КОНСЕРВИРОВАННАЯ АМНИОТИЧЕСКАЯ МЕМБРАНА В СТРУКТУРЕ ТКАНЕИНЖЕНЕРНОГО КОМПЛЕКСА ПЕРЕДНЕГО ЭПИТЕЛИАЛЬНОГО СЛОЯ РОГОВИЦЫ

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель. В эксперименте изучить возможность культивирования на поверхности силиковысушенной пластифицированной амниотической мембраны «Флексамер» клеток переднего эпителия роговицы. Материалы и методы. Выполнено гистологическое исследование консервированной силиковысушиванием и дополнительно подвергнутой стерилизации гамма-лучами амниотической мембраны «Флексамер». Культивированные клетки переднего роговичного эпителия осаждались на поверхность биоматериала «Флексамер». Была выполнена морфологическая оценка качества фиксации и биотоксичности силиковысушенной пластифицированной амниотической мембраны «Флексамер». Результаты. Характерной особенностью биоматериала «Флексамер» является минимальное повреждение структуры эпителиального слоя, несмотря на явную нежизнеспособность клеток. Кроме того, для исследуемой ткани характерна хорошая сохранность всех остальных слоев амниотической мембраны. Культивированные клетки переднего эпителия роговицы, осажденные на поверхности силиковысушенной пластифицированной амниотической мембраны «Флексамер», образовывали колонии и продолжали пролиферировать. К 10-12-м суткам формировался 2-3-й слой эпителиальных клеток. К данному сроку клетки приобретали многоугольную форму и более типичный для роговичного эпителия ядерно-цитоплазменный индекс. Выводы. Выполненное экспериментальное исследование подтверждает сохранность биологически активных веществ, находящихся большей частью в эпителиальном слое амниона после его высушивания над силикагелем. Хорошая фиксация культивированных клеток, отсутствие цитотоксичности позволяют сделать заключение о возможности применения биоматериала «Флексамер» в качестве подложки при создании тканеинженерного комплекса с использованием клеток переднего эпителия роговицы.

Об авторах

Евгений Сергеевич Милюдин

Самарский государственный медицинский университет, 2Самарская областная офтальмологическая больница им. Т.И. Ерошевского

Email: miljudin@mail.ru
доктор медицинских наук, заместитель директора

Ксения Евгеньевна Кучук

Самарский государственный медицинский университет, 2Самарская областная офтальмологическая больница им. Т.И. Ерошевского

врач-офтальмолог, врач-исследователь

Ольга Владимировна Братко

Самарская областная офтальмологическая больница им. Т.И. Ерошевского

кандидат медицинских наук, заведующая отделением

Список литературы

  1. Борзенок С.А., Комах Ю.А. Законодательные и нормативно-правовые аспекты в деятельности глазных тканевых банков России. Сб. тез. докл. VIII Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участием «Федоровские чтения - 2009». М. 2009; 535-536.
  2. Васильев А.В., Макаров П.В., Роговая О.С., Гундорова Р.А., Терских В.В. Восстановление дефектов роговицы с помощью тканевой инженерии. Известия Российской академии наук. Серия биологическая 2005; 1: 5-8.
  3. Канюков В.Н., Стадников А.А., Трубина О.М., Яхина О.М. Применение наноструктурированного биопластического материала при травматических повреждениях роговицы. Вестник офтальмологии 2015; 1: 43-49.
  4. Комах Ю.А., Мороз З.И., Борзенок С.А. Современное состояние проблемы повторной пересадки роговицы (обзор литературы). Офтальмохирургия 1997; 1: 19-27.
  5. Макаров П.В., Гундорова Р.А., Чернетский И.С., Оганесян О.Г. Лимбальная трансплантация в хирургической реабилитации пациентов, перенесших тяжелые ожоги глаз. Вестник офтальмологии 2007; 3: 9-12.
  6. Милюдин Е.С. Эффективность использования силиковысушенной амниотической мембраны. Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участием «Новые технологии в лечении заболеваний роговицы». М. 2004; 473-479.
  7. Мороз З.И. Современные направления хирургического лечения патологии роговицы. Съезд офтальмологов России, 9-й: тез. докл. М. 2010; 298-299.
  8. Ходжабекян Г.В. Трансплантация аллогенных культивированных клеток в лечении ожоговых дефектов роговицы в эксперименте: дис.. канд. мед. наук. М. 2003; 192.
  9. Atala A., Lanza R., Thompson J., Nerem R. Principles of regenerative medicine. Academic Press is an imprint of Elsevier. First ed. 2008; 1472.
  10. Dietrich-Ntoukas T., Hofmann-Rummelt C., Kruse F.E., Schlötzer-Schrehardt U. Comparative analysis of the basement membrane composition of the human limbus epithelium and amniotic membrane epithelium. Cornea 2012; 31 (5): 564-569.
  11. Friend J., Kinoshita S., Thoft R.A., Eliason J.A. Corneal epithelial cell cultures on stromal carriers. Investigative Ophthalmology Visual Science 1982; 23: 41-49.
  12. Fukuda K., Chikama T., Nakamura M., Nishida T. Differential distribution of subchains of the basement membrane components type IV collagen and laminin among the amniotic membrane, cornea and conjunctiva. Cornea 1999; 18: 73-79.
  13. Grueterich M., Tseng S.C. Human limbal progenitor cells expanded on intact amniotic membrane ex-vivo. Archives of Ophthalmology 2002; 120: 783-90.
  14. Koizumi N., Inatomi T., Sotozono C., et al. Growth factor mRNA and protein in preserved human amniotic membrane. Current Eye Research 2000; 20: 173-177.
  15. Minami Y., Sugihara H., Oono S. Reconstruction of cornea in three-dimensional collagen gel matrix culture. Investigative Ophthalmology Visual Science 1993; 34: 2316-2324.
  16. Wilson S.E., Liu J.J., Mohan R.R. Stromal epithelial interactions in the cornea. Progress in Retinal and Eye Research 1999; 18: 239-309.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Милюдин Е.С., Кучук К.Е., Братко О.В., 2016

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-ShareAlike 4.0 International License.
 


Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).