Fungal pathogens of mold of winter wheat grains in Rostov region
- Авторлар: Budynkov N.I.1, Mikhaleva S.N.1, Ulyanenko L.N.1, Glinushkin A.P.1
-
Мекемелер:
- All-Russian Scientific Research Institute of Phytopathology
- Шығарылым: № 5 (2024)
- Беттер: 27-36
- Бөлім: Agroecology
- URL: https://journals.rcsi.science/0002-1881/article/view/261160
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0002188124050048
- EDN: https://elibrary.ru/CZJXDV
- ID: 261160
Дәйексөз келтіру
Аннотация
Long-term monitoring of the colonization of winter wheat grain by fungal mold pathogens that negatively affect the quality of grain during storage, reducing the quality of seed material, food grains and forage, showed that a high level of occurrence on the grain of Rostov winter wheat samples for the period 2014–2021 was manifested by mold fungi Mucor spp., Aspergillus niger, Aspergillus glaucus, Aspergillus flavus, species of the genus Penicillium. Relatively low occurrence was observed in Rhizopus nigricans and Cladosporium herbarum species. Mold pathogens are producers of the most dangerous mycotoxins: ochratoxin A (species of Penicillium, Aspergillus niger, A. glaucus), aflotoxin B1 (A. flavus), rhizonins (Rhizopus spp.), etc. In the regions of Southern Russia, with severe drought in the soil and on the lower parts of plants, the accumulation of the fungus Penicillium purpureogenum is often noted, for some time it could become dominant. When restoring the level of moisture supply, a decrease in the occurrence of P. purpureogenum was observed, often to zero, and an increase in the occurrence of mucor fungi (Fusarium solani, F. semitectum), non-circulating Mycelia sterilia fungi, etc., a noticeable increase in the total density of fungal colonies. The highest level of external infection of grain was due to colonization of grain by fungi from the Penicillium group, as well as A. glaucus and A. niger, the highest level of internal infection was caused by the Penicillium group, Rhizopus nigricans, A. niger. The dominance of external infection over internal infection was observed during colonization by penicilli and aspergillus, the dominance of internal over external infection by rhizopus and cladosporium.
Негізгі сөздер
Толық мәтін

Авторлар туралы
N. Budynkov
All-Russian Scientific Research Institute of Phytopathology
Хат алмасуға жауапты Автор.
Email: oranzar@yandex.ru
Ресей, 143050, Moscow region, Odintsovo district, r. p. Bolshye Vyazemye, ul. Institut, poss. 5
S. Mikhaleva
All-Russian Scientific Research Institute of Phytopathology
Email: oranzar@yandex.ru
Ресей, 143050, Moscow region, Odintsovo district, r. p. Bolshye Vyazemye, ul. Institut, poss. 5
L. Ulyanenko
All-Russian Scientific Research Institute of Phytopathology
Email: oranzar@yandex.ru
Ресей, 143050, Moscow region, Odintsovo district, r. p. Bolshye Vyazemye, ul. Institut, poss. 5
A. Glinushkin
All-Russian Scientific Research Institute of Phytopathology
Email: oranzar@yandex.ru
Ресей, 143050, Moscow region, Odintsovo district, r. p. Bolshye Vyazemye, ul. Institut, poss. 5
Әдебиет тізімі
- Будынков Н.И., Михалева С.Н., Проскурин А.В. Микробиологическая деградация агроценозов и возможность ее предотвращения. Растительные остатки // Эволюция и деградация почвенного покрова. Сб. научн. ст. по мат-лам V Международ. научн. конф. 19–22 сентября 2017 г. Ставрополь. ГАУ. Ставрополь, 2017. С. 10–13.
- Рудаков В.О., Рудаков О.Л. Природа почвенных фитотоксикозов и проблема защиты растений // АГРО XXI. 2009. № 1–3. С. 14–17.
- Наумова Н.А. Анализ семян на грибную и бактериальную инфекцию. М., 1951. 140 с.
- Будынков Н.И., Михалева С.Н., Проскурин А.В. Динамика факультативных паразитов грибной природы в полевых агроценозах с минимальной обработкой почвы в западной части Волгоградской области // Агрохимия. 2021. № 1. С. 64–71.
- Будынков Н.И., Михалева С.Н. Болезни нута на юге европейской территории России. Семенная инфекция // Достиж. науки и техн. АПК. 2018. Т. 32. № 7. С. 31–35
- Кузьмичев А.А., Монастырная Э.И., Соколова Н.К., Фиссюра Н.И. Рекомендации по снижению вредоносности фузариоза колоса озимой пшеницы. Краснодар: ВНИИБЗР, 1993. 16 с.
- Сатин Е. Рост плесеней и формирование микотоксинов // Микотоксины и микозы / Под ред. Д. Диаза. М.: Печатный город, 2006. С. 71–81.
- Рудаков О.Л., Олейник К.Н., Рудаков В.О. Пособие по фитопатологии для закрытого грунта. М.: Агроконсалт, 2001. 142 с.
- Рудаков О.Л. Микофильные грибы, их биология и практическое значение. М.: Наука, 1981. 160 с.
- Будынков Н.И., Михалева С.Н. Прогрессирующее накопление опасных фузариев на зерне озимой пшеницы в хозяйствах Юга России (2014–2020 гг.) // Агрохимия. 2022. № 1. С. 75–87. https://doi.org/10.31857/S0002188122010057
- Munkvold G.P., Arias S., Tasch I., Gruber-Dorninger C. Mycotoxins in corn: Occurrence, impacts, and management chapter 9 // Corn. 2019. AACCI. Published by Elsevier Inc. in cooperation with AACC International. Р. 235–287. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-811971-6.00009-7
- Perera R.H., Hyde K.D., Maharachchikumbura S.S.N., Jones E.B., McKenzie E.H., Stadler M., Lee H., Samarakoon M.C., Ekanayaka A.H., Camporesi E., Liu J.K., Liu Z.Y. Fungi on wild seeds and fruits // Mycosphere. 2020. V. 11(1). P. 2108–2480. https://doi.org/10.5943/mycosphere/11/1/14
- Minutillo S.A., Ruano-Rosa D., Abdelfattah A., Schena L., Malacrinò A. The Fungal microbiome of wheat flour includes potential mycotoxin producers // Foods. 2022. V. 11. № 676. Р. 1–9. https://doi.org/10.3390/foods11050676
- Мирошниченко И.И., Зачиняева А.В., Соломенникова И.И., Зачиняев Я.В. Негативные последствия антропогенных изменений комплексов почвенных микроскопических грибов. Мат-лы 5-го Всерос. конгр. по мед. микологии // Усп. мед. микол. М.: Нац. акад. микологии, 2007. С. 60–63.
- Taniwaki M.H., Pitt J.I., Magan N. Aspergillus species and mycotoxins: occurrence and importance in major food commodities // Current Opinion in Food Sci. V. 23. October 2018. Р. 38–43. https://doi.org/10.1016/j.cofs.2018.05.008
- Soares C., Calado T., Venвnaio A. Mycotoxin production by Aspergillus niger aggregate strains isolated from harvested maize in three Portuguese regions // Rev. Iberoam Micol. 2013. V. 30(1)/ P. 9–13.
- Jha S.N. Rapid detection of food adulterants and contaminants. Theory and practice // Acad. Press. 2016. 266 p. https://doi.org/10.1016/C2013-0-09801-5
- Девеговда Д., Мурти Т.Н.К. Влияние микотоксинов на здоровье птицы и практическое решение проблемы // Микотоксины и микозы / Под ред. Д. Диаза. М.: Печатный город, 2006. C. 179–212.
- Котова В.В. Корневые гнили гороха и вики и меры защиты. СПб.: ВИЗР, 2011. 144 с.
- Roháčik 1.T., Hudec K. Fungal infection of malt barley kernels in Slovak Republic // Plant Protect. Sci. 2007. V. 43. № 3. Р. 86–93.
- Minati M.H., Mohammed-Ameen M.K. Fungal diversity of winter wheat parts, seed and field soil in Iraq, Basra province // 2nd Inter. Sci. Conf. of Al-Ayen University (ISCAU-2020). IOP Conf. Series: Materials Science and Engineering. 2020. V. 928. № 062004. Р. 1–18. https://doi.org/10.1088/1757-899X/928/6/062004
- Partida-Martinez L.P., Flores de Looss C., Ishida K., Ishida M., Roth M., Buder K., Hertweck C. Rhizonin, the first mycotoxin isolated from the zygomycota, is not a fungal metabolite but is produced by bacterial endosymbionts // Appl. Environ. Microbiol. 2007. V. 73(3). P. 793–797. https://doi.org/10.1128/AEM.01784-06
- Rabie C.J., Lübben A,. Schipper M.A.A., van Heerden F.R., Fincham J.E. Toxigenicity of Rhizopus species // Inter. J. Food Microbiol. 1985. V. 1. Iss. 5. P. 263–270.
- Hernández-Lauzardo A.N., Bautista-Baños S., Velázquezdel Valle M.G., Trejo-Espino J.L. Identification of Rhizopus stolonifer (Ehrenb.: Fr.) Vuill., causal agent of rhizopus rot disease of fruits and vegetables // Revista Mexicana de FITOPATOLOGIA. 2006. V. 24. № 1. P. 65–69.
- Wilson T., Rabie C.J., Fincham J.E., Steyn P.S., Schipper M.A. Toxicity of rhizonin A, isolated from Rhizopus microsporus, in laboratory animals // Food Chem. Toxicol. 1984. V. 22(4). P. 275–281. https://doi.org/10.1016/0278-6915(84)90006-1
- Steyn P.S., Tuinman A.A., van Heerden F.R., van Rooyen P H., Wessels P.L., Rabie C.J. The isolation, structure, and absolute configuration of the mycotoxin, rhizonin A, a novel cyclic heptapeptide containing N-methyl-3-(3-furyl)alanine, produced by Rhizopus microspores // J. Chem. Soc. Chem. Commun. 1983. P. 47–49.
- Alwatban M.A., Hadi S., Moslem M.A., Alwatban M.A., Hadi S., Moslem M.A. Mycotoxin production in Cladosporium species influenced by temperature regimes // J. Pure Appl. Microbiol. 2014. V. 8(5). P. 4061–4069.
- Волкова Т.Н., Селина И.В., Созинова М.С. Биполярис и эпикокк. Изменения в микобиоте зерна ячменя за 2001–2017 гг. // Пиво и напитки. 2018. № 3, C. 62–67.
- Будынков Н.И., Михалева С.Н. Мониторинг альтернариевых грибов на зерне озимой пшеницы в хозяйствах Юга России (2014–2020 гг.) // Агрохимия. 2022. № 2. C. 92–99. https://doi.org/10.31857/S0002188122020041
- Шпанев А.М., Смук В.В. Влияние азотного питания на фитосанитарное состояние посевов озимой пшеницы в Северо-Западном регионе РФ // Агрохимия. 2019. № 1. C. 58–65. https://doi.org/10.1134/S0002188119010101
- Golosna L. Mycobiota of wheat seeds with signs of “Black Point” under conditions of forest-steppe and forest zones of ukraine // Chem. Proc. 2022. V. 10. № 93. P. 1–5. https://doi.org/10.3390/IOCAG2022–12236
- Felšöciová S., Kowalczewski P.Ł., Krajčovič T., Dráb Š., Kačániová M. Effect of long-term storage on mycobiota of barley grain and malt // Plants. 2021. V. 10. 1655. P. 1–20. https://doi.org/10.3390/plants10081655
- Roháčik T., Hudec K. Fungal infection of malt barley kernels in Slovak Republic // Plant Protect. Sci. 2007. V. 43. № 3. P. 86–93.
- Minutillo S.A., Ruano-Rosa D., Abdelfattah A., Schena L., Malacrinò A. The Fungal microbiome of wheat flour includes potential mycotoxin producers // Foods. 2022. V. 11. 676. P. 1–9. https://doi.org/10.3390/foods11050676
- Балбашевская Н.А. Биоэкологические особенности гиперпаразитических грибов и их значение в ограничении численности корневых гнилей зерновых культур: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Иркутск, 2005. 20 с.
Қосымша файлдар
