Выявление и характеризация вируса Dezidougou (род Negevirus) в комарах (Ochlerotatus caspius), собранных на территории Республики Саха (Якутия)
- Авторы: Степанюк М.А.1, Легостаев С.С.1, Карелина К.В.1, Тимофеева Н.Ф.2, Емцова К.Ф.1, Охлопкова О.В.1, Таранов О.С.1, Терновой В.А.1, Протопопов А.В.2, Локтев В.Б.1, Святченко В.А.1, Агафонов А.П.1
-
Учреждения:
- ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
- ФГАОУ ВО «Северо-Восточный федеральный университет имени М.К. Аммосова»
- Выпуск: Том 70, № 1 (2025)
- Страницы: 47-56
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://journals.rcsi.science/0507-4088/article/view/287909
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-280
- EDN: https://elibrary.ru/pbmmdx
- ID: 287909
Цитировать
Аннотация
Введение. Мониторинг и исследование микроорганизмов, переносимых членистоногими, имеют важное значение. В последнее время с развитием методов секвенирования нового поколения (NGS) у насекомых идентифицировано множество ранее неизвестных вирусов.
Цель исследования. Изоляция вирусов из комаров отобранных в Республике Саха (Якутия), с последующим исследованием нового для России негевируса, выделенного из комаров вида Ochlerotatus caspius, включая определение его полной нуклеотидной последовательности, филогенетическую и вирусологические характеристики.
Материалы и методы. Изоляцию вируса Dezidougou проводили на культуре клеток C6/36 (Aedes albopictus). Электронную микроскопию осуществляли с использованием электронного микроскопа JEM 1400. Скрининговое определение нуклеотидных последовательностей выполняли с применением метода NGS на высокопроизводительном секвенаторе MiSeq, Illumina (США). Определение полногеномной нуклеотидной последовательности проводили секвенированием по методу Сэнгера. Филогенетический анализ выполняли с использованием базы данных GenBank и программ Vector NTI Advance 11, MEGA 11.
Результаты. Выделенный из комаров вирус эффективно реплицировался в клетках C6/36, вызывая их гибель. При этом он не размножался в использованных клеточных культурах млекопитающих. Выделенный вирус при интрацеребральном инфицировании мышей-сосунков не вызывал у них патологических проявлений. При электронно-микроскопическом исследовании очищенной вируссодержащей суспензии было показано наличие сферических вирусных частиц диаметром 45‒55 нм. Результаты полногеномного секвенирования идентифицировали его принадлежность к вирусу Dezidougou, впервые выделенному в Кот д’Ивуаре. Нуклеотидная последовательность генома штамма Yakutsk 2023 вируса Dezidougou была депонирована в базе данных GenBank (PP975071.1).
Заключение. Впервые в Российской Федерации был выделен и охарактеризован вирус Dezidougou рода Negevirus. Проведение дальнейших исследований распространенности негевирусов, их вирусологических особенностей, потенциального значения для здравоохранения и влияния на векторную компетентность переносчиков является важным и перспективным.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Марина Алексеевна Степанюк
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: stepanyuk_ma@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0009-0002-2658-7746
младший научный сотрудник отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. КольцовоСтанислав Сергеевич Легостаев
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: legostaev_ss@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0002-6202-445X
стажер-исследователь отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. КольцовоКристина Вячеславовна Карелина
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: karelina_kv@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0009-0003-1421-1765
стажер-исследователь отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. КольцовоНина Федоровна Тимофеева
ФГАОУ ВО «Северо-Восточный федеральный университет имени М.К. Аммосова»
Email: niakswan@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9895-5873
научный сотрудник
Россия, 677000, Республика Саха (Якутия), г. ЯкутскКсения Федоровна Емцова
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: k.emtsova@g.nsu.ru
ORCID iD: 0009-0003-5165-5357
стажер-исследователь отдела микроскопических исследований
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. КольцовоОлеся Викторовна Охлопкова
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Автор, ответственный за переписку.
Email: ohlopkova_ov@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0002-8214-7828
канд. биол. наук, старший научный сотрудник отдела биофизики и экологических исследований
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. КольцовоОлег Святославович Таранов
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: taranov@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0002-6746-8092
заведующий отделом микроскопических исследований
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. КольцовоВладимир Александрович Терновой
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: tern@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0003-1275-171X
канд. биол. наук, ведущий научный сотрудник отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. КольцовоАльберт Васильевич Протопопов
ФГАОУ ВО «Северо-Восточный федеральный университет имени М.К. Аммосова»
Email: a.protopopov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6543-4596
д-р биол. наук, главный научный сотрудник
Россия, 677000, Республика Саха (Якутия), г. ЯкутскВалерий Борисович Локтев
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: loktev@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0002-0229-321X
д-р биол. наук, профессор, академик РАЕН, главный научный сотрудник отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. КольцовоВиктор Александрович Святченко
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: svyat@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0002-2729-0592
канд. биол. наук, ведущий научный сотрудник отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. КольцовоАлександр Петрович Агафонов
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: agafonov@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0003-2577-0434
д-р биол. наук, генеральный директор
Россия, 630559, Новосибирская область, р.п. КольцовоСписок литературы
- Kuno G. A survey of the relationships among the viruses not considered arboviruses, vertebrates, and arthropods. Acta Virol. 2004; 48(3): 135–44.
- Calzolari M., Zé-Zé L., Vázquez A., Sánchez Seco MP., Amaro F., Dottori M. Insect-specific flaviviruses, a worldwide widespread group of viruses only detected in insects. Infect. Genet. Evol. 2016; 40: 381–8. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2015.07.032
- Roundy CM., Azar SR., Rossi SL., Weaver SC., Vasilakis N. Insect-specific viruses: a historical overview and recent developments. Adv. Virus Res. 2017; 98: 119–46. https://doi.org/10.1016/bs.aivir.2016.10.001
- Blitvich B.J., Firth A.E. Insect-specific flaviviruses: a systematic review of their discovery, host range, mode of transmission, superinfection exclusion potential and genomic organization. Viruses. 2015; 7(4): 1927–59. https://doi.org/doi: 10.3390/v7041927
- Carvalho V.L., Long M.T. Insect-specific viruses: an overview and their relationship to arboviruses of concern to humans and animals. Virology. 2021; 557: 34–43. https://doi.org/10.1016/j.virol.2021.01.007
- Vasilakis N., Forrester N.L., Palacios G., Nasar F., Savji N., Rossi SL., et al. Negevirus: a proposed new taxon of insect-specific viruses with wide geographic distribution. J. Virol. 2013; 87(5): 2475–88. https://doi.org/10.1128/JVI.00776-12
- Nunes M.R.T., Contreras-Gutierrez M.A., Guzman H., Martins L.C., Barbirato M.F., Savit C., et al. Genetic characterization, molecular epidemiology, and phylogenetic relationships of insect-specific viruses in the taxon Negevirus. Virology. 2017; 504: 152–67. https://doi.org/10.1016/j.virol.2017.01.022
- Auguste A.J., Carrington C.V.F., Forrester N.L., Popov V.L., Guzman H., Widen S.G., et al. Characterization of a novel Negevirus and a novel Bunyavirus isolated from Culex (Culex) declarator mosquitoes in Trinidad. J. Gen. Virol. 2014; 95(Pt. 2): 481–5. https://doi.org/10.1099/vir.0.058412-0
- Truong Nguyen P.T., Culverwell C.L., Suvanto M.T., Korhonen E.M., Uusitalo R., Vapalahti O., et al. Characterisation of the RNA virome of nine Ochlerotatus species in Finland. Viruses. 2022; 14(7): 1489. https://doi.org/10.3390/v14071489
- da Silva Ribeiro A.C., Martins L.C., da Silva S.P., de Almeida Medeiros D.B., Miranda K.K.P., Nunes Neto J.P., et al. Negeviruses isolated from mosquitoes in the Brazilian Amazon. Virol. J. 2022; 19(1): 17. https://doi.org/10.1186/s12985-022-01743-z
- Hermanns K., Marklewitz M., Zirkel F., Overheul G.J., Page R.A., Loaiza J.R., et al. Agua Salud alphavirus defines a novel lineage of insect-specific alphaviruses discovered in the New World. J. Gen. Virol. 2020; 101(1): 96–104. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001344
- Auguste A.J., Langsjoen R.M., Porier D.L., Erasmus J.H., Bergren N.A., Bolling B.G., et al. Isolation of a novel insect-specific flavivirus with immunomodulatory effects in vertebrate systems. Virology. 2021; 562: 50–62. https://doi.org/10.1016/j.virol.2021.07.004
- Svyatchenko V., Nikonov S., Mayorov A., Gelfond M., Loktev V. Antiviral photodynamic therapy: Inactivation and inhibition of SARS-CoV-2 in vitro using methylene blue and Radachlorin. Photodiagnosis Photodyn. Ther. 2021; 33: 102112. https://doi.org/10.1016/j.pdpdt.2020.102112
- Toth K., Spencer J., Dhar D., Sagartz J., Buller R., Painter G., et al. Hexadecyloxypropyl-cidofovir, CMX001, prevents adenovirus induced mortality in a permissive, immunosuppressed animal model. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2008; 105(20): 7293–97. https://doi.org/10.1073/pnas.0800200105
- Lei C., Yang J., Hu J., Sun X. On the calculation of TCID 50 for quantitation of virus infectivity. Virol. Sin. 2021; 36(1): 141–4. https://doi.org/10.1007/s12250-020-00230-5
- Rodgers MA., Wilkinson E., Vallari A., McArthur C., Sthreshley L., Brennan CA., et al. Sensitive next-generation sequencing method reveals deep genetic diversity of HIV-1 in the Democratic Republic of the Congo. J. Virol. 2017; 91(6): e01841-16. https://doi.org/10.1128/JVI.01841-16
- Walker T., Jeffries C.L., Mansfield K.L., Johnson N. Mosquito cell lines: history, isolation, availability and application to assess the threat of arboviral transmission in the United Kingdom. Parasit. Vectors. 2014; 7: 382. https://doi.org/10.1186/1756-3305-7-382
- Müller G., Schlein Y. Plant tissues: the frugal diet of mosquitoes in adverse conditions. Med. Vet. Entomol. 2005; 19(4): 413–22. https://doi.org/10.1111/j.1365-2915.2005.00590.x
- Moreira L.A., Iturbe-Ormaetxe I., Jeffery J.A., Lu G., Pyke A.T., Hedges L.M., et al. A Wolbachia symbiont in Aedes aegypti limits infection with dengue, Chikungunya, and Plasmodium. Cell. 2009; 139(7): 1268–78. https://doi.org/10.1016/j.cell.2009.11.042
- Öhlund P., Lundén H., Blomström A.L. Insect-specific virus evolution and potential effects on vector competence. Virus Genes. 2019; 55(2): 127–37. https://doi.org/10.1007/s11262-018-01629-9
- Carvalho V.L., Prakoso D., Schwarz E.R., Logan T.D., Nunes B.T.D., Beachboard S.E., et al. Negevirus Piura suppresses Zika virus replication in mosquito cells. Viruses. 2024; 16(3): 350. https://doi.org/10.3390/v16030350
- Patterson EI., Kautz TF., Contreras-Gutierrez MA., Guzman H., Tesh RB., Hughes GL. Negeviruses reduce replication of alphaviruses during coinfection. J. Virol. 2021; 95(14): e0043321. https://doi.org/10.1128/JVI.00433-21
- Kent R.J., Crabtree M.B., Miller B.R. Transmission of West Nile virus by Culex quinquefasciatus say infected with Culex Flavivirus Izabal. PLoS Negl. Trop. Dis. 2010; 4(5): e671. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0000671
- Higgs S., Beaty B.J. Natural cycles of vector-borne pathogens. In: Marquardt M.C., ed. Biology of Disease Vectors. New York: Elsevier Academic Press; 2005: 167–85.
- Guerrero D., Cantaert T., Missé D. Aedes mosquito salivary components and their effect on the immune response to arboviruses. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2020; 10: 407. https://doi.org/10.3389/fcimb.2020.00407
Дополнительные файлы
