Отправить статью по E-mail 
Грибные возбудители плесени зерна озимой пшеницы в Ростовской области
- Авторы: Будынков Н.И.1, Михалева С.Н.1, Ульяненко Л.Н.1, Глинушкин А.П.1
-
Учреждения:
- Всероссийский научно-исследовательский институт фитопатологии
- Выпуск: № 5 (2024)
- Страницы: 27-36
- Раздел: Агроэкология
- URL: https://journals.rcsi.science/0002-1881/article/view/261160
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0002188124050048
- EDN: https://elibrary.ru/CZJXDV
- ID: 261160
Цитировать
Открытый доступ
Доступ предоставлен
Аннотация
Многолетний мониторинг колонизации зерна озимой пшеницы грибными возбудителями плесени, негативно влияющими на качество зерна при хранении, снижающими качество посевного материала, пищевого зерна и фуража, показал, что высокий уровень встречаемости на зерне ростовских образцов озимой пшеницы за период 2014–2021 гг. проявили плесневые грибы Mucor spp., Aspergillus niger, Aspergillus glaucus, Aspergillus flavus, виды рода Penicillium. Относительно низкую встречаемость наблюдали у видов Rhizopus nigricans, Cladosporium herbarum. Возбудители плесени являются продуцентами опаснейших микотоксинов: охратоксина A (виды Penicillium, Aspergillus niger, A. glaucus), афлотоксина B1 (A. flavus), ризонинов (Rhizopus spp.) и др. В регионах Юга России при сильной засухе в почве и на нижних частях растений нередко отмечено накопление гриба Penicillium purpureogenum, на некоторое время он мог стать доминирующим. При восстановлении уровня влагообеспеченности наблюдали снижение встречаемости P. purpureogenum, нередко до нулевых показателей и увеличение встречаемости мукоровых грибов (Fusarium solani, F. semitectum), неспорулирующих грибов Mycelia sterilia и др., заметное возрастание общей плотности грибных колоний. Наибольший уровень наружной инфекции зерна был обусловлен колонизацией зерновок грибами из группы Penicillium, также A. glaucus и A. niger, наибольший уровень внутренней инфекции – группой Penicillium, Rhizopus nigricans, A. niger. Доминирование наружной инфекции над внутренней наблюдали при колонизации пенициллами и аспергиллами, доминирование внутренней над наружной – ризопусом и кладоспориумом.
Полный текст
Об авторах
Н. И. Будынков
Всероссийский научно-исследовательский институт фитопатологии
Автор, ответственный за переписку.
Email: oranzar@yandex.ru
Россия, 143050, Московская обл., Одинцовский р-н, пос. Большие Вяземы, ул. Институт, влад. 5
С. Н. Михалева
Всероссийский научно-исследовательский институт фитопатологии
Email: oranzar@yandex.ru
Россия, 143050, Московская обл., Одинцовский р-н, пос. Большие Вяземы, ул. Институт, влад. 5
Л. Н. Ульяненко
Всероссийский научно-исследовательский институт фитопатологии
Email: oranzar@yandex.ru
Россия, 143050, Московская обл., Одинцовский р-н, пос. Большие Вяземы, ул. Институт, влад. 5
А. П. Глинушкин
Всероссийский научно-исследовательский институт фитопатологии
Email: oranzar@yandex.ru
Россия, 143050, Московская обл., Одинцовский р-н, пос. Большие Вяземы, ул. Институт, влад. 5
Список литературы
- Будынков Н.И., Михалева С.Н., Проскурин А.В. Микробиологическая деградация агроценозов и возможность ее предотвращения. Растительные остатки // Эволюция и деградация почвенного покрова. Сб. научн. ст. по мат-лам V Международ. научн. конф. 19–22 сентября 2017 г. Ставрополь. ГАУ. Ставрополь, 2017. С. 10–13.
- Рудаков В.О., Рудаков О.Л. Природа почвенных фитотоксикозов и проблема защиты растений // АГРО XXI. 2009. № 1–3. С. 14–17.
- Наумова Н.А. Анализ семян на грибную и бактериальную инфекцию. М., 1951. 140 с.
- Будынков Н.И., Михалева С.Н., Проскурин А.В. Динамика факультативных паразитов грибной природы в полевых агроценозах с минимальной обработкой почвы в западной части Волгоградской области // Агрохимия. 2021. № 1. С. 64–71.
- Будынков Н.И., Михалева С.Н. Болезни нута на юге европейской территории России. Семенная инфекция // Достиж. науки и техн. АПК. 2018. Т. 32. № 7. С. 31–35
- Кузьмичев А.А., Монастырная Э.И., Соколова Н.К., Фиссюра Н.И. Рекомендации по снижению вредоносности фузариоза колоса озимой пшеницы. Краснодар: ВНИИБЗР, 1993. 16 с.
- Сатин Е. Рост плесеней и формирование микотоксинов // Микотоксины и микозы / Под ред. Д. Диаза. М.: Печатный город, 2006. С. 71–81.
- Рудаков О.Л., Олейник К.Н., Рудаков В.О. Пособие по фитопатологии для закрытого грунта. М.: Агроконсалт, 2001. 142 с.
- Рудаков О.Л. Микофильные грибы, их биология и практическое значение. М.: Наука, 1981. 160 с.
- Будынков Н.И., Михалева С.Н. Прогрессирующее накопление опасных фузариев на зерне озимой пшеницы в хозяйствах Юга России (2014–2020 гг.) // Агрохимия. 2022. № 1. С. 75–87. https://doi.org/10.31857/S0002188122010057
- Munkvold G.P., Arias S., Tasch I., Gruber-Dorninger C. Mycotoxins in corn: Occurrence, impacts, and management chapter 9 // Corn. 2019. AACCI. Published by Elsevier Inc. in cooperation with AACC International. Р. 235–287. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-811971-6.00009-7
- Perera R.H., Hyde K.D., Maharachchikumbura S.S.N., Jones E.B., McKenzie E.H., Stadler M., Lee H., Samarakoon M.C., Ekanayaka A.H., Camporesi E., Liu J.K., Liu Z.Y. Fungi on wild seeds and fruits // Mycosphere. 2020. V. 11(1). P. 2108–2480. https://doi.org/10.5943/mycosphere/11/1/14
- Minutillo S.A., Ruano-Rosa D., Abdelfattah A., Schena L., Malacrinò A. The Fungal microbiome of wheat flour includes potential mycotoxin producers // Foods. 2022. V. 11. № 676. Р. 1–9. https://doi.org/10.3390/foods11050676
- Мирошниченко И.И., Зачиняева А.В., Соломенникова И.И., Зачиняев Я.В. Негативные последствия антропогенных изменений комплексов почвенных микроскопических грибов. Мат-лы 5-го Всерос. конгр. по мед. микологии // Усп. мед. микол. М.: Нац. акад. микологии, 2007. С. 60–63.
- Taniwaki M.H., Pitt J.I., Magan N. Aspergillus species and mycotoxins: occurrence and importance in major food commodities // Current Opinion in Food Sci. V. 23. October 2018. Р. 38–43. https://doi.org/10.1016/j.cofs.2018.05.008
- Soares C., Calado T., Venвnaio A. Mycotoxin production by Aspergillus niger aggregate strains isolated from harvested maize in three Portuguese regions // Rev. Iberoam Micol. 2013. V. 30(1)/ P. 9–13.
- Jha S.N. Rapid detection of food adulterants and contaminants. Theory and practice // Acad. Press. 2016. 266 p. https://doi.org/10.1016/C2013-0-09801-5
- Девеговда Д., Мурти Т.Н.К. Влияние микотоксинов на здоровье птицы и практическое решение проблемы // Микотоксины и микозы / Под ред. Д. Диаза. М.: Печатный город, 2006. C. 179–212.
- Котова В.В. Корневые гнили гороха и вики и меры защиты. СПб.: ВИЗР, 2011. 144 с.
- Roháčik 1.T., Hudec K. Fungal infection of malt barley kernels in Slovak Republic // Plant Protect. Sci. 2007. V. 43. № 3. Р. 86–93.
- Minati M.H., Mohammed-Ameen M.K. Fungal diversity of winter wheat parts, seed and field soil in Iraq, Basra province // 2nd Inter. Sci. Conf. of Al-Ayen University (ISCAU-2020). IOP Conf. Series: Materials Science and Engineering. 2020. V. 928. № 062004. Р. 1–18. https://doi.org/10.1088/1757-899X/928/6/062004
- Partida-Martinez L.P., Flores de Looss C., Ishida K., Ishida M., Roth M., Buder K., Hertweck C. Rhizonin, the first mycotoxin isolated from the zygomycota, is not a fungal metabolite but is produced by bacterial endosymbionts // Appl. Environ. Microbiol. 2007. V. 73(3). P. 793–797. https://doi.org/10.1128/AEM.01784-06
- Rabie C.J., Lübben A,. Schipper M.A.A., van Heerden F.R., Fincham J.E. Toxigenicity of Rhizopus species // Inter. J. Food Microbiol. 1985. V. 1. Iss. 5. P. 263–270.
- Hernández-Lauzardo A.N., Bautista-Baños S., Velázquezdel Valle M.G., Trejo-Espino J.L. Identification of Rhizopus stolonifer (Ehrenb.: Fr.) Vuill., causal agent of rhizopus rot disease of fruits and vegetables // Revista Mexicana de FITOPATOLOGIA. 2006. V. 24. № 1. P. 65–69.
- Wilson T., Rabie C.J., Fincham J.E., Steyn P.S., Schipper M.A. Toxicity of rhizonin A, isolated from Rhizopus microsporus, in laboratory animals // Food Chem. Toxicol. 1984. V. 22(4). P. 275–281. https://doi.org/10.1016/0278-6915(84)90006-1
- Steyn P.S., Tuinman A.A., van Heerden F.R., van Rooyen P H., Wessels P.L., Rabie C.J. The isolation, structure, and absolute configuration of the mycotoxin, rhizonin A, a novel cyclic heptapeptide containing N-methyl-3-(3-furyl)alanine, produced by Rhizopus microspores // J. Chem. Soc. Chem. Commun. 1983. P. 47–49.
- Alwatban M.A., Hadi S., Moslem M.A., Alwatban M.A., Hadi S., Moslem M.A. Mycotoxin production in Cladosporium species influenced by temperature regimes // J. Pure Appl. Microbiol. 2014. V. 8(5). P. 4061–4069.
- Волкова Т.Н., Селина И.В., Созинова М.С. Биполярис и эпикокк. Изменения в микобиоте зерна ячменя за 2001–2017 гг. // Пиво и напитки. 2018. № 3, C. 62–67.
- Будынков Н.И., Михалева С.Н. Мониторинг альтернариевых грибов на зерне озимой пшеницы в хозяйствах Юга России (2014–2020 гг.) // Агрохимия. 2022. № 2. C. 92–99. https://doi.org/10.31857/S0002188122020041
- Шпанев А.М., Смук В.В. Влияние азотного питания на фитосанитарное состояние посевов озимой пшеницы в Северо-Западном регионе РФ // Агрохимия. 2019. № 1. C. 58–65. https://doi.org/10.1134/S0002188119010101
- Golosna L. Mycobiota of wheat seeds with signs of “Black Point” under conditions of forest-steppe and forest zones of ukraine // Chem. Proc. 2022. V. 10. № 93. P. 1–5. https://doi.org/10.3390/IOCAG2022–12236
- Felšöciová S., Kowalczewski P.Ł., Krajčovič T., Dráb Š., Kačániová M. Effect of long-term storage on mycobiota of barley grain and malt // Plants. 2021. V. 10. 1655. P. 1–20. https://doi.org/10.3390/plants10081655
- Roháčik T., Hudec K. Fungal infection of malt barley kernels in Slovak Republic // Plant Protect. Sci. 2007. V. 43. № 3. P. 86–93.
- Minutillo S.A., Ruano-Rosa D., Abdelfattah A., Schena L., Malacrinò A. The Fungal microbiome of wheat flour includes potential mycotoxin producers // Foods. 2022. V. 11. 676. P. 1–9. https://doi.org/10.3390/foods11050676
- Балбашевская Н.А. Биоэкологические особенности гиперпаразитических грибов и их значение в ограничении численности корневых гнилей зерновых культур: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Иркутск, 2005. 20 с.
Дополнительные файлы
