрессия Рpx1 в использованных условиях культивирования не повлияла на уровень полифосфатов, поэтому эти полимеры не являются регуляторами вышеописанных изменений. Известно, что реакции на окислительный стресс и активность вакуолярной АТФазы у дрожжей регулируются цАМФ, а Ррх1 способна к гидролизу этого сигнального соединения. Мы предполагаем, что одной из функция Ррх1 в клетках дрожжей является участие в регуляции уровня цАМФ. В связи с тем, что сверхэкcпрессирующий Ррх1 штамм не отличался от родительского по содержанию неорганических полифосфатов, предположено, что наблюдаемые изменения обусловлены влиянием этого фермента на уровень цАМФ, который является его субстратом.
Биоразнообразие и метаболические особенности бактериальных сообществ пищеварительной системы двустворчатого моллюска CRENOMYTILUS GRAYANUS
Аннотация
Впервые проведен анализ по изучению биоразнообразия бактериальных сообществ пищеварительной системы мидии Грея из прибрежных вод Японского моря с хроническим антропогенным загрязнением на основе метабаркодинга. В микробиоте гидробионтов, помимо типичных морских бактерий, были обнаружены представители таксонов, характерных для местообитаний, загрязненных нефтью (Rhodobacteraceae, Corynebacteriaceae), тяжелыми металлами (Asinibacterium) и неочищенными коммунально-бытовыми стоками (Cloacibacterium, Globicatella). В ходе исследований получена и таксономически охарактеризована коллекция из 411 штаммов культивируемых гетеротрофных бактерий. Показано, что кишечный микробиом моллюсков характеризуется уникальным таксономическим составом в зависимости от района обитания животных. Изучена способность штаммов бактерий, выделенных из пищеварительной системы мидии Грея, разлагать различные питательные субстраты (сахара, аминокислоты, полисахариды) и ксенобиотики (нефтяные углеводороды, бисфенол А, атразин). Большинство полученных изолятов были способны к расщеплению широкого спектра органических субстратов, 13% (54 штамма) окисляли углеводороды нефти, 1% (4 штамма) – бисфенол А и 0.5% (2 штамма) – атразин. Высказано предположение об участии микробиома мидии Грея в симбионтном пищеварении и детоксикации моллюска.
Анализ ключевых детерминант биодеградации нафталина в клетках бактерий Rhodococcus pyridinivorans 5Ар
Аннотация
В результате исследования установлено, что бактерии Rhodococcus pyridinivorans 5Ар дикого типа являются высокоэффективными деструкторами нафталина и полностью утилизируют данное соединение в концентрации 500 мг/л в течение трех суток, что может быть использовано для очистки загрязненных нафталином водных экосистем. Инактивация генов биодеградации narAa (кодирует большую субъединицу нафталиндиоксигеназы) и narB (кодирует цис-нафталиндигидродиолдегидрогеназу) приводит к потере бактериями R. pyridinivorans 5Ар способности утилизировать нафталин в качестве единственного источника углерода. Это указывает на отсутствие в геноме исследуемых бактерий детерминант, обеспечивающих окисление нафталина по альтернативным путям. Помимо этого, инактивация гена narB приводит к накоплению в культуральной среде полярного окрашенного соединения (вероятно, продукта первичного окисления нафталина).