Modern trends in the use of pesticides and methods for their determination in agricultural products

Capa

Citar

Texto integral

Acesso aberto Acesso aberto
Acesso é fechado Acesso está concedido
Acesso é fechado Somente assinantes

Resumo

Many active substances of pesticides are dangerous toxicants that can disrupt the stability of natural and agricultural ecosystems and cause irreversible harm to human health when ingested. In addition, from several units to several dozens of new active substances of pesticides and products based on them are developed annually. This determines the critical need to control their use and content in environmental objects, especially in agricultural products. The development of modern chemical analytical methods helps to increase the effectiveness of such control. Improving the methods of extracting pesticides from extremely complex matrices of soils and agricultural products can significantly speed up and reduce the cost of conducting a single analysis, and improving analytical equipment allows to determine the picogram contents of target pesticides or conduct monitoring studies of samples to identify pollutants.

Texto integral

Acesso é fechado

Sobre autores

A. Bragin

Kuban State Agrarian University named after I.T. Trubilin

Autor responsável pela correspondência
Email: Bunss16@yandex.ru

Laboratory of Physico-chemical Analysis, Department for the Implementation of the Project “Innovative feed and feed additives”

Rússia, ul. Kalinina 13, Krasnodar 350044

A. Bazyk

Kuban State Agrarian University named after I.T. Trubilin

Email: Bunss16@yandex.ru

Department of Biochemistry, Biophysics and Biotechnology, Faculty of Animal Science

Rússia, ul. Kalinina 13, Krasnodar 350044

N. Pavlova

Kuban State Agrarian University named after I.T. Trubilin

Email: Bunss16@yandex.ru

Laboratory of Physico-chemical Analysis, Department for the Implementation of the Project “Innovative feed and feed additives”

Rússia, ul. Kalinina 13, Krasnodar 350044

Bibliografia

  1. О безопасном обращении с пестицидами и агрохимикатами: Федеральный закон № 109-ФЗ (редакция от 10 июня 2023 г.) [принят Государственной думой 19 июля 1997 г. // СПС КонсультантПлюс. Режим доступа: локальный, по договору. Обновление еженедельно.
  2. Продовольственная и сельскохозяйственная организации Объединенных Наций [официальный сайт]. Рим. URL: https://www.fao.org/home/ru (дата обращения: 10.10.2023).
  3. Всемирная организация здравоохранения: [официальный сайт]. Женева. URL: https://www.who.int/ru (дата обращения: 17.11.2023).
  4. Andreu V., Picó Y. Determination of pesticides and their degradation products in soil: critical review and comparison of methods // TrAC Trend. Analyt. Chem. 2004. V. 23. № 10–11. P. 772–789.
  5. Единая межведомственная информационно-статистическая система (ЕМИСС): [официальный сайт]. Москва. URL: https://fedstat.ru/indicator/40540 (дата обращения: 23.11.2023).
  6. Захаренко В.А. Особенности развития рынка пестицидов в России // Защита и карантин раст. 2020. № 2. С. 34–36.
  7. Зинченко В.А. Химическая защита растений: средства, технология и экологическая безопасность. М.: КолосС, 2012. 127 с.
  8. Damak M., Hyder M.N., Varanasi K.K. Enhancing droplet deposition through in-situ precipitation // Nat. Commun. 2016. V. 7. № 1. P. 125–130.
  9. Xiang Y. Controlling pesticide loss through nanonetworks // ACS Sust. Chem. Engin. 2014. V. 2. № 4. P. 918–924.
  10. Su H. Tackling pesticide overusing through foliar deposition and retention: Frontiers and challenges //Adv. Agrochem. 2023. V. 2. № 4. P. 298–305.
  11. Specht W., Pelz S., Gilsbach W. Gas-chromatographic determination of pesticide residues after clean-up by gel-permeation chromatography and mini-silica gel-column chromatography: 6. Communication: Replacement of dichloromethane by ethyl acetate/cyclohexane in liquid-liquid partition and simplified conditions for extraction and liquid-liquid partition // Fresen. J. Analyt. Chem. 1995. V. 353. P. 183–190.
  12. Sannino A., Bolzoni L., Bandini M. Application of liquid chromatography with electrospray tandem mass spectrometry to the determination of a new generation of pesticides in processed fruits and vegetables // J. Chromatograp. 2004. V. 1036. № 2. P. 161–169.
  13. Li Y., Yuan T. Detection of pyrethroid pesticide residues in concentrate juice // Chin. J. Health Lab. Technol. 2008. V. 18. P. 1774–1775.
  14. Cabras P. Fenhexamid residues in grapes and wine // Food Addit. Contam. 2001. V. 18. № 7. P. 625–629.
  15. Rezaee M. Determination of organic compounds in water using dispersive liquid-liquid microextraction // J. Chromatograp. 2006. V. 1116. №. 1–2. P. 1–9.
  16. Min Shin J. Comparison of QuEChERS and Liquid-Liquid extraction methods for the simultaneous analysis of pesticide residues using LC-MS/MS // Food Control. 2022. V. 141. P. 109202.
  17. Дмитриенко С.Г. Дисперсионная жидкостно-жидкостная микроэкстракция органических соединений // Журн. аналит. хим. 2020. Т. 75. № 10. С. 867–884.
  18. Regueiro J. Ultrasound-assisted emulsification-microextraction of emergent contaminants and pesticides in environmental waters // J. Chromatograp. 2008. V. 1190. № 1–2. P. 27–38.
  19. Seebunrueng K., Santaladchaiyakit Y., Srijaranai S. Vortex-assisted low density solvent based demulsified dispersive liquid-liquid microextraction and high-performance liquid chromatography for the determination of organophosphorus pesticides in water samples // Chemosphere. 2014. V. 103. P. 51–58.
  20. Zhou Q. Ultrasound-enhanced air-assisted liquid-liquid microextraction for the UPLC determination of organophosphorus pesticides in river water // Microchem. J. 2022. V. 183. P. 108046.
  21. Torbati M. Development of microwave-assisted liquid-liquid extraction combined with lighter than water in syringe dispersive liquid-liquid microextraction using deep eutectic solvents: Application in extraction of some herbicides from wheat // Microchem. J. 2019. V. 147. P. 1103–1108.
  22. Ya-Li W. Benzyl functionalized ionic liquid as new extraction solvent of dispersive liquid-liquid microextraction for enrichment of organophosphorus pesticides and aromatic compounds // Chin. J. Analyt. Chem. 2016. V. 44. № 6. P. 942–949.
  23. Caldas S.S. Multi-residue method for determination of 58 pesticides, pharmaceuticals and personal care products in water using solvent demulsification dispersive liquid-liquid microextraction combined with liquid chromatography-tandem mass spectrometry // Talanta. 2016. V. 146. P. 676–688.
  24. Jeannot M.A., Cantwell F.F. Mass transfer characteristics of solvent extraction into a single drop at the tip of a syringe needle // Analyt. Chem. 1997. V. 69. № 2. P. 235–239.
  25. Amvrazi E.G., Tsiropoulos N.G. Application of single-drop microextraction coupled with gas chromatography for the determination of multiclass pesticides in vegetables with nitrogen phosphorus and electron capture detection // J. Chromatograp. 2009. V. 1216. № 14. P. 2789–2797.
  26. Tang S. Single-drop microextraction // TrAC Trend. Analyt. Chem. 2018. V. 108. P. 306–313.
  27. Zhang M. Mixed liquids for single-drop microextraction of organochlorine pesticides in vegetables // Talanta. 2008. V. 74. № 4. P. 599–604.
  28. Wu L. Dynamic microwave-assisted extraction online coupled with single drop microextraction of organophosphorus pesticides in tea samples // J. Chromatograp. 2015. V. 1407. P. 42–51.
  29. Farina Y. Determination of pesticide residues in leafy vegetables at parts per billion levels by a chemometric study using GC-ECD in Cameron Highlands, Malaysia // Food Chem. 2017. V. 224. P. 55–61.
  30. Katsumata H. Preconcentration of diazinon using multiwalled carbon nanotubes as solid-phase extraction adsorbents // Microchem. J. 2008. V. 88. № 1. P. 82–86.
  31. Liu Y. Magnetic porous carbon derived from a bimetallic metal-organic framework for magnetic solid-phase extraction of organochlorine pesticides from drinking and environmental water samples // J. Chromatograp. 2017. V. 1479. P. 55–61.
  32. Barker S.A., Long A.R., Short C.R. Isolation of drug residues from tissues by solid phase dispersion // J. Chromatograp. 1989. V. 475. № 2. P. 353–361.
  33. Wang Y., Xiao L., Cheng M. Determination of phenylureas herbicides in food stuffs based on matrix solid-phase dispersion extraction and capillary electrophoresis with electrochemiluminescence detection // J. Chromatograp. 2011. V. 1218. № 50. P. 9115–9119.
  34. Hu Y. Simultaneous determination of phenylurea herbicides in yam by capillary electrophoresis with electrochemiluminescence detection // J. Chromatograp. 2015. V. 986. P. 143–148.
  35. Schenck F.J., Wagner R. Screening procedure for organochlorine and organophosphorus pesticide residues in milk using matrix solid phase dispersion (MSPD) extraction and gas chromatographic determination // Food Addit. Contam. 1995. V. 12. № 4. P. 535–541.
  36. Arthur C.L., Pawliszyn J. Solid phase microextraction with thermal desorption using fused silica optical fibers // Analyt. Chem. 1990. V. 62. № 19. P. 2145–2148.
  37. Pang L. Trace determination of organophosphate esters in environmental water samples with an ionogel‐based nanoconfined ionic liquid fiber coating for solid‐phase microextraction with gas chromatography and flame photometric detection // J. Separat. Sci. 2016. V. 39. № 22. P. 4415–4421.
  38. Yang Y. An ultrastable 2D covalent organic framework coating for headspace solid-phase microextraction of organochlorine pesticides in environmental water // J. Hazard. Mater. 2023. V. 452. P. 131–148.
  39. Valenzuela E.F. A new carbon nanomaterial solid-phase microextraction to pre-concentrate and extract pesticides in environmental water // Talanta. 2020. V. 217. P. 121–131.
  40. Anastassiades M. Fast and easy multiresidue method employing acetonitrile extraction/partitioning and “dispersive solid-phase extraction” for the determination of pesticide residues in produce // J. AOAC Inter. 2003. V. 86. № 2. P. 412–431.
  41. Han L. Evaluation of a recent product to remove lipids and other matrix co-extractives in the analysis of pesticide residues and environmental contaminants in foods // J. Chromatograp. 2016. V. 1449. P. 17–29.
  42. Tette P.A.S. Multiclass method for pesticides quantification in honey by means of modified QuEChERS and UHPLC-MS/MS // Food Chem. 2016. V. 211. Р. 130–139.
  43. Bernardi G. An effective method for pesticide residues determination in tobacco by GC-MS/MS and UHPLC-MS/MS employing acetonitrile extraction with low-temperature precipitation and d-SPE clean-up // Talanta. 2016. V. 161. Р. 40–47.
  44. Dankyi E. Application of the QuEChERS procedure and LC-MS/MS for the assessment of neonicotinoid insecticide residues in cocoa beans and shells // J. Food Composit. Anal. 2015. V. 44. Р. 149–157.
  45. He Z. Multiresidue analysis of over 200 pesticides in cereals using a QuEChERS and gas chromatography-tandem mass spectrometry-based method // Food Сhem. 2015. V. 169. Р. 372–380.
  46. Golge O., Koluman A., Kabak B. Validation of a modified QuEChERS method for the determination of 167 pesticides in milk and milk products by LC-MS/MS // Food Аnalyt. Method. 2018. V. 11. № 4. Р. 1122–1148.
  47. Zheng W. Development and validation of modified QuEChERS method coupled with LC-MS/MS for simultaneous determination of cymiazole, fipronil, coumaphos, fluvalinate, amitraz, and its metabolite in various types of honey and royal jelly // J. Chromatograp. 2018. V. 1072. Р. 60–69.
  48. Herrmann S.S., Poulsen M.E. Clean-up of cereal extracts for gas chromatography-tandem quadrupole mass spectrometry pesticide residues analysis using primary secondary amine and C18 // J. Chromatograp. 2015. V. 1423. Р. 47–53.
  49. Rejczak T., Tuzimski T. A review of recent developments and trends in the QuEChERS sample preparation approach // Open Chem. 2015. V. 13. № 1. Р. 980–1010.
  50. Vidal J.L.M. Determination of pesticide transformation products: A review of extraction and detection methods // J. Chromatograph. 2009. V. 1216. № 40. Р. 6767–6788.
  51. Andrade G.C.R.M. Liquid chromatography-electrospray ionization tandem mass spectrometry and dynamic multiple reaction monitoring method for determining multiple pesticide residues in tomato // Food Chem. 2015. V. 175. Р. 57–65.
  52. Han Y. Simultaneous determination of 70 pesticide residues in leek, leaf lettuce and garland chrysanthemum using modified QuEChERS method with multi-walled carbon nanotubes as reversed-dispersive solid-phase extraction materials // J. Chromatograp. 2015. V. 1005. Р. 56–64.
  53. Sinha S.N., Vasudev K., Rao M.V.V. Quantification of organophosphate insecticides and herbicides in vegetable samples using the “Quick Easy Cheap Effective Rugged and Safe” (QuEChERS) method and a high-performance liquid chromatography-electrospray ionization-mass spectrometry (LC-MS/MS) technique // Food Chem. 2012. V. 132. № 3. Р. 1574–1584.
  54. Mello D.C. Pesticide residues in dry herbs used for tea preparation by UHPLC-MS/MS: Method validation and analysis // J. Food Composit. Anal. 2024. V. 125. Р. 105–117.
  55. Wu X., Ding Z. Evaluation of matrix effects for pesticide residue analysis by QuEChERs coupled with UHPLC-MS/MS in complex herbal matrix // Food Chem. 2023. V. 405. Р. 134–155.
  56. Morsi R. Detection of 11 carbamate pesticide residues in raw and pasteurized camel milk samples using UHPLC-MS/MS: Method development, method validation, and health risk assessment // J. Dairy Sci. 2023.
  57. Dong Y. Simultaneous detection of pesticides and pharmaceuticals in three types of bio-based fertilizers by an improved QuEChERS method coupled with UHPLC-q-ToF-MS/MS // J. Hazard. Mater. 2023. V. 458. Р. 131–142.
  58. Afify A.M.R. Multiresidue method of analysis for determination of 150 pesticides in grapes using quick and easy method (QuEChERS) and LC-MS/MS determination // J. Food Agric. Environ. 2010. V. 8. № 2. Р. 602–606.
  59. Ghoniem I.R., Attallah E.R., Abo-Aly M.M. Determination of acidic herbicides in fruits and vegetables using liquid chromatography tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) // Inter. J. Environ. Analyt. Chem. 2017. V. 97. № 4. Р. 301–312.
  60. Kostelac D., Anastassiades M. QuEChERS validation method for acidic pesticides. Valenda, Spain: CRL Workshop, 2007. 34 p.
  61. Steinborn A. Development of a QuEChERS-based method for the simultaneous determination of acidic pesticides, their esters, and conjugates following alkaline hydrolysis // J. Agricult. Food Chem. 2017. V. 65. № 6. Р. 1296–1305.
  62. Vázquez P.P. Large multiresidue analysis of pesticides in edible vegetable oils by using efficient solid-phase extraction sorbents based on quick, easy, cheap, effective, rugged and safe methodology followed by gas chromatography-tandem mass spectrometry // J. Chromatograp. 2016. V. 1463. Р. 20–31.
  63. Xu X. Determination of methenamine residues in edible animal tissues by HPLC-MS/MS using a modified QuEChERS method: Validation and pilot survey in actual samples // Food Control. 2016. V. 61. Р. 99–104.
  64. Ferreira J.A. Determination of pesticides in coconut (Cocos nucifera Linn.) water and pulp using modified QuEChERS and LC-MS/MS // Food Chem. 2016. V. 213. Р. 616–624.
  65. He Z. Multiresidue analysis of over 200 pesticides in cereals using a QuEChERS and gas chromatography-tandem mass spectrometry-based method // Food Chem. 2015. V. 169. Р. 372–380.
  66. Lee Y.J. Detection of three herbicide, and one metabolite, residues in brown rice and rice straw using various versions of the QuEChERS method and liquid chromatography–tandem mass spectrometry // Food Chem. 2016. V. 210. Р. 442–450.
  67. Kardani F. Determination of 323 pesticide residues in Iran’s cereal by GC-MS and HPLC-UV combined with QuEChERS extraction and mixed-mode SPE clean-up method // J. Food Composit. Anal. 2023. V. 124. Р. 105–120.
  68. Fuke C. Analysis of paraquat, diquat and two diquat metabolites in biological materials by high-performance liquid chromatography // Legal Med. 2002. V. 4. № 3. Р. 156–163.
  69. Amini S. PVA/Stevia/MIL-88A@ AuNPs composite nanofibers as a novel sorbent for simultaneous extraction of eight agricultural pesticides in food and vegetable samples followed by HPLC-UV analysis // Food Chem. 2022. V. 386. Р. 132–144.
  70. Ran J. Cucurbit [7] uril as a matrix solid-phase dispersion for the extraction of quaternary ammonium pesticides from vegetables and their determination using HPLC-UV // Food Chem. 2021. V. 350. Р. 129–136.
  71. Heidari H., Razmi H. Multi-response optimization of magnetic solid phase extraction based on carbon coated Fe3O4 nanoparticles using desirability function approach for the determination of the organophosphorus pesticides in aquatic samples by HPLC-UV // Talanta. 2012. V. 99. Р. 13–21.
  72. Rejczak T., Tuzimski T. QuEChERS-based extraction with dispersive solid phase extraction clean-up using PSA and ZrO2-based sorbents for determination of pesticides in bovine milk samples by HPLC-DAD // Food Chem. 2017. V. 217. Р. 225–233.
  73. Yetim N.K. Preparation of AChE immobilized microspheres containing thiophene and furan for the determination of pesticides by the HPLC-DAD method // J. Mol. Struct. 2020. V. 1222. Р. 128–131.
  74. Watanabe E. Aqueous acetonitrile extraction for pesticide residue analysis in agricultural products with HPLC-DAD // Food Chem. 2014. V. 154. Р. 7–12.
  75. Xiao Z. Polydimethylsiloxane/metal-organic frameworks coated stir bar sorptive extraction coupled to gas chromatography-flame photometric detection for the determination of organophosphorus pesticides in environmental water samples // Talanta. 2016. V. 156. Р. 126–133.
  76. Blankson G.K. Contamination levels of organophosphorus and synthetic pyrethroid pesticides in vegetables marketed in Accra, Ghana // Food Control. 2016. V. 68. Р. 174–180.
  77. Salemi A. Ultrasonic assisted headspace single drop micro-extraction and gas chromatography with nitrogen-phosphorus detector for determination of organophosphorus pesticides in soil //Analyt. Chim. Acta. 2013. V. 769. Р. 121–126.
  78. Mahpishanian S., Sereshti H., Baghdadi M. Superparamagnetic core-shells anchored onto graphene oxide grafted with phenylethyl amine as a nano-adsorbent for extraction and enrichment of organophosphorus pesticides from fruit, vegetable and water samples // J. Chromatograp. 2015. V. 1406. Р. 48–58.
  79. Farajzadeh M.A., Mogaddam M.R.A. Acid-base reaction-based dispersive liquid-liquid microextraction method for extraction of three classes of pesticides from fruit juice samples // J. Chromatograp. 2016. V. 1431. Р. 8–16.
  80. Moawed E.A., Radwan A.M. Application of acid modified polyurethane foam surface for detection and removing of organochlorine pesticides from wastewater // J. Chromatograp. 2017. V. 1044. Р. 95–102.
  81. Nodeh H.R. New magnetic graphene-based inorganic-organic sol-gel hybrid nanocomposite for simultaneous analysis of polar and non-polar organophosphorus pesticides from water samples using solid-phase extraction // Chemosphere. 2017. V. 166. Р. 21–30.
  82. Shamsipur M., Yazdanfar N., Ghambarian M. Combination of solid-phase extraction with dispersive liquid-liquid microextraction followed by GC-MS for determination of pesticide residues from water, milk, honey and fruit juice // Food Chem. 2016. V. 204. Р. 289–297.
  83. Liu J. Comparison of two extraction methods for the determination of 135 pesticides in Corydalis rhizoma, Chuanxiong rhizoma and Angelicae sinensis radix by liquid chromatography-triple quadrupole-mass spectrometry. Application to the roots and rhizomes of Chinese herbal medicines // J. Chromatograp. 2016. V. 1017. Р. 233–240.
  84. Montory M. First report on organochlorine pesticides in water in a highly productive agro-industrial basin of the Central Valley, Chile // Chemosphere. 2017. V. 174. Р. 148–156.
  85. Zhang J. β-cyclodextrin functionalized meso-/macroporous magnetic titanium dioxide adsorbent as extraction material combined with gas chromatography-mass spectrometry for the detection of chlorobenzenes in soil samples // J. Chromatograp. 2015. V. 1401. P. 24–32.
  86. Lu Y., Zhu Y. Determination of chlorobenzenes in textiles by pressurized hot water extraction followed by vortex-assisted liquid-liquid microextraction and gas chromatography-mass spectrometry // J. Chromatograp. 2013. V. 1319. Р. 27–34.
  87. Bulgurcuoğlu A.E. Development of a switchable solvent liquid phase extraction method for the determination of chlorthiamid, ethyl parathion, penconazole and fludioxonil pesticides in well, tap and lake water samples by gas chromatography mass spectrometry // Microchem. J. 2021. V. 168. Р. 106–112.
  88. Kaur R. Rapid monitoring of organochlorine pesticide residues in various fruit juices and water samples using fabric phase sorptive extraction and gas chromatography-mass spectrometry // Molecules. 2019. V. 24. № 6. Р. 10–13.
  89. Wondimu K.T., Geletu A.K. Residue analysis of selected organophosphorus and organochlorine pesticides in commercial tomato fruits by gas chromatography mass spectrometry // Heliyon. 2023. V. 9. № 3. P. 43–49.
  90. Yasien S. Quantification of multi-class pesticides in stomach contents and milk by gas chromatography-mass spectrometry with liquid extraction method // Arab. J. Chem. 2022. V. 15. № 7. Р. 103937.
  91. Грибанов Е.Н., Оскотская Э.Р., Саунина И.В. Хромато-масс-спектрометрическое определение пестицидов различных классов в растительных объектах // Завод. лаб. Диагностика мат-лов. 2017. Т. 83. № 5. С. 5–8.
  92. Тремасова М., Борисова Т. Определение пестицидов: решения Shimadzu // Аналитика. 2016. № 2. С. 38–53.
  93. Фицев И.М., Шлямина О.В., Сайфутдинов А.М., Макаева А.Р. Пробоподготовка способом QuEChERS при определении пестицидов методом хромато-масс-спектрометрии // Фундаментальные научные исследования как фактор обеспечения конкурентоспособности общества и государства: сб. научн. тр. по мат-лам Международ. научн.-практ. конф., Белгород, 10 апреля 2020 г. Белгород: ООО “Агентство перспективных научных исследований”, 2020. С. 6–9.
  94. Амелин В.Г., Никешина Т.Б., Третьяков А.В. Идентификация и определение пестицидов и полициклических ароматических углеводородов в воде и пищевых продуктах методом хромато-масс-спектрометрии // Журн. аналит. хим. 2011. Т. 66. № 10. С. 1036–1041.
  95. Андрияшина Т.В., Саратовских Е.А., Чепегин И.В., Чижова М.А. Исследование содержания техногенных загрязняющих веществ в почвах Орловской области // Вестн. Казан. технол. ун-та. 2013. Т. 16. № 4. С. 67–72.
  96. Горшкова М.П., Андреева М.А., Киселева Е.М. Мониторинг пестицидов в продукции растительного происхождения // Санитарно-эпидемиологическое благополучие населения и защита прав потребителей: региональные аспекты. Мат-лы Всерос. научн.-практ. конф., посвящ. 100-летию со дня образ-я гос. сан.-эпид. службы России, Иркутск, 23 сентября 2022 г. Иркутск: ООО Типография “ИРКУТ”, 2022. Р. 49–54.
  97. Мухамметшина А.Г., Рахметова Э.Р., Мухарлямова А.З. Мониторинг остаточных количеств пестицидов и микотоксинов в зерновых культурах // Наука, технологии, кадры – основы достижений прорывных результатов в АПК: Сб. научн.-практ. мат-лов Международ. научн.-практ. конф., Казань, 26–27 мая 2021 г. Вып. XV. Ч. 2. Казань: Татар. ин-т переподготовки кадров агробизнеса, 2021. Р. 77–85.
  98. Селихова Н.Ю., Кургачев Д.А., Понарин Н.В. Пат. № 2806370 C1 РФ, МПК G01N 33/483, G01N 30/04. Способ одновременного количественного определения стойких хлорорганических пестицидов в шерсти животных методом газовой хромато-масс-спектрометрии: № 2022133128. Заявл. 16.12.2022: опубл. 31.10.2023.
  99. Кущ И.В., Удавлиев Д.И., Баиров А.Л. Пестициды в пчелином меде и продуктах пчеловодства // Вет. врач. 2023. № 2. С. 17–22.
  100. Оскотская Э.Р., Грибанов Е.Н., Саунина И.В. Очистка экстрактов проб зерновых культур алюмосиликатом при определении пестицидов методом газовой хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием // Журн. аналит. хим. 2017. Т. 72. № 2. С. 170–176.
  101. Губин А.Р., Суханов П.Т., Кушнир А.А. Применение магнитных молекулярно импринтированных полимеров для онлайн динамического концентрирования 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты и ее последующего определения в почве // Хим. безопасность. 2023. Т. 7. № 1. С. 128–147.
  102. ПНД Ф 16.1:2.2:23:3.61-09 Количественный химический анализ вод. Методика измерений массовых долей хлорорганических пестицидов и полихлорированных бифенилов в пробах почв, донных отложений, осадков сточных вод, отходов производства и потребления газохроматографическим методов с масс-селективным детектированием: природоохранный нормативный документ федеративный: изд. офиц.: Федеральный центр анализа и оценки техногенного воздействия от 20 октября 2015 г. Дата введения 2015-11-13. М., 2015. 32 с.
  103. СТБ EN 15662-2017. Продукция пищевая растительного происхождения. Определение остатков пестицидов с применением ГХ-МС и/или ЖХ-МС/МС после экстракции/разделения ацетонитрилом и очистки с применением дисперсионной ТФЭ. Метод QuEChERS. М., 2017. 94 с.
  104. ПНД Ф 14.1:2:4.212-05 Количественный химический анализ вод. Методика выполнения измерений массовых концентраций 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты (2,4-Д) газохроматографическим методом в пробах питьевых, природных и сточных водах: природоохранный нормативный документ федеративный: ФБУ “ФЦАО” от 1 августа 2014 г. Дата введения 2018-04-18. М., 2014. 35 с.
  105. del Castillo M.L.R. Evaluation of pesticide residue contents in fruit juice by solid-phase microextraction and multidimensional gas chromatography coupled with mass spectrometry // Talanta. 2012. V. 89. Р. 77–83.
  106. Nguyen T.D., Lee M.H., Lee G.H. Rapid determination of 95 pesticides in soybean oil using liquid-liquid extraction followed by centrifugation, freezing and dispersive solid phase extraction as cleanup steps and gas chromatography with mass spectrometric detection // Microchem. J. 2010. V. 95. № 1. Р. 113–119.
  107. Hassan J. Rapid and simple low density miniaturized homogeneous liquid-liquid extraction and gas chromatography/mass spectrometric determination of pesticide residues in sediment // J. Hazard. Mater. 2010. V. 184. № 1–3. Р. 869–871.
  108. Machado I. Determination of pesticide residues in globe artichoke leaves and fruits by GC-MS and LC-MS/MS using the same QuEChERS procedure // Food Chem. 2017. V. 227. Р. 227–236.
  109. Silva M.G.D. Simultaneous determination of eight pesticide residues in coconut using MSPD and GC/MS // Talanta. 2008. V. 76. № 3. Р. 680–684.
  110. Pico Y., Alfarhan A.H., Barcelo D. How recent innovations in gas chromatography-mass spectrometry have improved pesticide residue determination: An alternative technique to be in your radar // TrAC Trend. Analyt. Chem. 2020. V. 122. Р. 115–120.
  111. Castanheiro A. Leaf-deposited semi-volatile organic compounds (SVOCs): An exploratory study using GCxGC-TOFMS on leaf washing solutions // Chemosphere. 2019. V. 214. Р. 103–110.
  112. Dunkle M.N. Quantification of the composition of liquid hydrocarbon streams: Comparing the GC-VUV to DHA and GCxGC // J. Chromatograp. 2019. V. 1587. Р. 239–246.
  113. Deore P. Non-target impact of imidacloprid residues on wine aroma characteristics assessed by GCxGC-TOF/MS analysis and its residual transformation in vinification by UHPLC-Orbitrap-MS analysis // Microchem. J. 2024. V. 197. Р. 109–134.
  114. Özel M.., Göğüş F., Lewis A.C. Comparison of direct thermal desorption with water distillation and superheated water extraction for the analysis of volatile components of Rosa damascena Mill. using GCxGC-TOF/MS // Analyt. Chim. Acta. 2006. V. 566. № 2. Р. 172–177.
  115. Patel D. Headspace analysis of E-cigarette fluids using comprehensive two dimensional GCGC-TOF-MS reveals the presence of volatile and toxic compounds // J. Pharma. Biomed. Anal. 2021. V. 196. Р. 113–130.
  116. Deore P. Non-target impact of imidacloprid residues on wine aroma characteristics assessed by GCxGC-TOF/MS analysis and its residual transformation in vinification by UHPLC-Orbitrap-MS analysis // Microchem. J. 2023. Р. 109–134.
  117. Dunkle M.N. Quantification of the composition of liquid hydrocarbon streams: Comparing the GC-VUV to DHA and GCxGC // J. Chromatograp. 2019. V. 1587. Р. 239–246.
  118. Castanheiro A. Leaf-deposited semi-volatile organic compounds (SVOCs): An exploratory study using GCxGC-TOFMS on leaf washing solutions // Chemosphere. 2019. V. 214. Р. 103–110.
  119. Уколов А.И., Сорокоумов П.Н., Уколова Е.Р. Определение дихлофоса, диметоата, хлорпирифоса, фозалона, диазинона и метилпаратиона в крови и моче методом газовой хроматографии с тандемным масс-селективным детектированием // Аналит. и контроль. 2014. Т. 18. № 3. С. 280–286.
  120. Li Y.F. Determination of multiple pesticides in fruits and vegetables using a modified quick, easy, cheap, effective, rugged and safe method with magnetic nanoparticles and gas chromatography tandem mass spectrometry // J. Chromatograp. 2014. V. 1361. Р. 77–87.
  121. Chou Y.C. High-efficient screening of pesticide residues in vegetables using gas chromatography/quadrupole time-of-flight (GC/Q-TOF) // J. Food Composit. Anal. 2023. Р. 105914.
  122. Pang X. Wide-scope multi-residue analysis of pesticides in beef by gas chromatography coupled with quadrupole Orbitrap mass spectrometry // Food Chem. 2023. V. 407. Р. 135–171.
  123. Belarbi S. Comparison of new approach of GC-HRMS (Q-Orbitrap) to GC-MS/MS (triple-quadrupole) in analyzing the pesticide residues and contaminants in complex food matrices // Food Chem. 2021. V. 359. Р. 129–132.
  124. Ракитский В.Н., Федорова Н.Е. Безопасность пищевой продукции: современные приемы многокомпонентного определения пестицидов // Здравоохранение РФ. 2021. Т. 65. № 4. С. 388–393.
  125. Плешак Е.М., Полянских Е.И., Белышева Л.Л., Батуревич А.И. Валидация способа определения хлорорганических пестицидов в зерне и муке методом хромато-масс-спектрометрии с использованием пробоподготовки QuEChERS // Хим. безопасность. 2022. Т. 6. № 2. С. 243–257.
  126. Донец М.М., Цыганков В.Ю., Боярова М.Д. Хлорорганические соединения в камбалах рода Hippoglossoides gottsche, 1835 из дальневосточных морей России // Морск. биол. журн. 2020. Т. 5. № 1. С. 29–42.
  127. Амелин В.Г., Никешина Т.Б., Третьяков А.В. Идентификация стойких органических загрязнителей в поверхностной, грунтовой и питьевой воде методом хромато-масс-спектрометрии // Вода: хим. и экол. 2012. № 2(44). С. 68–75.
  128. Maski D., Durairaj D. Effects of charging voltage, application speed, target height, and orientation upon charged spray deposition on leaf abaxial and adaxial surfaces // Crop Protect. 2010. V. 29. № 2. Р. 134–141.
  129. Soto D. Droplet fragmentation using a mesh // Physic. Rev. Fluids. 2018. V. 3. № 8. Р. 63–82.
  130. Bergeron V. Controlling droplet deposition with polymer additives // Nature. 2000. V. 405. № 6788. Р. 772–775.
  131. Song M. Controlling liquid splash on superhydrophobic surfaces by a vesicle surfactant // Sci. Аdv. 2017. V. 3. № 3. Р. e1602188.
  132. Yuan W. Natural green-peel orange essential oil enhanced the deposition, absorption and permeation of prochloraz in cucumber // RSC Аdv. 2019. V. 9. № 35. Р. 20395–20401.
  133. Damak M., Hyder M.N., Varanasi K.K. Enhancing droplet deposition through in situ precipitation // Nat. Commun. 2016. V. 7. № 1. Р. 12560.
  134. Li Y. Whole contact line pinning for droplets impacting on a hydrophobic surface due to hydrophilic TiO2 nanoparticle addition // Langmuir. 2021. V. 37. № 22. Р. 6673–6680.
  135. Wibowo D. Sustained release of fipronil insecticide in vitro and in vivo from biocompatible silica nanocapsules // J. Аgricult. Food Сhem. 2014. V. 62. № 52. Р. 12504–12511.
  136. Zhu H. Avermectin loaded carboxymethyl cellulose nanoparticles with stimuli-responsive and controlled release properties // Industr. Сrops Рrod. 2020. V. 152. Р. 112–117.
  137. Luo J. Self-assembled degradable nanogels provide foliar affinity and pinning for pesticide delivery by flexibility and adhesiveness adjustment // ACS nano. 2021. V. 15. № 9. Р. 14598–14609.

Arquivos suplementares

Arquivos suplementares
Ação
1. JATS XML
Baixar
2. Fig. 1. Graph of growth of publication activity on the topic of pesticide identification in the period from 2000 to 2023.

Baixar (12KB)
Metadados

Declaração de direitos autorais © The Russian Academy of Sciences, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».