Biological effect of activated carbon as a feed additive on the organism of rainbow trout

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

The article describes the results of studies on the impact of additional inclusion of activated carbon (AC) in the diet of rainbow trout in the following dosages: I experimental group – 1 g/kg, II experimental group – 2 g/kg and III experimental group – 3 g/kg of feed. The inclusion of activated carbon dosages of 1 and 3 g/kg of feed had a positive effect on the initial stages of commercial trout growth. It was found that the introduction of AC at a dose of 2 g/kg of feed increased fish growth productivity by 19.5% compared to the control group. Additional inclusion of AC in the diet of trout did not have a negative effect on the morphological parameters of blood, but at the same time there was a decrease in the concentration of erythrocytes in the experimental groups by 35.8%. In II experimental group, platelet and thrombocrit levels increased by 138% and 100%, respectively, compared to control values. Inclusion of AC in the diet of rainbow trout affected the biochemical parameters of fish blood. In I experimental group there was recorded a significant increase in total protein by 56.67% (Р0.05), albumin - by 35.33% (Р0.01), cholesterol - by 52%. In II experimental group there was a decrease in alanine aminotransferase (ALT) by 39% and aspartate aminotransferase (AST) by 39.4% (Р0.05), triglycerides - by 78.2% (Р0.05). In III experimental group there was an increase in total bilirubin by 78.57% (Р0.01) and urea - by 36.36% (Р0.05) relative to control. At the same time the level of glucose and ALT decreased by 30.8% (Р0.05) and 59.9% (Р0,05), respectively, in comparison with the control.

Full Text

Введение.

Аквакультура является одной из основных ведущих отраслей агропромышленности в РФ (Тимонина Е.А., 2021). С 2006 года она была включена в приоритетный национальный проект «Развитие АПК» как направление сельскохозяйственной деятельности. С этого времени в РФ началось усиленное развитие данного сектора сельского хозяйства (Аварский Н.Д. и др., 2020; Куликова О.В., 2022). Развитие аквакультуры соответствует постановлению Правительства Российской Федерации от 15.04.2014 г. № 314 «Об утверждении государственной программы Российской Федерации «Развитие рыбохозяйственного комплекса».

Раннее считалось, что сбалансированные по составу корма способны обеспечить животных всеми питательными веществами (Yang Z et al., 2021), но современные исследования говорят о том, что корма могут быть загрязнены токсинами, которые способны значительно снизить эффективность производства продукции (Patriarca A, 2017). Кроме того, в XX веке в кормопроизводстве активно использовали антибиотики (Forgetta V et al., 2012), которые способствовали появлению антибиотикорезистентности и накоплению остатков препаратов в окружающей среде и в организме животных и людей (Gonzalez Ronquillo M and Angeles Hernandez JC, 2017; Yang Q et al., 2021).

Кормовые антибиотики применяют в аквакультуре для повышения эффективности производства (Lin J, 2014). Они способствуют лечению и профилактике различных заболеваний. Их использование позволяет увеличить темпы роста животных и сохранить их поголовье. Основным и главным негативным последствием такой практики учёные считают аккумуляцию антибиотиков в тканях и органах рыб (Gonzalez Ronquillo M and Angeles Hernandez JC, 2017). При систематическом употреблении такой продукции в пищу, человек сам становится биоаккумулятором антибиотиков. Очевидно, что такое явление негативно отражается на иммунитете и здоровье в целом. Систематическое употребление рыбы, выращенной с помощью таких препаратов, приводит к отрицательным последствиям для человеческого организма. Прежде всего опасна антибиотикорезистентность к препаратам терапевтического действия (Simakova IV et al., 2021).

Перечисленные факторы мотивируют исследователей к активному поиску новых эффективных препаратов, способных повысить продуктивность животных без вреда для здоровья (Bhatti SA et al., 2021).

В настоящее время одной из новых тенденцией в кормлении животных является использование различных сорбентов, в частности активированного угля (АУ). Анализ научной информации показывает, что использование АУ в кормлении улучшает пищеварение, показатели крови, адсорбцию токсинов, а также эффективность использования корма. Доказано, что активированный уголь способен поглощать микотоксины из корма (Burchacka E et al., 2021) и улучшать показатели роста бройлеров (Oso AO et al., 2014). Исследования на птицах и млекопитающих демонстрируют способность АУ повышать иммунитет (Khatoon A et al., 2018; Bhatti SA et al., 2021).

Цель исследования.

Изучить влияние различных дозировок активированного угля на динамику роста и морфобиохимический состав крови радужной форели (Oncorhynchus mykiss).

Материалы и методы исследования.

Объект исследования. Годовики радужной форели (Oncorhynchus mykiss) средней массой 330 г.

Обслуживание животных и экспериментальные исследования были выполнены в соответствии с инструкциями и рекомендациями нормативных актов: Модельный закон Межпарламентской Ассамблеи государств-участников Содружества Независимых Государств "Об обращении с животными", ст. 20 (постановление МА государств-участников СНГ № 29-17 от 31.10.2007 г.). При проведении исследований были предприняты меры для обеспечения минимума страданий животных и уменьшения количества исследуемых опытных образцов. 

Схема эксперимента. Эксперимент проводился на базе садкового хозяйства ООО «Ирикла – рыба» (п. Энергетик д. 118, Новоорский р-н, Оренбургская область, Россия) в 2023 году.

Методом пар-аналогов были отобраны 400 рыб (m=330 г) и сформированы четыре группы (n=100), которые в течение первых 7 суток (подготовительный период) получали основной рацион (ОР). Затем группы были переведены на учётный период (8-100 сутки), в рамках которого рыбам в ОР дополнительно вводили АУ: I опытная группа – ОР+АУ (1 г/кг корма), II опытная группа – ОР+АУ (2 г/кг корма), III опытная группа – ОР+АУ (3 г/кг корма). Контрольная группа получала ОР без АУ.

Корма опытных групп готовили, используя метод напыления кормовых добавок на гранулы комбикорма. В качестве ОР использовали экструдированный корм «Форель 42/20 А50» («ЛимКорм Aqua», Россия). Суточная норма кормления – 1,6 % от массы тела рыб в соответствии с технологией выращивания. Рыбу кормили в светлое время суток 5 раз в день.

Контроль над ростом годовиков проводился утром до кормления ежедекадно (±1 г) (Мирошникова Е.П. и др., 2022).

Оборудование и технические средства. Морфологические и биохимические показатели крови оценивались в ЦКП БСТ РАН (https://цкп-бст.рф/) по стандартным методикам с помощью автоматического гематологического анализатора URIT-2900 Vet Plus, («URIT Medial Electronic Co.», Китай) и автоматического биохимического анализатора CS-T240 («Dirui Industrial Co., Ltd.», Китай) с использованием коммерческих биохимических наборов для ветеринарии («ДИАКОН-ДС», Россия; «Randox Laboratories Ltd», Великобритания). Для определения живой массы форели использовали электронные весы M-ER MERCURY 333ACLP-150.20/50 LCD 3612 (Россия).

Статистическая обработка. Статистическую обработку полученных данных проводили с помощью офисного программного комплекса «Microsoft Office» с применением программы «Excel» («Microsoft», США) с обработкой данных в «Statistica 10.0» («Stat Soft Inc.», США). Данные представлены в виде: среднее (M) ± стандартная ошибка среднего (m). Определение достоверности различий определяли по t-критерию Стьюдента. Достоверными считали результаты при P≤0,05.

Результаты исследования.

В ходе исследований установлено, что кормовая добавка (АУ) влияет на выживаемость рыбы. Выживаемость рыбы в опытных группах составила 97 %, что было выше контрольной группы на 7 %. Добавление АУ в рацион не повлияло на реакцию рыбы на кормление, весь корм поедался активно, рыба четко реагировала на внешние раздражители.

Включение в экструдированный корм АУ в установленных дозировках оказало влияние на скорость роста живой массы рыбы (рис. 1). Динамика живой массы рыбы активно повышалась в первые 20 дней эксперимента. По окончании второй декады разница I, II и III опытных групп по сравнению с контрольной составила 8 % (Р0,05); 11,2 % (Р0,05) и 13,1 % (Р0,05) соответственно.

 

Рисунок 1. Динамика живой массы форели в опытных группах по сравнению с контрольной, %

Figure 1. Dynamics of live weight of trout in the experimental groups compared with the control group, %

 

В период 2-7 декад опытные группы также опережали контрольную в скорости роста. Максимальная живая масса на конец испытательного периода зафиксирована во II опытной группе – средняя масса форели была выше контроля на 19,5 % (Р0,05). В I опытной группе в это же время отмечено снижение массы на 7,5 % (Р0,05) по сравнению с контролем. В III опытной группе было установлено повышение массы на 9,5 % (Р0,05) до 10-й декады эксперимента, затем масса рыбы оказалась ниже массы рыбы контрольной группы на 4,5 % (Р0,05).

В группах, потреблявших АУ, зарегистрирован более низкий уровень эритроцитов в сравнении с контрольной группой – на 35,8 % (табл. 1).

 

Таблица 1. Морфологические показатели крови радужной форели

Table 1. Morphological parameters of blood in rainbow trout

Показатели / Indicators

Группа / Group

контроль /control

I

II

III

Эритроциты, 1012/л/ Erythrocyte, 1012/l

0,14±0,08

0,09±0,05

0,09±0,05

0,09±0,05

Тромбоциты, 109/л / Trombocytes, 109/l

35,3±8,08

30,3±6,8

84,0±13,7**

63,0±13,9

Средний объём тромбоцитов, Фл / Mean Platelet Volume, fl

8,13±0,15

7,56±0,06

8,0±0,3

8,33±0,15

Тромбокрит, % / Thrombocrit, %

0,03±0,01

0,03±0,0

0,06±0,01*

0,05±0,01

Гемоглобин, г/л / Hemoglobin, g/l

165,33±21,2

187,33±22,12

162,3±31,3

162,6±43,6

Ширина распределения тромбоцитов, % / Platelet Distribution Width, %

12,4±0,1

11,6±0,06**

11,3±0,7

12,1±0,35

Примечание: * – Р0,05; ** – Р0,01 относительно контроля

Note: * – Р0.05; ** – Р0.01 relative to control

 

Количество тромбоцитов во II опытной группе превысило контрольное значение на 138,0 %, что почти в 2,5 раза выше нормы. Так же эти изменения отражаются и в значениях тромбокрита. Значение тромбокрита во II опытной группе на 100,0 % опередило показания контрольной группы.

Зафиксировано достоверное снижение ширины распределения тромбоцитов в I опытной группе на 6,5 %.

Включение АУ оказало влияние на биохимические показатели крови рыб (табл. 2).

 

Таблица 2. Биохимические показатели крови форели

Table 2. Biochemical blood parameters of trout

Показатели / Indicators

Группа / Group

контроль /control

I

II

III

Глюкоза, ммоль/л /Glucose, mmol/l

0,843±0,7

0,813±0,88

0,813±0,88

0,26±0,01*

Общий белок, г/л / Total protein, g/l

35,89±9,96

56,23±4,3*

37,39± 9,7

45,39±6,17

Альбумин, г/л / Albumin, g/l

16,5±0,5

22,33±1,15**

15,33±3,2

19,0±2,0

АЛТ, Ед/л / ALT, U/l

48,9±28,8

29,33±1,1**

19,2±4,4

29,3±1,1**

АСТ, Ед/л / AST, U/l

193,75±4,65

170,56±39,5

76,4±18,66*

186,93±84,58

Билирубин общий, мкмоль/л / Total bilirubin, µmol/l

4,48±0,3

4,14±1,3

3,7±0,67

8,0±0,73**

Холестерин, ммоль/л / Cholesterol, mmol/l

6,94±0,36

10,55±1,16*

5,64±1,15

8,0±0,73

Триглицериды, ммоль/л / Triglycerides, mmol/l

3,94±0,61

3,67±0,45

0,86±1,35*

2,97±0,08

Креатинин, мкмоль/л / Creatinine, µmol/l

9,45±2,35

9,93±9,28

8,03±4,1

8,6±2,2

Мочевина, ммоль/л / Urea, mmol/l

1,8±03

1,86±0,63

2,5±1,15

3,83±0,03*

Примечание: * – Р0,05; ** – Р0,01 относительно контроля

Note: * – Р0.05; ** – Р0.01 relative to control

 

В I опытной группе зафиксировано достоверное увеличение общего белка на 56,7 % (Р0,05), альбумина – на 35,3 % (Р0,01), холестерина – на 52,0 %.

Для II опытной группы установлено недостоверное понижение аланинаминотрансферазы (АЛТ) на 39,0 % и достоверное понижение уровня триглицеридов – на 78,2 % (Р0,05).

В III опытной группе относительно контроля произошло увеличение общего билирубина на 78,6 % (Р0,01) и мочевины – на 36,4 % (Р0,05). При этом уровень глюкозы и АЛТ снизился по сравнению с контролем на 30,8 % (Р0,05) и 59,9 % (Р0,05) соответственно.

В таблице 3 представлен минеральный состав крови форели. Увеличение количества железа зафиксировано во всех опытных группах. Так, уровень железа выше контроля на 49,6 % (Р0,05), 68,2 % (Р0,05) и 135,7 % (Р0,01) в I, II и III опытных группах соответственно.

 

Таблица 3. Минеральный состав крови форели

Table 3. The mineral composition of blood in trout

Показатели / Indicators

Группа / Group

контроль / control

I

II

III

Железо, мкмоль/л / Iron, µmol/l

7,55±1

11,3±1,2*

12,7±1,1*

17,8±1,5*

Магний, ммоль/л / Magnesium, mmol/l

1,5±0,5

1,67±0,5

1,5±0,35

1,6±0,34

Фосфор, ммоль/л / Phosphorus, mmol/l

3,82±0,34

4±0,81

3,37±0,22

4±0,5

Кальций, ммоль/л / Calcium, mmol/l

4±0,03

6,64±2,7

3,5±0,8

4,2±0,07*

Примечание: * – Р0,05 относительно контроля

Note: * – Р0.05 relative to control

 

Обсуждение полученных результатов.

Отечественными и зарубежными учёными неоднократно устанавливался факт положительного воздействия различных кормовых добавок на рост рыб (Мирошникова Е.П. и др., 2022; Зуева М.С., 2022; Hassan M et al., 2023)

Значительное увеличение выживаемости форели напрямую связано с адсорбцией бактериологических патогенов и их метаболитов активированным углём. Именно поэтому активированный уголь признан одним из наиболее успешных способов предотвращения смертельных последствий перорального приёма токсинов (Hassan M et al., 2023).

Зафиксированный положительный эффект, оказанный на скорость роста живой массы, согласуется с ранее проведёнными исследованиями, в ходе которых обнаружено, что АУ является катализатором поглощения питательных веществ комбикорма молодью гигантских каранкасов (Caranx ignobilis). АУ функционирует как бактериальный абсорбент эндотоксина, который сам по себе ингибирует всасывание питательных веществ в кровь. Кроме того, активированному углю свойственно поглощать аммиак, который также является весьма токсичным веществом. Заявлено, что добавление АУ в корм ускоряет регенерацию слизистой оболочки за счёт нейтрализации кишечных болезнетворных бактерий (Firdus F et al., 2021). Также АУ играет роль в снижении поверхностного давления в кишечнике, поглощая и удаляя газы и яды, тем самым делая всасывание питательных веществ более интенсивным (Hai NV, 2015).

Некоторые исследования, проведённые ранее, свидетельствуют о нахождении опредёленного оптимума в дозировках АУ, включаемого в рацион рыб. Дозировки ниже оптимума и превышающие его способны оказать негативный эффект на продуктивность рыбы, что связано с изменениями структуры фавеолярных клеток желудка при длительном воздействии сорбирующих веществ (Firdus F et al., 2021), что и наблюдали в I и III опытных группах.

Гематологические показатели являются ценной информацией при оценке здоровья рыб и целесообразности применения тех или иных комбикормов, поскольку сама кровь активно подвержена влиянию внутренних и внешних факторов среды (Ma L et al., 2020).

Анализируя полученные в ходе научного эксперимента показатели, следует обратить внимание на недостоверное, но устойчивое снижение эритроцитов во всех трёх опытных группах. Та же зависимость зафиксирована в снижении уровня гемоглобина во II и III опытных группах. В природе такие изменения связаны с сезонными колебаниями температурного режима воды, в которой находится рыба. При повышении температуры воды у форели возникает кислородное голодание и в некоторой степени замедление метаболизма, такие условия приводят к повышению уровня эритроцитов и гемоглобина в крови. В исследуемой ситуации отрицательная динамика этих показателей свидетельствует о снижении количества потребляемого кислорода ввиду того, что применение в кормлении АУ способствует улучшению пищеварения и, соответственно, понижению общего уровня активно потребляемого рыбой кислорода (Schvezov N et al., 2022).

Высокий уровень развития клеточного иммунитета на фоне действия АУ подтверждает повышение количества тромбоцитов во II и III опытных группах (Ахметова В.В. и Васина С.Б., 2015).

Влияние традиционных и новых биотехнологий на организм рыбы можно оценивать по биохимическим показателям, которые способны охарактеризовать протекающие внутриорганизменные реакции (Ганжа Е.В., 2012).

В I опытной группе наблюдалось достоверное увеличение общего белка на 56,67 % (Р0,05), альбумина – на 35,33 % (Р0,01), холестерина – на 52 %. Альбумин в крови взаимодействует напрямую с общим белком, который связан с усилением биосинтеза белка в печени и ответом врождённого иммунитета (Gharaei A et al., 2020). Чаще всего увеличение количества общего белка у рыб связано с отсутствием дисфункции печени (Ni M et al., 2021). В данном случае можно предположить, что АУ оказывает гепатопротекторный эффект, снимая функциональную нагрузку с клеток печени.

В ходе проведения исследований было установлено, что уровень глюкозы в III опытной группе повысился на 30,8 % (Р0,05) по сравнению с контролем. Уровень глюкозы является маркером физиологического стресса у животных. Изменение уровня глюкозы может указывать на незначительный стресс у рыбы (Ахметова В.В. и Васина С.Б., 2015; Kesbic OS et al., 2022), но в данном случае уровень гликемии соответствует потребностям эритроцитов, поскольку их уровень в III группе такой же, как и в других опытных и соответствует физиологической норме (Лыкасова И.А. и Макарова Г.П., 2019).

Уровни количества АЛТ и АСТ являются важными показателями в диагностике функций пищеварения и целостности печени (Килякова Ю.В. и др., 2022). В данном случае видно, что АУ способствует снижению АЛТ и АСТ на 39,4 % (Р0,01) и 39% (Р0,01) в I и III группах соответственно. Если повышение уровня АЛТ и АСТ в крови рыб является своеобразным индикатором загрязнённости воды (Singh J and Gaikwad DS, 2020), то снижение может быть связано с повышением активности ключевых ферментов гликолиза и белкового обмена (Мингазова М.С. и др., 2023). Понижение активности этих показателей может способствовать улучшению использования углеводов при получении энергии, снижать белковый катаболизм, усилить иммунные функции печени даже при воздействии высокотоксичных веществ (González JD et al., 2016; Kesbic OS et al., 2022).

Снижение активности АЛТ и АСТ в I и II группах может говорить о гепатопротекторном характере действия изучаемого препарата (Килякова Ю.В. и др., 2022).

Изменение уровня триглицеридов во II группе при включении в рацион указывает на замедление липидного обмена у рыб, что может быть связано с сезонным повышением температуры воды (Hassaan MS et al., 2018).

Показатель уровня мочевины в крови не является основным показателем почечной дисфункции, но имеет важное значение (Xu M et al., 2019). В крови III опытной группы зафиксировано достоверное увеличение уровня мочевины на 112 %, что выходит за пределы физиологической нормы. Повышение уровня мочевины в крови является одним из регуляторных механизмов поддержания положительного азотного баланса в организме рыб, она уменьшает токсическое влияние аммиака на ткани и органы (Xu M et al., 2019).

Повышение билирубина в III опытной группе на 78,5 % может говорить об увеличении показателей при интенсивном росте рыб (Ахметова В.В. и Васина С.Б., 2015).

В ходе исследований образцов биоматериала зафиксированы достоверные различия в сравнении с контрольными показателями по минеральному составу крови форели. Во всех опытных группах зарегистрировано повышение уровня железа и в III группе – кальция. Активированный уголь имеет высокий уровень железа, что объясняет его высокое содержание в крови. Железо выполняет функцию окислительно-восстановительного колеса в пищеварительном тракте. Оно действует в качестве акцептора и донатора электронов, напрямую связывая различные биотические и абиотические окислительно-восстановительные реакции (Joseph S et al., 2015; Quin P et al., 2015). Таким образом, активированный уголь усиливает интенсивность окислительно-восстановительных процессов в пищеварительной системе рыб.

Заключение.

Применение активированного угля в дозировке 2 г/кг корма в кормлении радужной форели способствует увеличению темпов роста живой массы рыбы. Установлено, что АУ оказал положительное воздействие на морфологический состав крови рыб.

×

About the authors

Oleg V Inshin

Federal Research Centre of Biological Systems and Agrotechnologies of the Russian Academy of Sciences

Author for correspondence.
Email: oleg0_0_0@bk.ru
ORCID iD: 0000-0001-5200-4298

Postgraduate student of 2 year of study 

Russian Federation, 29, 9 Yanvarya St., Orenburg, 460000

Elena P Miroshnikova

Federal Research Centre of Biological Systems and Agrotechnologies of the Russian Academy of Sciences

Email: elenaakva@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0003-3804-5151

Dr. Sci. (Biology), Professor, Head of the Department of Biotechnology of Animal Raw Materials and Aquaculture

Russian Federation, 29, 9 Yanvarya St., Orenburg, 460000

Azamat E Arinzhanov

Orenburg State University

Email: arin.azamat@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6534-7118

Department of Biotechnology of Animal Raw Materials and Aquaculture, Cand. Sci. (Agriculture), Associate Professor

Russian Federation, 13 Pobedy Ave, Orenburg, 460018

References

  1. Arinzhanova МS. Ultrafine preparations of trace metals: experience of use and prospects for use in aquaculture (review). Animal Husbandry and Fodder Production. 2022;105(1):8-30. doi: 10.33284/2658-3135-105-1-8
  2. Akhmetova VV, Vasina SB. Assessment of morphological and biochemical blood picture of carps grown in LLC "Fish Farm" in Ulyanovsk district of Ulyanovsk region. Vestnik of Ulyanovsk State Agricultural Academy. 2015;3(31):53-58. doi: 10.18286/1816-4501-3-53-58
  3. Mingazova MS, Miroshnikova EP, Kilyakova YuV, Arinzhanov AЕ. Biological effect of feed additives on carp. Animal Husbandry and Fodder Production. 2023;106(3):121-137. doi: 10.33284/2658-3135-106-3-121
  4. Miroshnikova EP, Arinzhanov AE, Kilyakova YuV, Zueva MS. Effect of probiotic preparations on the growth and development of carp juveniles (Conference proceedings) University complex as a regional center of education, science and culture: Proceedings of the All-Russian scientific-methodical conference, (Orenburg, 26-27 January 2022). Orenburg: OSU; 2022:3509-3513.
  5. Arinzhanova MS, Miroshnikova EP, Arinzhanov AE, Kilyakova YuV. Influence of ultrafine particles of silicon dioxide on the growth and amino acid composition of fish liver. Animal Husbandry and Fodder Production. 2022;105(2):8-16. doi: 10.33284/2658-3135-105-2-8
  6. Kilyakova YuV, Miroshnikova EP, Arinzhanov AE, Arinzhanova MS. Influence of phytobiotic feed additives on growth and morphobiochemical parameters of fish blood. Animal Husbandry and Fodder Production. 2022;105(3):115-125. doi: 10.33284/2658-3135-105-3-115
  7. Ganzha EV. Physiological state of salmon fishes at use of biotechnologies: thesis of dissertation ... Candidate of Biological Sciences. Moscow; 2012:24 p.
  8. Zueva MS. Modern experience of including biologically active feed additives in the diet of fish. Animal Husbandry and Fodder Production. 2022;105(4):146-164. doi: 10.33284/2658-3135-105-4-146
  9. Kulikova OV. Organic aquaculture in Russia: legal and practical issues of development. Agrarian and Land Law. 2022;1(205):57-61. doi: 10.47643/1815-1329_2022_1_57
  10. Lykasova IA, Makarova GP. Impact of nabicate on morphological biochemical parameters of european carp. Vestnik of NGAU (Novosibirsk State Agrarian University). 2019;2(51):90-95. doi: 10.31677/2072-6724-2019-51-2-90-95
  11. Miroshnikova EP, Arinzhanov AE, Kilyakova YV, Zueva MS. Assessment of the elemental status of carp grown on a diet with the inclusion of probiotic preparations. Technologies of the Food and Processing Industry of the Agro–Industrial Complex - Healthy Food Products. 2022;1.83-88. doi. 10.24412/2311-6447-2022-1-83-88
  12. Avarskii ND, Kolonchin KV, Seregin SN, Betin OI. Development of commodity aquaculture in Russia: state and key areas. Economy, Labor, Management in Agriculture. 2020;8(65):74-90. doi: 10.33938/208-74
  13. Timonina EA. Prospects for the development of aquaculture in Russia (Conference proceedings) Contribution of young scientists in the innovative development of agroindustrial complex of Russia: Proceedings of the All-Russian (national) scientific and practical conference of young scientists, (Penza, 20-21 October 2021). Penza: Penza State Agrarian University. 2021;1:168-170.
  14. Bhatti SA, Khan M Z, Saleemi M K, Hassan ZU. Combating immunotoxicity of aflatoxin B1 by dietary carbon supplementation in broiler chickens. Environ. Sci. Pollut. Res. 2021;28:49089-49101. doi: 10.1007/s11356-021-14048-5
  15. Burchacka E, Pstrowka K, Beran E, Fałtynowicz H, Katarzyna C , Kułażyński M. Antibacterial agents adsorbed on active carbon: a new approach for S. aureus and E. coli. pathogen elimination. Pathogens. 2021;10(8):1066. doi: 10.3390/pathogens10081066
  16. Firdus F, Samadi S, Muhammadar AA, Sarong MA, Muchlisin ZA, Sari W, Melli- sa S, Satria S, Boihaqi B, Batubara AS. Supplementation of rice husk activated charcoal in feed and its effects on growth and histology of the stomach and intestines from giant trevally, Caranx ignobilis [version 2; peer review: 2 approved, 1 approved with reservations] F1000Res. 2021;9:1274. doi: 10.12688/f1000research.27036.2
  17. Forgetta V, Rempel H, Malouin F, Vaillancourt R Jr, Topp E, Dewar K, Diarra MS. Pathogenic and multidrug-resistant Escherichia fergusonii from broiler chicken. Poult Sci. 2012;91(2):512-525. doi: 10.3382/ps.2011-01738
  18. Gharaei A, Khajeh M, Khosravanizadeh A, Mirdar J, Fadai R. Fluctuation of biochemical, immunological, and antioxidant biomarkers in the blood of beluga (Huso huso) under effect of dietary ZnO and chitosan-ZnO NPs. Fish Physiology and Biochemistry. 2020;46(2):547-561. doi: 10.1007/s10695-019-00726-2
  19. González JD, Silva-Marrero JI, Metón I, Caballero-Solares A, Viegas I, Fernández F, Miñarro M, Fàbregas A, Ticó JR, Jones JG, Baanante IV. Chitosan-mediated shRNA knockdown of cytosolic alanine aminotransferase improves hepatic carbohydrate metabolism. Marine Biotechnology. 2016;18(1):85-97. doi: 10.1007/s10126-015-9670-8
  20. Gonzalez Ronquillo M, Angeles Hernandez JC. Antibiotic and synthetic growth promoters in animal diets: review of impact and analytical methods. Food Control. 2017;72(Part B):255-267. doi: 10.1016/j.foodcont.2016.03.001
  21. Hai NV. The use of probiotics in aquaculture. Journal of Applied Microbiology. 2015;119(4):917-935. doi: 10.1111/jam.12886
  22. Hassaan MS, Soltan MA, Mohammady EY, Elashry MA, El-Haroun ER, Davies SJ. Growth and physiological responses of Nile tilapia, Oreochromis niloticus fed dietary fermented sunflower meal inoculated with Saccharomyces cerevisiae and Bacillus subtilis. Aquaculture. 2018;495:592-601. doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.06.018
  23. Hassan M, Wang Y, Rajput SA, Shaukat A, Yang P, Farooq MZ, Cheng Q, Ali M, Mi X, An Y, Qi D. Ameliorative effects of Luteolin and activated charcoal on growth performance, immunity function, and antioxidant capacity in broiler chickens exposed to deoxynivalenol. Toxins. 2023;15(8):478. doi: 10.3390/toxins15080478
  24. Joseph S, Husson O, Graber E, Van Zwieten L, Taherymoosavi S, Thomas T, Nielsen S, Ye J, Pan G, Chia C, Munroe P, Allen J, Lin Y, Fan X, Donne S. The electrochemical properties of biochars and how they affect soil redox properties and processes. Agronomy. 2015;5(3):322-340. doi: 10.3390/agronomy5030322
  25. Kesbic OS, Acar U, Hassaan MS, Yilmaz S, Guerrera MC, Fazio F. Effects of tomato paste by-product extract on growth performance and blood parameters in common carp (Cyprinus carpio). Animals (Basel). 2022;12(23):3387. doi: 10.3390/ani12233387
  26. Khatoon A, Khan MZ, Abidin ZU, Bhatti SA. Effects of feeding bentonite clay upon ochratoxin A-induced immunosuppression in broiler chicks. Food Addit Contam Part A Chem Anal Control Expo. 2018;35(3):538-545. doi: 10.1080/19440049.2017.1411612
  27. Lin J. Antibiotic growth promoters enhance animal production by targeting intestinal bile salt hydrolase and its producers. Frontier Microbiology. 2014;5:33. doi: 10.3389/fmicb.2014.00033
  28. Ma L, Kaneko G, Xie J, Wang G, Li Z, Tian J, Zhang K, Xia Y, Gong W, Li H, Yu E. Safety evaluation of four faba bean extracts used as dietary supplements in grass carp culture based on hematological indices, hepatopancreatic function and nutritional condition. PeerJ. 2020;8:e9516. doi: 10.7717/peerj.9516
  29. Ni M, Liu M, Lou J, Mi G, Yuan J, Gu Z. Stocking density alters growth performance, serum biochemistry, digestive enzymes, immune response, and muscle quality of largemouth bass (Micropterus salmoides) in in-pond raceway system. Fish Physiology and Biochemistry. 2021;47(4):1243-1255. doi: 10.1007/s10695-021-00948-3
  30. Oso AO, Akapo O, Sanwo K A, Bamgbose AM. Utilization of unpeeled cassava (Manihot esculenta Crantz) root meal supplemented with or without charcoal by broiler chickens. J Anim Physiol Anim Nutr (Berl.). 2014;98:431-438. doi: 10.1111/jpn.12088
  31. Patriarca A Fernández Pinto V. Prevalence of mycotoxins in foods and decontamination. Current Opinion in Food Science. 2017;14:50-60. doi: 10.1016/j.cofs.2017.01.011
  32. Quin P, Joseph S, Husson O, Donne S, Mitchell D, Munroe P, Phelan D, Cowie A, Van Zwieten L. Lowering N2O emissions from soils using eucalypt biochar: the importance of redox reactions. Scientific Reports. 2015;5(1):16773. doi: 10.1038/srep16773
  33. Schvezov N, Wilson RW, Urbina MA. Oxidative damages and antioxidant defences after feeding a single meal in rainbow trout. J Comp Physiol B. 2022 Jul;192(3-4):459-471. doi: 10.1007/s00360-022-01435-8
  34. Simakova IV, Vasiliev AA, Korsakov KV, Sivokhina LA, Salautin VV, Gulyaeva LY, Dmitriev NO. Role of humic substances in formation of safety and quality of poultry meat. In: Makan A, editor. Humic Substances. UK, London: IntechOpen; 2021; P. 1-17. doi: 10.5772/intechopen.96595
  35. Singh J, Gaikwad DS. Phytogenic feed additives in animal nutrition. Singh J, Yadav AN, editors. Natural bioactive products in sustainable agriculture. Singapore: Springer; 2020:273-289. doi: 10.1007/978-981-15-3024-1_13
  36. Xu M, Wang T, Wang J, Wan W, Wang Z, Guan D, Sun H. An evaluation of mixed plant protein in the diet of Yellow River carp (Cyprinus carpio): growth, body composition, biochemical parameters, and growth hormone/insulin-like growth factor 1. Fish Physiol Biochem. 2019;45(4):1331-1342. doi: 10.1007/s10695-019-00641-6
  37. Yang Q, Gao Y, Ke J, Show PL, Ge Y, Liu Y, Guo R, Chen J. Antibiotics: An overview on the environmental occurrence, toxicity, degradation, and removal methods. Bioengineered. 2021;12(1):7376-7416. doi: 10.1080/21655979.2021.1974657
  38. Yang Z, Huang S, Kong W, Chen L, Priakhina E, Khatoon Z, Ashraf M, Akram W. Effects of fish feed addition scenarios with prometryn on Microcystis aeruginosa growth and water qualities. Ecotoxicol Environ Saf. 2021;209:111810. doi: 10.1016/j.ecoenv.2020.111810

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download
2. Figure 1. Dynamics of live weight of trout in the experimental groups compared with the control group, %

Download (317KB)
Indexing metadata

Copyright (c) 2024 Inshin O.V., Miroshnikova E.P., Arinzhanov A.E.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies