Электрическая активность матки крыс в разные фазы эстрального цикла
- Авторы: Руткевич С.А.1,2, Пигуль П.Г.1, Пониматько Ю.Д.1, Казакевич В.Б.1,2, Верес И.А.2, Сидоров А.В.1, Чумак А.Г.1
-
Учреждения:
- Белорусский государственный университет
- Белорусский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 111, № 2 (2025)
- Страницы: 306-319
- Раздел: ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- URL: https://journals.rcsi.science/0869-8139/article/view/287707
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0869813925020082
- EDN: https://elibrary.ru/UINBFY
- ID: 287707
Цитировать
Аннотация
В острых, проведенных под уретановым наркозом опытах на половозрелых небеременных самках крыс (n = 36) изучен паттерн электрической активности матки в разные фазы эстрального цикла, определяемые по цитологической картине окрашенных красителем Романовского вагинальных мазков. Регистрацию электрогистерограмм проводили при помощи прижимных биполярных электродов (отведение от средней трети левого рога матки). Повышение возбудимости и проводимости гладких миоцитов матки приходится на периоды проэструса, эструса и метэструса, а их угнетение наблюдается в диэструс. Максимальная по сравнению с диэструсом амплитуда моторных потенциалов была выявлена на стадии про- (174 ± 17 мкВ) и метэструса (202 ± 0 мкВ), а их частота – на стадиях метэструса [4.4 (4.0; 5.0) Гц] и эструса [4.0 (4.0; 5.0) Гц], в среднем двукратно превышая аналогичные показатели для диэструса (86 ± 9 мкВ) и 1.9 (1.3; 3.2 Гц). Для стадий проэструса и эструса длительность залпов потенциалов была максимальной [40 (32; 50) c] и [36 (28; 47) с], а периода покоя – минимальной [46 (40; 55)c] и [42 (26; 84) с], что находит свое отражение в высоких значениях коэффициента заполнения периода, равного 0.46 (0.43; 0.50) и 0.45 (0.26; 0.63) соответственно. Аналогичные показатели для стадии диэструса составили 27 (22; 32) и 80 (58; 124) с, 0.27 (0.18; 0.34). Предполагается, что наибольшая возбудимость миометрия и его ритмогенных областей в период метэструса, увеличение скорости проведения возбуждения в миометрии в проэструс и эструс происходит за счет увеличения степени электрической сопряженности составляющих его клеток.
Ключевые слова
Полный текст

Об авторах
С. А. Руткевич
Белорусский государственный университет; Белорусский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: rutkevitch@inbox.ru
Белоруссия, Минск; Минск
П. Г. Пигуль
Белорусский государственный университет
Email: rutkevitch@inbox.ru
Белоруссия, Минск
Ю. Д. Пониматько
Белорусский государственный университет
Email: rutkevitch@inbox.ru
Белоруссия, Минск
В. Б. Казакевич
Белорусский государственный университет; Белорусский государственный медицинский университет
Email: rutkevitch@inbox.ru
Белоруссия, Минск; Минск
И. А. Верес
Белорусский государственный медицинский университет
Email: rutkevitch@inbox.ru
Белоруссия, Минск
А. В. Сидоров
Белорусский государственный университет
Email: rutkevitch@inbox.ru
Белоруссия, Минск
А. Г. Чумак
Белорусский государственный университет
Email: rutkevitch@inbox.ru
Белоруссия, Минск
Список литературы
- Wray S, Prendergast C (2019) The myometrium: from excitation to contractions and labour. Adv Exp Med Biol 1124: 233–263. https://doi.org/10.1007/978-981-13-5895-1_10
- Aguilar HN, Mitchell BF (2010) Physiological pathways and molecular mechanisms regulating uterine contractility. Hum Reprod Update 16: 725–744. https://doi.org/10.1093/humupd/dmq016
- Wray S, Arrowsmith S (2021) Uterine excitability and ion channels and their changes with gestation and hormonal environment. Annu Rev Physiol 83: 331–357. https://doi.org/10.1146/annurev-physiol-032420-035509
- Черток ВM, Храмова ИА, Коцюба АЕ (2020) Газотрансмиттеры в регуляции функций внутриорганных кровеносных сосудов матки. Морфология 157: 98–111 [Chertok VM, Khramova IA, Kotsyuba AE (2020) Gasotransmitters in the regulation of the functions of the intraorganic blood vessels of the uterus. Morphology 157: 98–111. (In Russ)]. https://doi.org/10.34922/AE.2020.157.1.015
- Arrowsmith S, Kendrick A, Hanley JA, Noble K, Wray S (2014) Myometrial physiology – time to translate? Exp Physiol 99: 495–502. https://doi.org/10.1113/expphysiol.2013.076216
- Garrett AS, Roesler MW, Athavale ON, Du P, Means SA, Clark AR, Cheng LK (2024) Multichannel mapping of in vivo rat uterine myometrium exhibits both high and low frequency electrical activity in non-pregnancy. Sci Rep 14: 7316. https://doi.org/10.1038/s41598-024-57734-3
- Hutchings G, Williams O, Cretoiu D, Ciontea SM (2009) Myometrial interstitial cells and the coordination of myometrial contractility. J Cell Mol Med 13: 4268–4282. https://doi.org/10.1111/j.1582-4934.2009.00894
- Smith CC, Cizza G, Gomez M, Greibler C, Gold PW, Sternberg EM (1994) The estrous cycle and pituitary-ovarian function in Lewis and Fischer rats. Neuroimmunomodulation 1: 231–235. https://doi.org/10.1159/000097170
- Cora MC, Kooistra L, Travlos G (2015) Vaginal Cytology of the Laboratory Rat and Mouse: Review and Criteria for the Staging of the Estrous Cycle Using Stained Vaginal Smears. Toxicol Pathol 43: 776–793. https://doi.org/10.1177/0192623315570339
- Goldman JM, Murr AS, Cooper RL (2007) The rodent estrous cycle: characterization of vaginal cytology and its utility in toxicological studies. Birth Defects Res B Dev Reprod Toxicol 80: 84–97. https://doi.org/10.1002/bdrb.20106
- Wray S, Jones K, Kupittayanant S, Li Y, Matthew A, Monir-Bishty E, Noble K, Pierce SJ, Quenby S, Shmygol AV (2003) Calcium signaling and uterine contractility. J Soc Gynecol Invest 10: 252–264. https://doi.org/10.1016/s1071-5576(03)00089-3
- Malik M, Roh M, England SK (2021) Uterine contractions in rodent models and humans. Acta Physiol 231: e13607. https://doi.org/10.1111/apha.13607
- Карева ЕН, Булгакова ВА, Гуторова ДС, Олейникова ОМ, Кононова ИН, Горбунов АА, Бреусенко ВГ, Фисенко ВП (2020) Мембранный рецептор прогестерона PGRMC1 – потенциальная мишень лекарственных средств. Экспер клин фармакол 83(6): 19–29 [Kareva EN, Bulgakova VA, Gutorova DS, Olejnikova OM, Kononova IN, Gorbunov AA, Breusenko VG, Fisenko VP (2020) The membrane-bound progesterone receptor PGRMC1 is a potential drug target. Exp Clin Pharmacol 83(6): 19–29. (In Russ)]. https://doi.org/10.30906/0869-2092-2020-83-6-19-29
- Кузьминых ТУ, Борисова ВЮ, Николаенков ИП, Козонов ГР, Толибова ГХ (2019) Роль биологически активных молекул в развитии сократительной деятельности матки. Журн акушер и женск болезн 68: 21–27 [Kuz'minyh TU, Borisova VYu, Nikolaenkov IP, Kozonov GR, Tolibova GH (2019) The role of biologically active molecules in the development of uterine contractile activity]. J Obstetrics Female Diseas 68: 21–27. (In Russ)]. https://doi.org/10.17816/JOWD68121-27
- Arthur P, Taggart MJ, Mitchell BF (2007) Oxytocin and parturition: A role for increased myometrial calcium and calcium sensitization? Front Biosci 12: 619–633. https://doi.org/10.2741/2087
- Domino M, Pawlinski B, Gajewski Z (2017) Biomathematical pattern of EMG signal propagation in smooth muscle of the non-pregnant porcine uterus. PLoS One 12: e0173452. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0173452.
- Zhang Y, Qian J, Zaltzhendler O, Bshara M, Jaffa AJ, Grisaru D, Duan E, Elad D (2019) Analysis of in vivo uterine peristalsis in the non-pregnant female mouse. Interface Focus 9: 20180082. https://doi.org/10.1098/rsfs.2018.0082
- Domino M, Pawlinski B, Gajewska M, Jasinski T, Sady M, Gajewski Z (2018) Uterine EMG activity in the non-pregnant sow during estrous cycle. BMC Vet Res 14: 176. https://doi.org/10.1186/s12917-018-1495-z
- Young RC (2007) Myocytes, myometrium, and uterine contractions. Ann N Y Acad Sci 1101: 72–84. https://doi.org/10.1196/annals.1389.038
- Wray S, Noble K (2008) Sex hormones and excitation-contraction coupling in the uterus: The effects of oestrous and hormones. J Neuroendocrinol 20: 451–461. https://doi.org/10.1111/j.1365-2826.2008.01665.x
- Толибова ГX, Константинова НН (2007) Экспериментальные исследования сократительной активности матки. Журн акушер и женск болезн 56(3): 134–143 [Tolibova GX, Konstantinova NN (2007) Experimental studies of uterine contractile activity. J Obstetrics Female Diseas 56(3): 134–143. (In Russ)].
- Young RC (2018) The uterine pacemaker of labor. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol 52: 68–87. https://doi.org/10.1016/j.bpobgyn.2018.04.002
- Maul H, Maner WL, Saade GR, Garfield RE (2003) The physiology of uterine contractions. Clin Perinatol 30: 665–676. https://doi.org/10.1016/s0095-5108(03)00105-2
- Rabotti C, Mischi M (2015) Propagation of electrical activity in uterine muscle during pregnancy: a review. Acta Physiol 213: 406–416. https://doi.org/10.1111/apha.12424
- Sidorov AV, Kazakevich VB, Moroz LL (1999) Nitric oxide selectively enhances cAMP levels and electrical coupling between identified RPaD2/VD1 neurons in the CNS of Lymnaea stagnalis (L.). Acta Biol Hung 50: 229–233. https://doi.org/10.1007/BF03543044
- Kazaryan KV, Piliposyan TA, Unanyan NG, Mkrtchyan EKh (2017) The role of the ovarian horn locus in regulation of spontaneous electric activity of myometrial rhythmogenic areas. J Evol Biochem Phys 53: 414–422. https://doi.org/10.1134/S0022093017050076
- Казарян КВ, Унанян НГ, Пилипосян ТА (2016) Синхронизация электрической активности ритмогенных областей миометрия при воздействии окситоцина. Рос физиол журн им ИМ Сеченова 102(3): 317–329. [Kazaryan KV, Unanyan NG, Piliposyan TA (2016) Synchronization of electrical activity of rhythmogenic areas of the myometrium under the influence of oxytocin. Russ J Physiol 102(3): 317–329. (In Russ)].
- Garfield RE, Ali M, Yallampalli C, Izumi H (1995) Role of gap junctions and nitric oxide in control of myometrial contractility. Semin Perinatol 19: 41–51. https://doi.org/10.1016/s0146-0005(95)80046-8
- Rengarajan A, Mauro AK, Boeldt DS (2020) Maternal disease and gasotransmitters. Nitric Oxide 96: 1–12. https://doi.org/10.1016/j.niox.2020.01.001
- Bao S, Rai J, Schreiber J (2002) Expression of nitric oxide synthase isoforms in human pregnant myometrium at term. J Soc Gynecol Invest 9: 351–356. https://doi.org/10.1177/107155760200900605
Дополнительные файлы
