Error correction techniques in synthetic oligonucleotides and synthetic dna

封面

如何引用文章

全文:

开放存取 开放存取
受限制的访问 ##reader.subscriptionAccessGranted##
受限制的访问 订阅存取

详细

The review describes methods for correcting errors in synthetic oligonucleotides and genetic constructs derived from them. Methods for isolating oligonucleotides with perfect structure from oligonucleotide pools are discussed. Methods for correcting errors in DNA structure using mismatch–specific endonucleases and proteins of the bacterial DNA repair system are considered. Examples of practical application of the eveloped methods for adjusting the structure of synthesized genetic constructs are given.

作者简介

A. Sinyakov

Institute of Chemical Biology and Fundamental Medicine, Siberian Branch, Russian Academy of Sciences

Email: sinyakov@niboch.nsc.ru
Novosibirsk, 630090 Russia

E. Kostina

Institute of Chemical Biology and Fundamental Medicine, Siberian Branch, Russian Academy of Sciences

Novosibirsk, 630090 Russia

参考

  1. Michelson A., Todd A. (1955) Nucleotides part XXXII. Synthesis of a dithymidine dinucleotide containing a 3ʹ: 5ʹ-internucleotidic linkage. J. Chem. Soc. 2632–2638.
  2. Gilham P.T., Khorana H.G. (1958) Studies on рolynucleotides. I. A new and general method for the chemical synthesis of the C5″-C3″ internucleotidic linkage. Syntheses of deoxyribo-dinucleotides. J. Am. Chem. Soc. 80(23), 6212–6222.
  3. Reese C.B. (2005). Oligo- and poly-nucleotides: 50 years of chemical synthesis. Org. Biomol. Chem. 3(21), 3851–3868.
  4. Синяков А.Н., Рябинин В.А., Костина Е.В. (2021) Применение олигонуклеотидов, полученных с помощью микрочиповых синтезаторов ДНК, для синтеза генетических конструкций. Молекуляр. биология. 55(4), 562–577.
  5. Agarwal K.L., Büchi H., Caruthers M.H., Gupta N., Khorana H.G., Kleppe K., Kumar A., Ohtsuka E., Rajbhandary U.L., Van de Sande J.H., Sgaramella V., Weber H., Yamada T. (1970) Total synthesis of the gene for an alanine transfer ribonucleic acid from yeast. Nature. 227, 27–34.
  6. Sekiya T., Takeya T., Brown E.L., Belagaje R., Contreras R., Fritz H.J., Gait M.J., Lees R.G., Ryan M.J., Khorana H.G., Norris K.E. (1979) Total synthesis of a tyrosine suppressor transfer RNA gene. XVI. Enzymatic joinings to form the total 207-base pair-long DNA. J. Biol. Chem. 254, 5787–5801.
  7. Cello J., Paul A.V., Wimmer E. (2002) Chemical synthesis of poliovirus cDNA: generation of infectious virus in the absence of natural template. Science. 297, 1016–1018.
  8. Smith H.O., Hutchison C.A.III, Pfannkoch C., Venter J.C. (2003) Generating a synthetic genome by whole genome assembly: φX174 bacteriophage from synthetic oligonucleotides. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 100(26), 15440–15445.
  9. Noyce R.S., Lederman S., Evans D.H. (2018) Const- ruction of an infectious horsepox virus vaccine from chemically synthesized DNA fragments. PLoS One. 19(13), e0188453.
  10. Gibson D.G., Benders G.A., Andrews-Pfannkoch C., Denisova E.A., Baden-Tillson H., Zaveri J., Stockwell T.B., Brownley A., Thomas D.W., Algire M.A., Merryman C., Young L., Noskov V.N., Glass J.I., Venter J.C. Hutchison C.A. 3rd, Smith H.O. (2008) Complete chemical synthesis, assembly, and cloning of a Mycoplasma genitalium genome. Science. 319, 1215–1220.
  11. Gibson D.G., Glass J.I., Lartigue C., Noskov V.N., Chuang R.Y., Algire M.A., Benders G.A., Montague M.G., Ma L., Moodie M.M., Merryman C, Vashee S., Krishnakumar R., Assad-Garcia N., Andrews-Pfannkoch C., Hutchison C.A., 3rd, Smith H.O. (2010) Creation of a bacterial cell controlled by a chemically synthesized genome. Science. 329, 52–56.
  12. Venetz J.E., Medico L.D., Wölfle A., Schächle P., Bucher Y., Appert D., Tschan F., Flores-Tinoco C.E., van Kooten M., Guennoun R., Deutsch S., Christen М., Christen B. (2019) Chemical synthesis rewriting of a bacterial genome to achieve design flexibility and biological functionality. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 116(16), 8070–8079.
  13. Filges S., Mouhanna P., Ståhlberg A. (2021) Digital quantification of chemical oligonucleotide synthesis errors. Clin. Chem. 67(10), 1384–1394.
  14. Caruthers M. (1985) Gene synthesis machines: DNA chemistry and its uses. Science. 230(4723), 281–285.
  15. Eckstein F. (1991) Oligonucleotides and analogues: a practical approach. IRL Press.
  16. Ellington A., Pollard J.D. Jr. (2001) Introduction to the synthesis and purification of oligonucleotides. Curr. Protoc. Nucl. Acid Chem. Appendix 3C.
  17. Jensen M.A., Davis R.W. (2018) Template-independent enzymatic oligonucleotide synthesis (TiEOS): its history, prospects, and challenges. Biochemistry. 57(12), 1821–1832.
  18. Pichon M., Hollenstein M. (2024) Controlled enzymatic synthesis of oligonucleotides. Commun. Chem. 7, 138.
  19. Verardo D., Adelizzi B., Rodriguez–Pinzon D.A., Moghaddam N., Thomйe E., Loman T., Godron X., Horgan A. (2023) Multiplex enzymatic synthesis of DNA with single–base resolution. Sci. Adv. 9(27), eadi0263.
  20. Eisenstein M. (2020) Enzymatic DNA synthesis enters new phase. Nat. Biotechnol. 38, 1113–1115.
  21. Amazon Prime for DNA – Has A New Era of Oligonucleotide Synthesis Begun? – Oligonucleotide Therapeutics Society. (2023).
  22. Ma S., Saaem I., Tian J. (2012) Error correction in gene synthesis technology. Trends Biotechnol. 30(3), 147–154.
  23. Sinha N.D., Jung K.E. (2015) Analysis and purification of synthetic nucleic acids using HPLC. Curr. Protoc. Nucl. Acid Chem. 61, 10.5.1–10.5.39.
  24. Fang S.Y., Fueangfung S. (2010) Scalable synthetic oligodeoxynucleotide purification with use of a catching by polymerization, washing, and releasing approach. Org. Lett. 12, 3720–3723.
  25. Pokharel D., Fang S. (2014) A highly convenient procedure for oligodeoxynucleotide purification. Open Org. Chem. J. 8, 15–18.
  26. Fang S., Arneson R., Yin Y., Yuan Y. (2024) De novo synthesis of error-free long oligos. Curr. Protoc. 4(10), e70028.
  27. Pokharel D., Fang S.Y. (2016) Polymerizable phosphoramidites with an acid-cleavable linker for eco-friendly synthetic oligodeoxynucleotide purification. Green Chem. 18, 1125–1136.
  28. Eriyagama D., Shahsavari S., Halami B., Lu B.Y., Wei F., Fang S. (2018) Parallel, large–scale, and long synthetic oligodeoxynucleotide purification using the catching full-length sequence by polymerization technique. Org. Process Res. Dev. 22, 1282‒1288.
  29. Jensen M., Davis R. (2017) RecJ 5ʹ exonuclease digestion of oligonucleotide failure strands: a “Green” method of Trityl-On purification. Biochemistry. 56(18), 2417–2424.
  30. Lietard J., Leger A., Erlich Y., Sadowski N., Timp W., Somoza M.M. (2021) Chemical and photochemical error rates in light-directed synthesis of complex DNA libraries. Nucl. Acids Res. 49(12), 6687–6701.
  31. Zhou X., Cai S., Hong A., You Q., Yu P., Sheng N., Srivannavit O., Muranjan S., Rouillard J.M., Xia Y., Zhang X., Xiang Q., Ganesh R., Zhu Q., Matejko A., Gulari E., Gao X. (2004) Microfluidic PicoArray synthesis of oligodeoxynucleotides and simultaneous assembling of multiple DNA sequences. Nucl. Acids Res. 32, 5409–5417.
  32. Tian J., Gong H., Sheng N., Zhou X., Gulari E., Gao X., Church G. (2004). Accurate multiplex gene synthesis from programmable DNA microchips. Nature. 432, 1050–1054.
  33. Church G.M., Tian J. (2005) Patent WO No. 2005/089110 A2. Geneva, Switzerland World Intellectual Property Organization International Bureau.
  34. Church G.M., Tian J. (2006) Patent US No. 2006/0127920 A1. Washington, DC: U.S. Patent and Trademark Office.
  35. Borovkov A.Y., Loskutov A.V., Robida M.D., Day K.M., Cano J.A., Olson T.L., Patel H., Brown K., Hunter P.D., Sykes K.F. (2010) High-quality gene assembly directly from unpurified mixtures of microarray-synthesized oligonucleotides. Nucl. Acids Res. 38(19), e180.
  36. Sun H.H., Zhu C., Wu Y., Guo J.-F. (2009) De novo synthesis and assembly of multiplex riboswitches in vitro. Biotechnol. Prog. 25(5), 1228–1235.
  37. Hsiau T.H.-C., Sukovich D., Elms P., Prince R.N., Stritmatter T., Ruan P., Curry B., Anderson P., Sampson J., Anderson J.C.(2015) A method for multiplex gene synthesis employing error correction based on expression. PLoS One. 10(3), e0119927.
  38. Matzas M., Stähler P.F., Kefer N., Siebelt N., Boisguérin V., Leonard J.T., Keller A., Stähler C.F., Häberle P., Gharizadeh B., Babrzadeh F., Church G.M. (2010) High-fidelity gene synthesis by retrieval of sequence-verified DNA identified using high-throughput pyrosequencing. Nat. Biotechnol. 28(12), 1291–1294.
  39. Stähler P.F., Carapito R., Stähler C.F., Malzas M., Leonard J.T., Jäger J., Beier M. (2010) Patent WO No. 2010/094772 Al. Geneva, Switzerland World Intellectual Property Organization International Bureau.
  40. Stähler P.F., Carapito R., Stähler C.F., Malzas M., Leonard J.T., Jäger J., Beier M. (2018) Patent US No. US2017/0267999 A1. Washington, DC: U.S. Patent and Trademark Office.
  41. Lee H., Kim H., Kim S., Ryu T., Kim H., Kwon D.B.S. (2015) A high-throughput optomechanical retrieval method for sequence-verified clonal DNA from the NGS platform. Nat. Сommun. 6, 6073.
  42. Bang D., Kim H., N., Lim H., Park S., Han H. (2020) US Patent No. 10526640 B2. Washington, DC: U.S. Patent and Trademark Office.
  43. Cho N., Seo H.N., Ryu T., Kwon E., Huh S., Noh J., Yeom H., Byungjin Hwang B., Ha H., Lee J.H., Kwon S., Bang D. (2018) High-throughput construction of multiple cas9 gene variants via assembly of high-depth tiled and sequence-verified oligonucleotides. Nucl. Acids Res. 46(9), e55.
  44. Yeom H., Ryu T., Lee A.C., Noh J., Lee H., Choi Y., Kim N., Kwon S. (2020) Cell-free bacteriophage genome synthesis using low-cost sequence-verified array-synthesized oligonucleotides. ACS Synth. Biol. 9(6), 1376–1384.
  45. Smith J.D., Schlecht U., Xu W., Suresh S., Horecka J., Proctor M.J., Aiyar R.S., Bennett R.A., Chu A., Li Y.F., Roy K., Davis R.W., Steinmetz L.M., Hyman R.W., Levy S.F., St Onge R.P. (2017) A method for high-throughput production of sequence-verified DNA libraries and strain collections. Mol. Syst. Biol. 13(2), 913.
  46. Kim H., Han H., Ahn J., Lee J., Cho N., Jang H., Kim H., Kwon S., Bang D. (2012) Shotgun DNA synthesis for the high-throughput construction of large DNA molecules. Nucl. Acids Res. 40(18), e140.
  47. Bang D., Kim H., Han H. (2019) US Patent No. 10358642 B2. Washington, DC: U.S. Patent and Trademark Office.
  48. Schwartz J.J., Lee C., Shendure J. (2012) Accurate gene synthesis with tag-directed retrieval of sequence-verified DNA molecules. Nat. Methods. 9(9), 913–915.
  49. Klein J.C., Lajoie M.J., Schwartz J.J., Strauch E.M., Nelson J., Baker D., Shendure J. (2016) Multiplex pairwise assembly of array-derived DNA oligonucleotides. Nucl. Acids Res. 44, e43.
  50. Lim H., Cho N., Ahn J., Park S., Jang H., Kim H., Han H., Lee J.H., Bang D. (2018) Highly selective retrieval of accurate DNA utilizing a pool of in situ-replicated DNA from multiple next-generation sequencing platforms. Nucl. Acids Res. 46(7), e40.
  51. Knyphausen P., Lindenburg L., Hollfelder F. (2021) Error-free synthetic DNA by molecular dictation. Trends Biotechnol. 39(9), 861–865.
  52. Choi H., Choi Y., Choi J., Lee A.C., Yeom H., Hyun J., Ryu T., Kwon S. (2022) Purification of multiplex oligonucleotide libraries by synthesis and selection. Nat. Biotechnol. 40, 47–53.
  53. Fuhrmann M., Oertel W., Berthold P., Hegemann P. (2005) Removal of mismatched bases from synthetic genes by enzymatic mismatch cleavage. Nucl. Acids Res. 33(6), e58.
  54. Young L., Dong Q. (2004) Two-step total gene synthesis method. Nucl. Acids Res. 32, e59.
  55. Sequeira A.F., Guerreiro C.I., Vincentelli R., Fontes C.M. (2016) T7 Endonuclease I mediates error correction in artificial gene synthesis. Mol. Biotechnol. 58, 573–584.
  56. Khilko Y., Weyman P.D., Glass J.I., Adams M.D., McNei M.A., Griffin P.B.(2018) DNA assembly with error correction on a droplet digital microfluidics platform. BMC Biotechnol. 18(1), 37.
  57. Kosuri S., Eroshenko N., Leproust E.M., Super M., Way J., Li J.B., Church G.M. (2010) Scalable gene synthesis by selective amplification of DNA pools from high-fidelity microchips. Nat. Biotechnol. 28(12), 1295–1299.
  58. Dormitzer P.R., Suphaphiphat P., Gibson D.G., Wentworth D.E., Stockwell T.B., Algire M.A., Alperovich N., Barro M., Brown D.M., Craig S., Dattilo B.M., Denisova E.A., De Souza I., Eickmann M., Dugan V.G., Ferrari A., Gomila R.C., Han L., Judge C., Mane S., Matrosovich M., Merryman C., Palladino G., Palmer G.A., Spencer T., Strecker T., Trusheim H., Uhlendorff J., Wen Y., Yee A.C., Zaveri J., Zhou B., Becker S., Donabedian A., Mason P.W., Glass J.I., Rappuoli R., Venter J.C. (2013) Synthetic generation of influenza vaccine viruses for rapid response to pandemics. Sci. Transl. Med. 5(185), 185ra68.
  59. Saaem I., Ma S., Quan J., Tian J. (2012) Error correction of microchip synthesized genes using Surveyor nuclease. Nucl. Acids Res. 40(3), e23.
  60. Quan J., Saaem I., Tang N., Ma S., Negre N., Gong H., White K.P., Tian J. (2011) Parallel on-chip gene synthesis and application to optimization of protein expression. Nat. Biotechnol. 29(5), 449–452.
  61. Currin A., Swainston N., Day P.J., Kell D.B. (2014) SpeedyGenes: an improved gene synthesis method for the efficient production of error-corrected, synthetic protein libraries for directed evolution. Protein Eng. Des. Sel. 27(9), 273–280.
  62. Chan H.F., Ma S., Tian J., Leong K.W. (2017) High-throughput screening of microchip–synthesized genes in programmable double–emulsion droplets. Nanoscale. 9(10), 3485–3495.
  63. Vouillot L., Thélie A., Pollet N. (2015) Comparison of T7E1 and surveyor mismatch cleavage assays to detect mutations triggered by engineered nucleases. G3 (Bethesda). 5(3), 407–415.
  64. Bang D., Church G.M. (2008) Gene synthesis by circular assembly amplification. Nat. Methods. 5, 37–39.
  65. Babon J.J., McKenzie M., Cotton R.G.H. (1999) Mutation detection using fluorescent enzyme mismatch cleavage with T4 endonuclease VII. Electrophoresis. 20, 1162–1170.
  66. Brown J., Brown T., Fox K.R. (2001) Affinity of mismatch-binding protein MutS for heteroduplexes containing different mismatches. Biochem. J. 354, 627–633.
  67. Whitehouse A., Deeble J., Parmar R., Taylor G.R., Markham A.F., Meredith D.M. (1997) Analysis of the mismatch and insertion/deletion binding properties of Thermus thermophilus, HB8, MutS. Biochem. Biophys. Res. Commun. 233, 834–837.
  68. Перевозчикова С.А., Романова Е.А., Орецкая Т.С., Фридхофф П., Кубарева Е.А. (2013) Современные представления о структурно-функциональной организации системы репарации неканонических пар нуклеотидов в ДНК. Acta Naturae. 5, 3(18), 18–35.
  69. Smith J., Modrich P. (1997) Removal of polymerase–produced mutant sequences from PCR products. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 94(13), 6847–6850.
  70. Binkowski B.F., Richmond K.E., Kaysen J., Sussman M.R., Belshaw P.J. (2005) Correcting errors in synthetic DNA through consensus shuffling. Nucl. Acids Res. 33(6), e55.
  71. Carr P.A., Park J.S., Lee Y.J., Yu T., Zhang S., Jacobson J.M. (2004) Protein–mediated error correction for de novo DNA synthesis. Nucl. Acids Res. 32(20), e162.
  72. Wan W., LI L., Xu Q., Wang Z., Yao Y., Wang R., Zhang J., Liu H., Gao X., Hong J. (2014) Error removal in microchip-synthesized DNA using immobilized MutS. Nucl. Acids Res. 42(12), e102.
  73. Zhang J., Wang Y., Chai B., Wang J., Li L., Liu M., Zhao G., Yao L., Gao X., Yin Y., Xu J. (2020) Efficient and low-cost error removal in DNA synthesis by a high-durability MutS. ACS Synth. Biol. 9, 940–952.
  74. Zhong T., Zhou Y., Bi L., Zhang X. —E. (2011) MutS-mediated enrichment of mutated DNA produced by directed evolution in vitro. World J. Microbiol. Biotechnol. 27, 1367–1372.
  75. Geschwind D.H., Rhee R., Nelson S.F. (1996) A biotinylated MutS fusion protein and its use in a rapid mutation screening technique. Genet. Anal. 13(4), 105–111.
  76. Sidore A.M., Plesa C., Samson J.A., Lubock N.B., Kosuri S. (2020) DropSynth 2.0: high–fidelity multiplexed gene synthesis in emulsions. Nucl. Acids Res. 48(16), e95.
  77. Murphy Z.R., Shields D.A., Evrony G.D. (2023) serial enrichment of heteroduplex DNA using a MutS-magnetic bead system. Biotechnol. J. 18(1), e2200323.
  78. Simmons B.L., McDonald N.D., Robinett N.G. (2023) Assessment of enzymatically synthesized DNA for gene assembly. Front. Bioeng. Biotechnol. 11, 1208784.
  79. Yin Y., Arneson R., Apostle A., Eriyagama A.M.D.N., Chillar K., Burke E., Jahfetson M., Yuan Y., Fang S. (2023) Long oligodeoxynucleotides: chemical synthesis, isolation via catching-by-polymerization, verification via sequencing, and gene expression demonstration. Beilstein J. Org. Chem. 19, 1957–1965.
  80. Yin Y., Arneson R., Yuan Y., Fang S. (2024) Long Oligos: direct chemical synthesis of genes with up to 1,728 nucleotides. ChemRxiv. https://doi.org/10.26434/chemrxiv-2024-zb7vk
  81. Lubock N.B., Zhang D., Sidore A.M., Church G.M., Kosuri S. (2017) A systematic comparison of error correction enzymes by next-generation sequencing. Nucl. Acids Res. 45(15), 9206–9217.
  82. Masaki Y., Onishi Y., Seio K. (2022) Quantification of synthetic errors during chemical synthesis of DNA and its suppression by non-canonical nucleosides. Sci. Rep. 12(1), 12095.

补充文件

附件文件
动作
1. JATS XML
下载

版权所有 © Russian Academy of Sciences, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».