Инновационные радиофармпрепараты в диагностике и радионуклидной терапии злокачественных новообразований

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В статье освещаются тенденции развития ядерной медицины в онкологии. Главные тренды современной радиофармацевтики неразрывно связаны с тераностикой — использованием радиофармацевтических лекарственных препаратов, которые получены на основе единого вектора доставки, меченного диагностическими и терапевтическими радионуклидами. В ядерной медицине такой подход применяется для индивидуализации и планирования радионуклидной терапии. Автор представляет результаты собственных исследований, направленных на разработку радиофармпрепаратов для диагностики и радионуклидной терапии злокачественных новообразований.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Владимир Иванович Чернов

Научно-исследовательский институт онкологии — филиал Томского национального исследовательского медицинского центра РАН; Национальный исследовательский Томский политехнический университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: chernov@tnimc.ru

член-корреспондент РАН, заместитель директора по научной и инновационной работе, заведующий отделением радионуклидной диагностики НИИ онкологии Томского НИМЦ

Россия, Томск; Томск

Список литературы

  1. Состояние онкологической помощи населению России в 2019 году // Под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, А.О. Шахзадовой. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена, 2020.
  2. Национальное руководство по радионуклидной диагностике. В 2 т. // Под ред. Ю.Б. Лишманова, В.И. Чернова. Томск: STT, 2010.
  3. Tolmachev V.M., Chernov V.I., Deyev S.M. Targeted nuclear medicine. See and destroy // Russ. Chem. Rev. 2022. V. 91. RCR5034.
  4. Чернов В.И., Медведева А.А., Синилкин И.Г. и др. Ядерная медицина в диагностике и адресной терапии злокачественных новообразований // Бюллетень сибирской медицины. 2018. Т. 17 (1). С. 220–231.
  5. Wester H.J., Kessler H. Molecular Targeting with Peptides or Peptide-Polymer Conjugates: Just a Question of Size? // Journal of Nuclear Medicine December. 2005. V. 46 (12). P. 1940–1945.
  6. Чернов В.И., Брагина О.Д., Синилкин И.Г. и др. Радиоиммунотерапия в лечении злокачественных образований // Сибирский онкологический журнал. 2016. № 2. С. 101–106.
  7. Чернов В.И., Брагина О.Д., Синилкин И.Г. и др. Радиоиммунотерапия: современное состояние проблемы // Вопросы онкологии. 2016. № 1. С. 24–30.
  8. Wiseman G., White C., Stabin M. et al. Phase I/II 90Y-Zevalin (yttrium-90 ibritumomab tiuxetan, IDEC-Y2B8) radioimmunotherapy dosimetry results in relapsed or refractory non-Hodgkin’s lymphoma // Eur. J. Nucl. Med. 2000. V. 27. P. 766–777.
  9. Walter R.B. Where do we stand with radioimmunotherapy for acute myeloid leukemia? // Expert Opin. Biol. Ther. 2022. V. 22 (5). P. 555–561.
  10. Bragina O., Chernov V., Schulga A. et al. Phase I trial of 99mTc-(HE)3-G3, a DARPin-based probe for imaging of HER2 expression in breast cancer // Journal of Nuclear Medicine. 2022. V. 63. P. 528–535.
  11. Bragina O., von Witting O., Garousi J. et al. Phase I Study of 99mTc-ADAPT6, a Scaffold Protein–Based Probe for Visualization of HER2 Expression in Breast Cancer // Journal of Nuclear Medicine. 2021. V. 62 (4). P. 493–499.
  12. Dijkers E.C., Oude Munnink T.H., Kosterink J.G. et al. Biodistribution of 89Zr-trastuzumab and PET imaging of HER2-positive lesions in patients with metastatic breast cancer // Clin. Pharmacol. Ther. 2010. V. 87 (5). P. 586–592.
  13. Garousi J., von Witting E., Borin J. et al. Radionuclide therapy using ABD-fused ADAPT scaffold protein: Proof of Principle // Biomaterials. 2021. V. 266. 120381.
  14. Virgolini I. et al. Somatostatin receptor subtype specificity and in vivo binding of a novel tumor tracer, 99mTc-P829 // Cancer Res. 1998. V. 58. P. 1850–1859.
  15. Strosberg J.R., Fine R.L., Choi J. et al. First-line chemotherapy with capecitabine and temozolomide in patients with metastatic pancreatic endocrine carcinomas // Cancer. 2011. V. 117. P. 268–275.
  16. Wild D., Mäcke H.R., Waser B. et al. 68Ga-DOTANOC: a first compound for PET imaging with high affinity for somatostatin receptor subtypes 2 and 5 // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2005. V. 32. P. 724.
  17. Pfeifer A., Knigge U., Mortensen J. et al. Clinical PET of neuroendocrine tumors using 64Cu-DOTATATE: first-in-humans study // Journal of Nuclear Medicine. 2012. V. 53. P. 1207–1215.
  18. Meisetschläger G., Poethko T., Stah A. et al. Gluc-Lys([18F]FP)-TOCA PET in patients with SSTR-positive tumors: biodistribution and diagnostic evaluation compared with [111In] DTPA-octreotide // Journal of Nuclear Medicine. 2006. V. 47. P. 566–573.
  19. Ambrosini V., Campana D., Bodei L. et al. 68Ga-DOTANOC PET/CT clinical impact in patients with neuroendocrine tumors // Journal of Nuclear Medicine. 2010. V. 51. P. 669–673.
  20. Ezziddin S., Lohmar J., Yong-Hing C.J. et al. Does the pretherapeutic tumor SUV in 68Ga DOTATOC PET predict the absorbed dose of 177Lu octreotate? // Clinical Nuclear Medicine. 2012. V. 37. P. 141–147.
  21. Fendler W.P., Eiber M., Beheshti M. et al. 68Ga-PSMA PET/CT: Joint EANM and SNMMI procedure guideline for prostate cancer imaging: version 1.0 // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2017. V. 44. P. 1014–1024.
  22. Debnath S., Zhou N., McLaughlin M. et al. PSMA-Targeting Imaging and Theranostic Agents-Current Status and Future Perspective // Int. J. Mol. Sci. 2022. V. 23 (3). 1158.
  23. Долгушин М.Б., Мещерякова Н.А., Оджарова А.А. и др. Позитронная эмиссионная томография, совмещённая с компьютерной томографией, с 18F-ПСМА-1007 в диагностике рецидива рака предстательной железы: клиническое наблюдение // Онкоурология. 2018. Т. 14 (3). С. 134–138.
  24. Liu C., Zhu Y., Su H. et al. Relationship between PSA Kinetics and Tc-99m HYNIC PSMA SPECT/CT Detection Rates of Biochemical Recurrence in Patients with Prostate Cancer after Radical Prostatectomy // Prostate. 2018. V. 78 (16). P. 1215–1221.
  25. Mottet N., van den Bergh R., Briers E. EAU-ESTRO-SIOG guidelines on prostate cancer. EAU Guidelines // EAU Annual Congress. Barcelona, 2019.
  26. Kratochwil C., Fendler W.P., Eiber M. et al. EANM procedure guidelines for radionuclide therapy with 177Lu-labelled PSMA-ligands (177Lu-PSMA-RLT) // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2019. V. 46. P. 2536–2544.
  27. Sartor O., de Bono J., Chi K.N. et al. Lutetium-177-PSMA-617 for metastatic castration-resistant prostate cancer // N. Engl. J. Med. 2021. V. 385. P. 1091–1103.
  28. Kratochwil C., Bruchertseifer F., Giesel F.L. et al. 225Ac-PSMA-617 for PSMA-Targeted α-Radiation Therapy of Metastatic Castration-Resistant Prostate Cancer // J. Nucl. Med. 2016. V. 57 (12). P. 1941–1944.
  29. Mitran B., Thisgaard H., Rosenström U. et al. High Contrast PET Imaging of GRPR Expression in Prostate Cancer Using Cobalt-Labeled Bombesin Antagonist RM26 // Contrast Media Mol. Imaging. 2017. V. 10. 6873684.
  30. Zhang J., Niu G., Fan X. et al. PET Using a GRPR Antagonist 68Ga-RM26 in Healthy Volunteers and Prostate Cancer Patients // J. Nucl. Med. 2018. V. 59 (6). P. 922–928.
  31. Chernov V., Rybina A., Zelchan R. et al. Phase I Trial of [99mTc]Tc-maSSS-PEG2-RM26, a Bombesin Analogue Antagonistic to Gastrin-Releasing Peptide Receptors (GRPRs), for SPECT Imaging of GRPR Expression in Malignant Tumors // Cancers. 2023. V. 15. 1631.
  32. Abouzayed A., Borin J., Lundmark F. et al. The GRPR Antagonist [99mTc]Tc-maSSS-PEG2-RM26 towards Phase I Clinical Trial: Kit Preparation, Characterization and Toxicity // Diagnostics. 2023. V. 13. 1611.
  33. Loktev A., Lindner T., Mier W. et al. A Tumor-Imaging Method Targeting Cancer-Associated Fibroblasts // J. Nucl. Med. 2018. V. 59. P. 1423–1429.
  34. Koerber S.A., Staudinger F., Kratochwil C. et al. The role of FAPI-PET/CT for patients with malignancies of the lower gastrointestinal tract — first clinical experience // J. Nucl. Med. 2020. V. 61. P. 1331–1336.
  35. Giesel F.L., Kratochwil C., Lindner T. et al. 68Ga-FAPI PET/CT: Biodistribution and Preliminary Dosimetry Estimate of 2 DOTA-Containing FAP-Targeting Agents in Patients with Various Cancers // J. Nucl. Med. 2019. V. 60. P. 386–392.
  36. Watabe T., Liu Y., Kaneda-Nakashima K. et al. Theranostics targeting fibroblast activation protein in the tumor stroma: 64Cu and 225Ac labelled FAPI-04 in pancreatic cancer xenograft mouse models // J. Nucl. Med. 2020. V. 61. P. 563–569.
  37. Jin X., Liang N., Wang M. et al. Integrin Imaging with 99mTc-3PRGD2 SPECT/CT Shows High Specificity in the Diagnosis of Lymph Node Metastasis from Non-Small Cell Lung Cancer // Radiology. 2016. V. 281 (3). P. 958–966.
  38. Тицкая А.А., Чернов В.И., Слонимская Е.М., Синилкин И.Г. Маммосцинтиграфия с 199Tl в диагностике рака молочной железы // Сибирский онкологический журнал. 2008. № 6. С. 5–10.
  39. Чернов В.И., Зельчан Р.В., Тицкая А.А. и др. Однофотонная эмиссионная компьютерная томография с 99mTc-МИБИ и 199Tl-хлоридом в диагностике и оценке эффективности химиотерапии первичных и рецидивных злокачественных опухолей гортани и гортаноглотки // Молекулярная медицина. 2013. № 4. С. 26–30.
  40. Тицкая А.А., Чернов В.И., Слонимская Е.М. и др. Маммосцинтиграфия с 99mTc-МИБИ в диагностике рака молочной железы // Сибирский медицинский журнал. 2010. № 4. С. 92–96.
  41. Barrios-Lopez B., Bergstrom K. Radiolabeled sugars used for PET and SPECT imaging // Curr. Radiopharm. 2016. V. 9 (3). P. 180–186.
  42. Зельчан Р.В., Медведева А.А., Синилкин И.Г. и др. Изучение функциональной пригодности туморотропного радиофармпрепарата 99mTc-1-Тио- D-глюкоза в эксперименте // Молекулярная медицина. 2018. Т. 16 (3). С. 54–57.
  43. Зельчан Р.В., Синилкин И.Г., Медведева А.А. и др. ОФЭКТ с новым радиофармацевтическим препаратом 99mTc-1-тио-d-глюкоза в мониторинге злокачественной опухоли головного мозга // Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2021. Т. 66 (2). С. 78–82.
  44. Chernov V., Dudnikova E., Zelchan R. et al. Phase I Clinical Trial Using [99mTc]Tc-1-thio-D-glucose for Diagnosis of Lymphoma Patients // Pharmaceutics. 2022. V. 14. 1274.
  45. Чернов В.И., Дудникова Е.А., Гольдберг В.Е. Метаболическая ПЭТ и ОФЭКТ-визуализация при лимфомах. Екатеринбург: АМБ, 2022.
  46. Chernov V.I., Sinilkin I.G., Zelchan R.V. et al. Experimental study of 99mTc-aluminum oxide use for sentinel lymph nodes detection // AIP Conference Proceedings. 2016. V. 1760. 020012.
  47. Doroshenko A., Chernov V., Medvedeva A. et al. The first experience of using of 99mTc-Al2O3 for detection of sentinel lymph nodes in breast cancer // IOP Conference Series: Materials Science and Engineering. 2016. V. 135. 012011.
  48. Очиров М.О., Коломиец Л.А., Чернов В.И. и др. Первый опыт клинического применения лапароскопического гамма-зонда для интраоперационной визуализации “сторожевых” лимфатических узлов при гинекологическом раке // Сибирский онкологический журнал. 2018. Т. 17 (5). С. 45–51.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. ЧЕРНОВ Владимир Иванович — член-корреспондент РАН, заместитель директора по научной и инновационной работе, заведующий отделением радионуклидной диагностики НИИ онкологии Томского НИМЦ.

Скачать (88KB)
Метаданные
3. Рис. 1. ПЭТ-изображение пациентки с HER2/neu-позитивным раком молочной железы, выполненное через 5 суток после введения 89Zr-транстузумаба (a), стрелками обозначены метастазы в печень и кости [12]; ОФЭКТ-изображение пациентки с HER2/neu-позитивным раком молочной железы через 2 ч после введения 99mTc-ADAPT6 (б), стрелками обозначены первичная опухоль, метастазы в лимфатические узлы, печень и кости

Скачать (112KB)
Метаданные
4. Рис. 2. ОФЭКТ/КТ-изображение пациентки с HER2/neu-позитивным раком правой молочной железы до начала лечения, выполненное через 2 ч после введения 99mTc-DARPIN-G3 (а), стрелками обозначены первичная опухоль (SUVmax = 3.1), метастазы в лимфатические узлы (SUVmax = 8.8) и кости; ОФЭКТ/КТ-изображение той же пациентки после двух курсов терапии транстузумабом через 2 ч после введения 99mTc-DARPIN-G3 (б), стрелками обозначена первичная опухоль (SUVmax = 0.55), метастазы не визуализируются

Скачать (212KB)
Метаданные
5. Рис. 3. ОФЭКТ/КТ с 99mТс-октреотидом пациента с нейроэндокринным раком лёгкого: а — конгломерат первичной опухоли и метастазов в лимфатические узлы; б — метастазы в кости; в – селезёнка

Скачать (161KB)
Метаданные
6. Рис. 4. ОФЭКТ с 99mТс-ПСМА пациента с раком простаты до (а) и после (б) четырёх курсов радиолигандной терапии 177Lu-ПСМА

Скачать (120KB)
Метаданные
7. Рис. 5. ОФЭКТ/КТ с 99mТс-RM26 пациентов с раком простаты (а) и раком молочной железы (б) Стрелками обозначено накопление РФЛП в опухоли и лимфогенном метастазе

Скачать (178KB)
Метаданные
8. Рис. 6. ОФЭКТ с 199Тl пациента с раком молочной железы Стрелками обозначено накопление РФЛП в опухоли

Скачать (115KB)
Метаданные
9. Рис. 7. ОФЭКТ/КТ с 99mTc-1-Тио-D-глюкозой пациента с рецидивом глиобластомы. Стрелками обозначено накопление РФЛП в опухоли

Скачать (379KB)
Метаданные
10. Рис. 8. ОФЭКТ/КТ с 99mTc-1-Тио-D-глюкозой пациентки с лимфомой Ходжкина. Стрелками обозначено накопление РФЛП в лимфатических узлах правой аксиллярной области

Скачать (244KB)
Метаданные
11. Рис. 9. ОФЭКТ/КТ пациентки с раком правой молочной железы после паратуморального введения РФЛП “Сентискан, 99mТс”

Скачать (129KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах