Роль мембранных компонентов в инициации и прогрессии опухолевого роста при раке эндометрия
- Авторы: Атаджанов И.Б.1,2, Гуськова О.Н.1,3, Шестакова В.Г.1
-
Учреждения:
- ФГБОУ ВО «Тверской государственный медицинский университет» Минздрава России
- ГБУЗ «Тверской областной онкологический диспансер»
- ФБГУЗ МСЧ №57 ФМБА России
- Выпуск: Том 10, № 2 (2025)
- Страницы: 92-99
- Раздел: Патологическая анатомия
- URL: https://journals.rcsi.science/2500-1388/article/view/316059
- DOI: https://doi.org/10.35693/SIM678261
- ID: 316059
Цитировать
Аннотация
В настоящем обзоре мы предприняли попытку систематизировать значение мембранных компонентов в инициации и прогрессии опухолевого роста при раке эндометрия. Клетки, составляющие субстрат опухолевого роста, подвержены множеству взаимодействий как между собой, так и с опухолевым микроокружением. Наблюдается упрощение антигенной структуры клеточной мембраны опухолевых клеток, экспрессия молекул, характерных в том числе для эмбриональных тканей, изменение свойств межклеточных контактов, поддерживающих эпителиальный гомеостаз. Плотные контакты составляют основу сохранения нормальной гистоархитектоники. Изменения их свойств, выраженные в замене одних компонентов другими, определяют механические свойства опухолевых клеток, для которых характерны инвазивный рост и метастазирование. Помимо этого, компоненты плотных контактов являются участниками внутриклеточных путей передачи сигнала. Перспективными, на наш взгляд, выглядят исследования роли белков-клаудинов, являющихся компонентами плотных соединений. В этом обзоре мы собрали имеющиеся сведения о клаудинах как о компонентах клеточных контактов и участниках внутриклеточной сигнализации. В патогенезе эндометриального рака немаловажной характеристикой является эпителиально-мезенхимальная трансформация (ЭМТ), широко представленная в нормальных тканях в процессах, связанных с репарацией. Изменение характеристик E-кадгерина и β-катенина не могло быть не рассмотрено в рамках обсуждения роли ЭМТ в прогрессии рака эндометрия. Кроме того, исследователи все больше обращают внимание на E-кадгерин как компонент путей активации онкогенов. Известно, что в основе эндометриального рака I типа лежит гиперэстрогенемия (высокие сывороточные урови эстрогенов). Рецепторы эстрогена, бесспорно, включены во внутриклеточную сигнализацию, активирующую пролиферацию клеток в норме и патологии. Кроме того, недавние исследования указывают на другие таргетные для эстрогенов молекулы. Таковыми являются клаудины. Изменение профилей экспрессии клаудинов под влиянием половых гормонов выражаются как в снижении, так и в замещении одного белка другим. Несомненно, дальнейшее изучение маркеров, ассоциированных с клеточной мембраной, может уточнить биологические свойства опухоли и служить основой поиска таргетных молекул для разработки новых путей терапии рака эндометрия.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Ильяс Борисович Атаджанов
ФГБОУ ВО «Тверской государственный медицинский университет» Минздрава России; ГБУЗ «Тверской областной онкологический диспансер»
Автор, ответственный за переписку.
Email: atadzanov.ilyas@ya.ru
ORCID iD: 0000-0003-1995-2661
ординатор кафедры патологической анатомии
Россия, Тверь; ТверьО. Н. Гуськова
ФГБОУ ВО «Тверской государственный медицинский университет» Минздрава России; ФБГУЗ МСЧ №57 ФМБА России
Email: guskovaon@tvgmu.ru
ORCID iD: 0000-0003-1635-7533
канд. мед. наук, доцент, заведующая кафедрой патологической анатомии
Россия, Тверь; Редкино, Тверская областьВ. Г. Шестакова
ФГБОУ ВО «Тверской государственный медицинский университет» Минздрава России
Email: shestvg@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1136-7396
д-р мед. наук, доц., зав. каф., каф. анатомии, гистологии и эмбриологии
Россия, ТверьСписок литературы
- Kaprin AD, Starinsky VV, Shakhzadova AO. Malignant Neoplasms in Russia in 2023 (incidence and mortality). M., 2024. (In Russ.). [Каприн А.Д., Старинский В.В., Шахзадова А.О. Злокачественные новообразования в России в 2023 году (заболеваемость и смертность). М., 2024].
- Rosai J. Rosai and Ackerman’s Surgical Pathology E-Book. 10th Edition. Elsevier Health Sciences. 2011. URL: https://books.google.ru/books?id=1CKX7aGBbUsC
- Getz G, Gabriel SB, Cibulskis K, et al. Integrated genomic characterization of endometrial carcinoma. Nature. 2013;497(7447):67-73. doi: 10.1038/nature12113
- Furuse M, Izumi Y, Oda Y, et al. Molecular organization of tricellular tight junctions. Tissue Barriers. 2014;2(3):e28755-1-e28755-6. doi: 10.4161/tisb.28960
- Saito T, Tanaka R, Wataba K, et al. Overexpression of estrogen receptor-α gene suppresses gap junctional intercellular communication in endometrial carcinoma cells. Oncogene. 2004;23(5):1109-1116. doi: 10.1038/sj.onc.1207215
- Jahn E, Classen-Linke I, Kusche M, et al. Expression of gap junction connexins in the human endometrium throughout the menstrual cycle. Human Reproduction. 1995;10(10):2666-2670. doi: 10.1093/oxfordjournals.humrep.a135764
- Owusu-Akyaw A, Krishnamoorthy K, Goldsmith LT, Morelli SS. The role of mesenchymal-epithelial transition in endometrial function. Hum Reprod Update. 2019;25(1):114-133. doi: 10.1093/humupd/dmy035
- Lamouille S, Xu J, Derynck R. Molecular mechanisms of epithelial-mesenchymal transition. Nat Rev Mol Cell Biol. 2014;15(3):178-196. doi: 10.1038/nrm3758
- Kohno T, Kojima T. Atypical Macropinocytosis Contributes to Malignant Progression: A Review of Recent Evidence in Endometrioid Endometrial Cancer Cells. Cancers (Basel). 2022;14(20):5056. doi: 10.3390/cancers14205056
- Kyuno T, Kyuno D, Kohno T, et al. Tricellular tight junction protein LSR/angulin-1 contributes to the epithelial barrier and malignancy in human pancreatic cancer cell line. Histochem Cell Biol. 2020;153(1):5-16. doi: 10.1007/s00418-019-01821-4
- Arai W, Konno T, Kohno T, et al. Downregulation of Angulin-1/LSR Induces Malignancy via Upregulation of EGF-Dependent Claudin-2 and TGF-β-Dependent Cell Metabolism in Human Lung Adenocarcinoma A549 Cells. Oncotarget. 2023:14:261-275. doi: 10.18632/oncotarget.27728
- Konno T, Kohno T, Okada T, et al. ASPP2 suppression promotes malignancy via LSR and YAP in human endometrial cancer. Histochem Cell Biol. 2020;154(2):197-213. doi: 10.1007/s00418-020-01876-8
- Chen X, An Y, Gao Y, et al. Rare Deleterious PARD3 Variants in the aPKC-Binding Region are Implicated in the Pathogenesis of Human Cranial Neural Tube Defects Via Disrupting Apical Tight Junction Formation. Hum Mutat. 2017;38(4):378-389. doi: 10.1002/humu.23153
- Peng J, Li X, Zhang Y, et al. Par3/integrin β1 regulates embryo adhesion via changing endometrial luminal epithelium polarity. Biol Reprod. 2021;104(6):1228-1238. doi: 10.1093/biolre/ioab033
- Shimada H, Kohno T, Konno T, et al. The Roles of Tricellular Tight Junction Protein Angulin-1/Lipolysis-Stimulated Lipoprotein Receptor (LSR) in Endometriosis and Endometrioid-Endometrial Carcinoma. Cancers (Basel). 2021;13(24):6341. doi: 10.3390/cancers13246341
- King JS, Kay RR. The origins and evolution of macropinocytosis. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 2019;374(1765). doi: 10.1098/rstb.2018.0158
- Banin VV. Mechanisms of exchange of the internal environment. M., 2000. (In Russ.). [Банин В.В. Механизмы обмена внутренней среды. M., 2000].
- Yan X, Liu Z, Chen Y. Regulation of TGF-β signaling by Smad7. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai). 2009;41(4):263-272. doi: 10.1093/abbs/gmp018
- Uhlen M, Zhang C, Lee S, et al. A pathology atlas of the human cancer transcriptome. Science (1979). 2017;357(6352):eaan2507. doi: 10.1126/science.aan2507
- Horiguchi K, Shirakihara T, Nakano A, et al. Role of Ras signaling in the induction of snail by transforming growth factor-β. Journal of Biological Chemistry. 2009;284(1):245-253. doi: 10.1074/jbc.M804777200
- Eskandari E, Mahjoubi F, Motalebzadeh J. An integrated study on TFs and miRNAs in colorectal cancer metastasis and evaluation of three co-regulated candidate genes as prognostic markers. Gene. 2018;679:150-159. doi: 10.1016/j.gene.2018.09.003
- Shelton DN, Fornalik H, Neff T, et al. The role of LEF1 in endometrial gland formation and carcinogenesis. PLoS One. 2012;7(7). doi: 10.1371/journal.pone.0040312
- Litvinov S V, Velders MP, Bakker HA, et al. Ep-CAM: a human epithelial antigen is a homophilic cell-cell adhesion molecule. Journal of Cell Biology. 1994;125(2):437-446. doi: 10.1083/jcb.125.2.437
- Maetzel D, Denzel S, Mack B, et al. Nuclear signalling by tumour-associated antigen EpCAM. Nat Cell Biol. 2009;11(2):162-171. doi: 10.1038/ncb1824
- Hsu YT, Osmulski P, Wang Y, et al. EpCAM-regulated transcription exerts influences on nanomechanical properties of endometrial cancer cells that promote epithelial-to-mesenchymal transition. Cancer Res. 2016;76(21):6171-6182. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-16-0752
- Ahn J Il, Yoo JY, Kim TH, et al. G-protein coupled receptor 64 (GPR64) acts as a tumor suppressor in endometrial cancer. BMC Cancer. 2019;19(1):810. doi: 10.1186/s12885-019-5998-1
- Harvey KF, Zhang X, Thomas DM. The Hippo pathway and human cancer. Nat Rev Cancer. 2013;13(4):246-257. doi: 10.1038/nrc3458
- Shen X, Li Q, Sun Y, et al. The Hippo pathway in endometrial cancer: a potential therapeutic target? Front Oncol. 2023;13:1273345. doi: 10.3389/fonc.2023.1273345
- Zanconato F, Cordenonsi M, Piccolo S. YAP/TAZ at the Roots of Cancer. Cancer Cell. 2016;29(6):783-803. doi: 10.1016/j.ccell.2016.05.005
- Totaro A, Panciera T, Piccolo S. YAP/TAZ upstream signals and downstream responses. Nat Cell Biol. 2018;20(8):888-899. doi: 10.1038/s41556-018-0142-z
- Wang T, Wang M, Fang S, et al. Fibulin-4 Is Associated with Prognosis of Endometrial Cancer Patients and Inhibits Cancer Cell Invasion and Metastasis via Wnt/β-Catenin Signaling Pathway. Oncotarget. 2017;8(12):18991-19012. doi: 10.18632/oncotarget.15086
- Gallagher WM, Argentini M, Ronique Sierra V, et al. MBP1: A Novel Mutant P53-Specific Protein Partner with Oncogenic Properties. Oncogene. 1999;18(24):3608-16. doi: 10.1038/sj.onc.1202937
- Song EL, Hou YP, Yu SP, et al. EFEMP1 expression promotes angiogenesis and accelerates the growth of cervical cancer in vivo. Gynecol Oncol. 2011;121(1):174-180. doi: 10.1016/j.ygyno.2010.11.004
- Li X, Deng W, Nail CD, et al. Snail induction is an early response to Gli1 that determines the efficiency of epithelial transformation. Oncogene. 2006;25(4):609-621. doi: 10.1038/sj.onc.1209077
- Du H, Yang X, Fan J, Du X. Claudin 6: Therapeutic prospects for tumours, and mechanisms of expression and regulation (Review). Mol Med Rep. 2021;24(3):677. doi: 10.3892/mmr.2021.12316
- Sobel G, Németh J, Kiss A, et al. Claudin 1 differentiates endometrioid and serous papillary endometrial adenocarcinoma. Gynecol Oncol. 2006;103(2):591-598. doi: 10.1016/j.ygyno.2006.04.005
- Gowrikumar S, Singh AB, Dhawan P. Role of claudin proteins in regulating cancer stem cells and chemoresistance-potential implication in disease prognosis and therapy. Int J Mol Sci. 2020;21(1):53. doi: 10.3390/ijms21010053
- Stadler CR, Bähr-Mahmud H, Plum LM, et al. Characterization of the first-in-class T-cell-engaging bispecific single-chain antibody for targeted immunotherapy of solid tumors expressing the oncofetal protein claudin 6. Oncoimmunology. 2016;5(3):e1091555. doi: 10.1080/2162402X.2015.1091555
- Ben-David U, Nudel N, Benvenisty N. Immunologic and chemical targeting of the tight-junction protein Claudin-6 eliminates tumorigenic human pluripotent stem cells. Nat Commun. 2013;4(1):1992. doi: 10.1038/ncomms2992
- Wu Q, Liu Y, Ren Y, et al. Tight junction protein, claudin-6, downregulates the malignant phenotype of breast carcinoma. European Journal of Cancer Prevention. 2010;19(3):186-194. doi: 10.1097/CEJ.0b013e328337210e
- Someya M, Kojima T, Ogawa M, et al. Regulation of tight junctions by sex hormones in normal human endometrial epithelial cells and uterus cancer cell line Sawano. Cell Tissue Res. 2013;354(2):481-494. doi: 10.1007/s00441-013-1676-9
- Zhang C, Guo C, Li Y, et al. Identification of Claudin-6 as a Molecular Biomarker in Pan-Cancer Through Multiple Omics Integrative Analysis. Front Cell Dev Biol. 2021;9:726656. doi: 10.3389/fcell.2021.726656
- Cuevas ME, Gaska JM, Gist AC, et al. Estrogen-dependent expression and subcellular localization of the tight junction protein claudin-4 in HEC-1A endometrial cancer cells. Int J Oncol. 2015;47(2):650-656. doi: 10.3892/ijo.2015.3030
- Zeng R, Li X, Gorodeski GI. Estrogen Abrogates Transcervical Tight Junctional Resistance by Acceleration of Occludin Modulation. J Clin Endocrinol Metab. 2004;89(10):5145-5155. doi: 10.1210/jc.2004-0823
- Buck VU, Windoffer R, Leube RE, Classen-Linke I. Redistribution of adhering junctions in human endometrial epithelial cells during the implantation window of the menstrual cycle. Histochem Cell Biol. 2012;137(6):777-790. doi: 10.1007/s00418-012-0929-0
Дополнительные файлы
