К вопросу о взаимодействии ресвератрола с нуклеосомами

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Природный полифенол ресвератрол обладает широким спектром целебного действия на организм, проявляя противовоспалительные, антиоксидантные, противоопухолевые и геропротекторные свойства. Многообразие действие ресвератрола определяется его способностью модулировать разнообразные сигнальные пути в клетке и взаимодействовать с различными молекулами-мишенями. Ранее установлено, что ресвератрол взаимодействует с ДНК, но неизвестно, как это отражается на структуре хроматина. В данной работе исследовано влияние ресвератрола на структуру нуклеосомы - функциональной и структурной единицы хроматина. Методами флуоресцентной микроскопии одиночных нуклеосом на основе фёрстеровского резонансного переноса энергии (spFRET-микроскопии) и анализа изменений в электрофоретической подвижности нуклеосом в полиакриламидном геле установлено, что при концентрации ~100 мкМ ресвератрол оказывает влияние на конформацию линкерных участков ДНК, но не вызывает изменений структуры кор-нуклеосомы, включая области вблизи и на значительном удалении от границы нуклеосомы.

Об авторах

Н. В Малюченко

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: mal_nat@mail.ru
Москва, Россия

Т. В Андреева

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Москва, Россия

О. В Гераськина

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Москва, Россия

Н. С Герасимова

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Москва, Россия

А. В Любителев

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Москва, Россия

А. В Феофанов

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Москва, Россия

В. М Студитский

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова;Центр исследований рака Фокс Чейз

Москва, Россия;Филадельфия США

Список литературы

  1. S. Tangutoori, P. Baldwin, and S. Sridhar, Maturitas, 81 (1), 5 (2015).
  2. M. Jhanji, C. N. Rao, and M. Sajish, GeroScience, 43, 1171 (2021).
  3. R. Pangeni, J. K. Sahni, J. Ali, et al., Expert Opin. Drug Deliv., 11, 1285 (2014).
  4. B. Tian and J. Liu, J. Sci. Food Agricult., 100, 1392 (2020).
  5. L. Bavaresco, Drugs Exp. Clin. Res., 29, 181 (2003).
  6. D. Delmas, A. Lancon, D. Colin, et al., Curr. Drug Targets, 7, 423 (2006).
  7. I. Arora, M. Sharma, and T. O. Tollefsbol, Int. J. Mol. Sci., 20 (18), 4567 (2019).
  8. F. Islam, M. H. Nafady, M. R. Islam, et al., Mol. Neurobiol., 59, 4384 (2022).
  9. S. A. Almatroodi, M. A. Alsahli, A. S. M. Aljohani, et al., Molecules, 27, 2665 (2022).
  10. A. Kumar, B. D. Kurmi, A. Singh, and D. Singh, Exploration of Targeted Anti-Tumor Therapy, 3, 643 (2022).
  11. D. Fan, C. Liu, Z. Zhang, et al., Molecules, 27 (21), 7524 (2022).
  12. P. Pan, J. Li, W. Lin, and G. Long, Intervirology, 65, 206 (2022).
  13. K. I. Kirsanov, O. A. Vlasova, T. I. Fetisov, et al., Adv. Mol. Oncol. (In Russian), 5 (4), 41 (2018).
  14. L. X. Zhang, C. X. Li, M. U. Kakar, et al., Biomed. Pharmacotherapy, 143, 112164 (2021).
  15. A. Shaito, A. M. Posadino, N. Younes, et al., Int. J. Mol. Sci., 21, 2084 (2020).
  16. K. T. Howitz, K. J. Bitterman, H. Y. Cohen, et al., Nature, 425, 191 (2003).
  17. S. A. Gatz and L. Wiesmuller, Carcinogenesis, 29, 321 (2008).
  18. S. Zhang, X. Sun, Z. Jing, and F. Qu, Spectrochim. Acta. Part A: Mol. Biomol. Spectroscopy, 82, 213 (2011).
  19. C. N. N'Soukpoe-Kossi, P. Bourassa, J. S. Mandeville, et al., J. Photochem. Photobiol. B: Biology, 151, 69 (2015).
  20. S. Kumar, P. Kumar, and M. S. Nair, Spectrochim. Acta. Part A - Mol. Biomol. Spectroscopy, 252, 119488 (2021).
  21. C. Ji, X. Yin, H. Duan, and L. Liang, Int. J. Biol. Macromolecules, 168, 775 (2021).
  22. O. I. Kulaeva, D. A. Gaykalova, N. A. Pestov, et al., Nature Struct. Mol. Biol., 16, 1272 (2009).
  23. A. Thastrom, P. T. Lowary, H. R. Widlund, et al., J. Mol. Biol., 288, 213 (1999).
  24. N. V. Malyuchenko, D. O. Koshkina, A. N. Korovina, et al., Moscow Univ. Biol. Sci. Bull., 75, 142 (2020).
  25. A. V. Lyubitelev, M. S. Mikhaylova, N. V. Maluchenko, et al., Moscow Univ. Biol. Sci. Bull., 71, 108 (2016).
  26. Н. С. Герасимова, А. Н. Коровина, Д. А. Афонин и др., Биофизика, 67, 222 (2022).
  27. K. S. Kudryashova, O. V. Chertkov, Y. O. Ivanov, et al., Moscow Univ. Biol. Sci. Bull., 71, 97 (2016).
  28. D. A. Gaykalova, O. I. Kulaeva, V. A. Bondarenko, and V. M. Studitsky, Methods Mol. Biol., 523, 109 (2009).
  29. N. V. Maluchenko, D. K. Nilov, S. V. Pushkarev, et al., Int. J. Mol. Sci., 22 (22), 12127 (2021).
  30. K. S. Kudryashova, O. V. Chertkov, D. V. Nikitin, et al., Methods Mol. Biol., 1288, 395 (2015).
  31. T. Andreeva, A. Lyubitelev, E. Bondarenko, et al., Microscopy and Microanalysis, 27, 1740 (2021).
  32. M. S. Nair, S. D'Mello, R. Pant, and K. M. Poluri, J. Photochem. Photobiol. B: Biology, 170, 217 (2017).
  33. B. Demoulin, M. Hermant, C. Castrogiovanni, et al., Toxicology in vitro, 29, 1156 (2015).

© Российская академия наук, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах