Влияние природы растворителя на биологическую активность золотосодержащих систем

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Методом металло-парового синтеза с использованием изопропанола, ацетона или толуола в качестве дисперсионной среды получены наночастицы золота. Изучено электронное состояние металла и природа сорбированного слоя на поверхности наночастиц. Анализ фотоэлектронных спектров полученных наночастиц показал, что, независимо от условий синтеза, золото во всех образцах находится в состояниях Au0, Au+ и Au3+ и на всех типах металлических частиц присутствует углеродосодержащая оболочка. Исследование противораковой активности наночастиц in vitro в отношении ряда клеточных линий человека показало зависимость биологической активности от времени взаимодействия образцов, полученных в дисперсионной среде толуола. Метаболическая активность наночастиц золота, полученных в среде изопропанола или ацетона, снижалась в самом раннем периоде тестирования.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. А. Воронова

Институт элементоорганических соединений им. А.Н. Несмеянова Российской академии наук

Email: alexandervasilkov@yandex.ru
Россия, 119334 Москва

А. В. Наумкин

Институт элементоорганических соединений им. А.Н. Несмеянова Российской академии наук

Email: alexandervasilkov@yandex.ru
Россия, 119334 Москва

А. Ю. Переяславцев

Всероссийский научно-исследовательский институт автоматики им. Н.Л. Духова

Email: alexandervasilkov@yandex.ru
Россия, 127030 Москва

Ц. Бацалова

Пловдивский университет имени Паисия Хилендарского

Email: alexandervasilkov@yandex.ru

Faculty of Biology

Болгария, 4000 Пловдив

Б. Джамбазов

Пловдивский университет имени Паисия Хилендарского

Email: alexandervasilkov@yandex.ru

Faculty of Biology

Болгария, 4000 Пловдив

А. Ю. Васильков

Институт элементоорганических соединений им. А.Н. Несмеянова Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: alexandervasilkov@yandex.ru
Россия, 119334 Москва

Список литературы

  1. Mioc A., Mioc M., Ghiulai R., Voicu M., Racoviceanu R., Trandafirescu C., Dehelean C., Coricovac D., Soica C. // Curr. Med. Chem. 2019. V. 26. № 35. P. 6493–6513. https://doi .org/10.2174/0929867326666190506123721
  2. Riley R.S., Day E.S. // Wiley Interdiscip. Rev. Nanomed. Nanobiotechnol. 2017. V. 9. № 4. P. e1449. https://doi .org/10.1002/wnan.1449
  3. Penders J., Stolzoff M., Hickey D.J., Andersson M., Webster T.J. // Int. J. Nanomedicine. 2017. V. 12. P. 2457–2468. https://doi .org/10.2147/IJN.S124442
  4. Zhang J., Mou L., Jiang X. // Chem. Sci. 2020. V. 11. № 4. P. 923–936. https://doi .org/10.1039/C9SC06497D
  5. Vigderman L., Zubarev E.R. // Adv. Drug Deliv. Rev. 2013. V. 65. № 5. P. 663–676. https://doi .org/10.1016/j.addr.2012.05.004
  6. Siddique S., Chow J.C.L. // Appl. Sci. 2020. V. 10. № 11. P. 3824–3844. https://doi .org/10.3390/app10113824
  7. Voronova A.A., Naumkin A.V., Vasil’kov A.Yu. // INEOS OPEN. 2022. V. 5. № 3. P. 79–84. https://doi .org/10.32931/io2215a
  8. Wang P., Wang X., Wang L., Hou X., Liu W., Chen C. // Sci. Technol. Adv. Mater. 2015. V. 16. № 3. P. 034610. https://doi .org/10.1088/1468-6996/16/3/034610
  9. Srijampa S., Buddhisa S., Ngernpimai S., Leelayuwat C., Proungvitaya S., Chompoosor A., Tippayawat P. // Bioconjugate Chem. 2020. V. 31. № 4. P. 1133–1143. https://doi .org/10.1021/acs.bioconjchem.9b00847
  10. Schaeublin N.M., Braydich-Stolle L.K., Schrand A.M., Miller J.M., Hutchison J., Schlager J.J., Hussain, S.M. // Nanoscale. 2011. V. 3. № 2. P. 410–420. https://doi .org/10.1039/C0NR00478B
  11. Zhang R., Kiessling F., Lammers T., Pallares R.M. // Drug Deliv. Transl. Res. 2023. V. 13. № 2. P. 378–385. https://doi .org/10.1007/s13346-022-01232-4
  12. Vasil’kov A., Tseomashko N., Tretyakova A., Abidova A., Butenko I., Pereyaslavtsev A., Arkharova N., Volkov V., Shtykova E. // Coatings. 2023. V. 13. № 8. P. 1315. https://doi .org/10.3390/coatings13081315
  13. Rubina M.S., Pigaleva M.A., Butenko I.E., Budnikov A.V., Naumkin A.V., Gromovykh T.I., Lutsenko S.V., Vasil’kov A.Yu. // Dokl. Phys. Chem. 2019. V. 488. P. 146–150. https://doi .org/10.1134/S0012501619100026
  14. Vasil’kov A., Migulin D., Naumkin A., Volkov I., Butenko I., Golub A., Sadykova V., Muzafarov A. // Pharmaceutics. 2023. V. 15. № 3. P. 809. https://doi .org/10.3390/pharmaceutics15030809
  15. Vasil’kov A., Voronova A., Batsalova T., Moten D., Naumkin A., Shtykova E., Volkov V., Teneva I., Dzhambazov B. // Materials. 2023. V. 16. № 8. P. 3238. https://doi .org/10.3390/ma16083238
  16. Davis S.C., Klabunde K.J. // J. Am. Chem. Soc. 1978. V. 100. № 18. P. 5973–5974. https://doi .org/10.1021/Ja00486A076
  17. Davis S.C., Severson S.J., Klabunde K.J. //J. Am. Chem. Soc. 1981. V. 103. № 11. P 3024–3029. https://doi .org/10.1021/Ja00401A019.
  18. Beamson G., Briggs D. High resolution XPS of Organic Polymers. Chichester, Wiley, 1992. 295 p.
  19. Casaletto M.P., Longo A., Martorana A., Prestianni A., Venezia A.M. // Surf. Interface Anal. 2006. V. 38. № 4. P. 215–218. https://doi .org/10.1002/sia.2180
  20. Pireaux J.J., Chtaïb M., Delrue J.P., Thiry P.A., Liehr M., Caudano R. // Surf. Sci. 1984. V. 1. № 141. P. 211–220. https://doi .org/10.1016/0039-6028(84)90206-1
  21. Pireaux J.J., Liehr M., Thiry P.A., Delrue J.P., Caudano R. // Surf. Sci. 1984. V. 1. № 141. P. 221–232. https://doi .org/10.1016/0039-6028(84)90207-3
  22. Peters S., Peredkov S., Neeb M., Eberhardt W., Al-Hada M. // Surf. Sci. 2013. V. 608. P. 129–134. https://doi .org/10.1016/j.susc.2012.09.024
  23. Koslowski B., Boyen H.G., Wilderotter C., Kästle G., Ziemann P., Wahrenberg R., Oelhafen P. // Surf. Sci. 2001. V. 475. №1–3. P. 1–10. https://doi .org/10.1016/S0039-6028(00)00986-9
  24. Tsai H., Hu E., Perng K., Chen M., Wu J.C., Chang Y.S. // Surf. Sci. 2003. V. 537. № 1–3. P. L447–L450. https://doi .org/10.1016/S0039-6028(03)00640-X
  25. Xiong P., Huang X., Ye N., Lu Q., Zhang G., Peng S., Wang H., Liu Y. // Adv. Sci. 2022. V. 9. № 16. P. 2106049. https://doi .org/10.1002/advs.202106049
  26. Repetto G., Del Peso A., Zurita J.L. // Nat. Protoc. 2008. V. 3. № 7. P. 1125–1131. https://doi .org/10.1038/nprot.2008.75

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Микрофотографии образца AuIs: ПЭМ высокого разрешения (а), электронная дифракционная картина ПЭМ вы- сокого разрешения (б) и СЭМ (в).

Скачать (411KB)
Метаданные
3. Рис. 2. СЭМ-изображение морфологии наночастиц AuAc (a) и их элементных отображений: C (б), O (в) и Au (г).

Скачать (1MB)
Метаданные
4. Рис. 3. Энергодисперсионный рентгеновский спектр образца АuAc: C, 56.6 aт. %; О, 43.3 aт. %; Au, 0.1 aт. %.

Скачать (113KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Фотоэлектронные спектры C 1s образцов AuIs (а), AuAc (б), AuTol (в) и Au 4f всех исследуемых образцов (г).

Скачать (750KB)
Метаданные
6. Рис. 5. Оценка цитотоксичности наночастиц золота in vitro в зависимости от времени инкубирования. Ингибирование кле- точной метаболической активности, определенное с помощью МТТ-теста с клетками A549 (a), FL (в), HeLa (д) и HT-29 (ж). Результаты теста на НК для клеток A549 (б), FL (г), HeLa (е) и HT-29 (з). Клетки культивировали в среде, содержащей 200 мкг мл–1 AuIs, AuAc или AuTol в течение 24, 48, 72, 96 и 120 ч. Все образцы были проанализированы трижды.

Скачать (854KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах