PRESERVED AMNIOTIC MEMBRANE IN TISSUE-ENGINEERING COMPLEX STRUCTURE OF ANTERIOR EPITHELIAL CORNEAL LAYER

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

Aim. To carry out experiment study of the possibility of cultivation of anterior corneal epithelial cells on the surface of silico-dried plasticized amniotic membrane “Flexamer”. Materials and methods. Histological study of amniotic membrane “Flexamer”, preserved by silico-drying and additionally sterilized by gamma rays, was conducted. The cultivated cells of the anterior corneal epithelium were precipitated on the surface of biomaterial “Flexamer”. Morphological assessment of the quality of fixation and biotoxicity of silico-dried plasticized amniotic membrane “Flexamer” was fulfilled. Results. A typical peculiar feature of biomaterial “Flexamer” is a minimum damage of the structure of epithelial layer, despite obvious cell viability. The studied tissue is also characterized by a good safety of all the rest layers of the amniotic membrane. The cultivated anterior corneal epithelium cells, precipitated on the surface of silico-dried plasticized amniotic membrane “Flexamer”, formed colonies and continued to proliferate. By the days 10-12, the second - third layer of epithelial cells was formed. By this time, the cells acquire a polygonal form and a nuclear-cytoplasmic index, more typical for the corneal epithelium. Conclusions. The conducted experimental study confirms safety of biologically active substances, which are concentrated mostly in the epithelial layer of amnion after its drying over the silica gel. Good fixation of cultivated cells, absence of cytotoxicity allow to make a conclusion about the possibility of applying biomaterial “Flexamer” as a substrate for formation of tissue-engineering complex with use of anterior corneal epithelial cells.

About the authors

E S Milyudin

Самарский государственный медицинский университет, 2Самарская областная офтальмологическая больница им. Т.И. Ерошевского

Email: miljudin@mail.ru
доктор медицинских наук, заместитель директора

K E Kuchuk

Самарский государственный медицинский университет, 2Самарская областная офтальмологическая больница им. Т.И. Ерошевского

врач-офтальмолог, врач-исследователь

O V Bratko

Самарская областная офтальмологическая больница им. Т.И. Ерошевского

кандидат медицинских наук, заведующая отделением

References

  1. Борзенок С.А., Комах Ю.А. Законодательные и нормативно-правовые аспекты в деятельности глазных тканевых банков России. Сб. тез. докл. VIII Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участием «Федоровские чтения - 2009». М. 2009; 535-536.
  2. Васильев А.В., Макаров П.В., Роговая О.С., Гундорова Р.А., Терских В.В. Восстановление дефектов роговицы с помощью тканевой инженерии. Известия Российской академии наук. Серия биологическая 2005; 1: 5-8.
  3. Канюков В.Н., Стадников А.А., Трубина О.М., Яхина О.М. Применение наноструктурированного биопластического материала при травматических повреждениях роговицы. Вестник офтальмологии 2015; 1: 43-49.
  4. Комах Ю.А., Мороз З.И., Борзенок С.А. Современное состояние проблемы повторной пересадки роговицы (обзор литературы). Офтальмохирургия 1997; 1: 19-27.
  5. Макаров П.В., Гундорова Р.А., Чернетский И.С., Оганесян О.Г. Лимбальная трансплантация в хирургической реабилитации пациентов, перенесших тяжелые ожоги глаз. Вестник офтальмологии 2007; 3: 9-12.
  6. Милюдин Е.С. Эффективность использования силиковысушенной амниотической мембраны. Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участием «Новые технологии в лечении заболеваний роговицы». М. 2004; 473-479.
  7. Мороз З.И. Современные направления хирургического лечения патологии роговицы. Съезд офтальмологов России, 9-й: тез. докл. М. 2010; 298-299.
  8. Ходжабекян Г.В. Трансплантация аллогенных культивированных клеток в лечении ожоговых дефектов роговицы в эксперименте: дис.. канд. мед. наук. М. 2003; 192.
  9. Atala A., Lanza R., Thompson J., Nerem R. Principles of regenerative medicine. Academic Press is an imprint of Elsevier. First ed. 2008; 1472.
  10. Dietrich-Ntoukas T., Hofmann-Rummelt C., Kruse F.E., Schlötzer-Schrehardt U. Comparative analysis of the basement membrane composition of the human limbus epithelium and amniotic membrane epithelium. Cornea 2012; 31 (5): 564-569.
  11. Friend J., Kinoshita S., Thoft R.A., Eliason J.A. Corneal epithelial cell cultures on stromal carriers. Investigative Ophthalmology Visual Science 1982; 23: 41-49.
  12. Fukuda K., Chikama T., Nakamura M., Nishida T. Differential distribution of subchains of the basement membrane components type IV collagen and laminin among the amniotic membrane, cornea and conjunctiva. Cornea 1999; 18: 73-79.
  13. Grueterich M., Tseng S.C. Human limbal progenitor cells expanded on intact amniotic membrane ex-vivo. Archives of Ophthalmology 2002; 120: 783-90.
  14. Koizumi N., Inatomi T., Sotozono C., et al. Growth factor mRNA and protein in preserved human amniotic membrane. Current Eye Research 2000; 20: 173-177.
  15. Minami Y., Sugihara H., Oono S. Reconstruction of cornea in three-dimensional collagen gel matrix culture. Investigative Ophthalmology Visual Science 1993; 34: 2316-2324.
  16. Wilson S.E., Liu J.J., Mohan R.R. Stromal epithelial interactions in the cornea. Progress in Retinal and Eye Research 1999; 18: 239-309.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2016 Milyudin E.S., Kuchuk K.E., Bratko O.V.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-ShareAlike 4.0 International License.
 


Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).