Иммуномодулирующее действие гемозоина Opisthorchis felineus и его участие в снижении аллергического воспаления через активацию инфламмасомы
- Авторы: Мелентьева А.П.1, Паршуткина Т.А.1, Огородова Л.М.1, Фёдорова О.С.1
-
Учреждения:
- Сибирский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 21, № 2 (2024)
- Страницы: 295-304
- Раздел: Научные обзоры
- URL: https://journals.rcsi.science/raj/article/view/260063
- DOI: https://doi.org/10.36691/RJA16930
- ID: 260063
Цитировать
Аннотация
Mолекулы экскреторно-секреторного продукта, возникшие в результате совместной эволюции хозяина и паразита, могут подавлять иммунный ответ 2-го типа, и при этом активировать ответы 1-го и 17-го типов. Эту способность изменять иммунный ответ можно использовать для подавления воспаления при аллергических заболеваниях, в связи с чем поиск гельминтассоциированных молекул, обладающих наряду с иммуногенностью и низкой токсичностью иммуномодулирующим действием, представляется актуальной задачей.
Гемозоин ― тёмно-коричневый нерастворимый биокристалл, экскреторный продукт ряда гематофаговых паразитов (Schistosoma mansoni, Plasmodium falciparum и Opisthorchis felineus). Данное вещество является перспективным для изучения соединением паразитарного происхождения, обладает выраженными иммуномодулирующими свойствами. Для формирования представления о гемозоине Opisthorchis felineus и его свойствах требуется тщательное изучение литературы.
В настоящем обзоре представлен анализ накопленных данных в отношении влияния трематоды Opisthorchis felineus на иммунную систему хозяина. Проанализированы данные об иммуномодулирующем действии гемозоина различного происхождения. Представлены современные сведения об иммунных механизмах активации инфламмасомы и возможной роли гемозоина в уменьшении аллергического воспаления посредством данного механизма.
Согласно результатам исследований, систематизированным в данной статье, экскреторно-секреторная молекула печёночной двуустки является перспективным для будущих исследований продуктом паразитарного происхождения с выраженным иммуномодулирующим действием. Экстракт Opisthorchis felineus увеличивает экспрессию Т-регуляторных клеток и подавляет Th2-иммунный ответ.
Гемозоин Opisthorchis felineus, как и гемозоин Plasmodium falciparum, может принимать участие в уменьшении активности аллергического воспаления через активацию инфламмасомы. Понимание того, как гемозоин взаимодействует с иммунной системой хозяина, может быть использовано для коррекции состояний, ассоциированных с Th2-поляризацией иммунного ответа, к которым в первую очередь относятся атопические заболевания.
Изучение механизмов воспаления поможет в поиске биологической мишени с целью создания вакцины для предотвращения распространённости атопических заболеваний, в том числе бронхиальной астмы.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Анастасия Павловна Мелентьева
Сибирский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: anastasiaymelenteva@gmail.com
ORCID iD: 0009-0009-5600-5760
Россия, Томск
Тамара Андреевна Паршуткина
Сибирский государственный медицинский университет
Email: tamara.parshutkina@gmail.com
ORCID iD: 0009-0008-3948-3608
Россия, Томск
Людмила Михайловна Огородова
Сибирский государственный медицинский университет
Email: edu@tomsk.gov.ru
ORCID iD: 0000-0002-2962-1076
д-р мед. наук, профессор, член-корр. РАН
Россия, ТомскОльга Сергеевна Фёдорова
Сибирский государственный медицинский университет
Email: olga.sergeevna.fedorova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-7130-9609
SPIN-код: 5285-4593
д-р мед. наук
Россия, ТомскСписок литературы
- Vasileiadou S., Ekerljung L., Bjerg A., Goksör E. Asthma increased in young adults from 2008–2016 despite stable allergic rhinitis and reduced smoking // PLoS One. 2021. Vol. 16, N 6. P. e0253322. EDN: VTRWEP doi: 10.1371/journal.pone.0253322
- Windsor J.W., Kaplan G.G. Evolving epidemiology of IBD // Curr Gastroenterol Rep. 2019. Vol. 21, N 8. Р. 40. EDN: KHUTQP doi: 10.1007/s11894-019-0705-6
- Biagioni B., Vitiello G., Bormioli S., et al. Migrants and allergy: A new view of the atopic march // Eur Ann Allergy Clin Immunol. 2019. Vol. 51, N 3. P. 100–114. doi: 10.23822/EurAnnACI.1764-1489.96
- Khosravi M., Mirsamadi E.S., Mirjalali H., Zali M.R. Isolation and functions of extracellular vesicles derived from parasites: The promise of a new era in immunotherapy, vaccination, and diagnosis // Int J Nanomedicine. 2020. N 15. Р. 2957–2969. EDN: MJUUBP doi: 10.2147/IJN.S250993
- Lothstein K.E., Gause W.C. Mining helminths for novel therapeutics // Trends Mol Med. 2021. Vol. 27, N 4. Р. 345–364. doi: 10.1016/j.molmed.2020.12.010
- Wenjie S., Ning X., Xuelin W., et al. Helminth therapy for immune-mediated inflammatory diseases: Current and future perspectives // J Inflammat Res. 2022. N 15. Р. 475–491. EDN: HLEQUG doi: 10.2147/JIR.S348079
- Hendrik J.P., van der Zande., Zawistowska-Deniziak A., Guigas B. Immune regulation of metabolic homeostasis by helminths and their molecules // Trends Parasitol. 2019. Vol. 35, N 10. Р. 795–808. doi: 10.1016/j.pt.2019.07.014
- Wu Z., Wang L., Tang Y., Sun X. Parasite-derived proteins for the treatment of allergies and autoimmune diseases // Front Microbiol. 2017. N 8. Р. 2164. doi: 10.3389/fmicb.2017.02164
- Maruszewska-Cheruiyot M., Szewczak L., Krawczak-Wójcik K., et al. The production of excretory-secretory molecules from Heligmosomoides polygyrus bakeri fourth stage larvae varies between mixed and single sex cultures // Parasit Vectors. 2021. Vol. 14, N 1. Р. 1–10. EDN: NOZQIY doi: 10.1186/s13071-021-04613-9
- Zakeri A., Hansen E.P., Andersen S.D., et al. Immunomodulation by helminths: Intracellular pathways and extracellular vesicles // Front Immunol 2018. N 9. Р. 2349. doi: 10.3389/fimmu.2018.02349
- Pershina A.G., Saltykova I.V., Ivanov V.V., et al. Hemozoin "knobs" in O. felineus infected liver // Parasit Vectors. 2015. N 8. Р. 459. EDN: UZZGJT doi: 10.1186/s13071-015-1061-5
- Lvova M., Zhukova M., Kiseleva E., et al. Hemozoin is a product of heme detoxification in the gut of the most medically important species of the family Opisthorchiidae // Int J Parasitol. 2016. Vol. 46, N 3. Р. 147–156. doi: 10.1016/j.ijpara.2015.12.003
- Евдокимова Т.А., Огородова Л.М. Влияние хронической описторхозной инвазии на клиническое течение и иммунный ответ при атопической бронхиальной астме у детей // Педиатрия. Журнал им. Г.Н. Сперанского. 2005. Т. 84, № 6. С. 12–17. EDN: HSTFKZ
- Огородова Л.М., Фрейдин М.Б., Сазонов А.Э., и др. Влияние инвазии Opistorchis felineus на иммунный ответ при бронхиальной астме // Бюллетень сибирской медицины. 2010. Т. 9, № 3. С. 85–90. EDN: MSMIQD doi: 10.20538/1682-0363-2010-3-85-90
- Saltykova I.V., Ittiprasert W., Nevskaya K.V., et al. Hemozoin from the liver fluke, O. felineus, modulates dendritic cell responses in bronchial asthma patients // Front Vet Sci. 2019. N 6. Р. 332. EDN: PDCHOC doi: 10.3389/fvets.2019.00332
- Огородова Л.М., Фрейдин М.Б., Сазонов А.Э., и др. Изучение распространенности аллергической патологии и описторхозной инвазии и их взаимосвязи у населения Томской области // Бюллетень сибирской медицины. 2006. Т. 5, № 4. С. 48–51. EDN: HVQRGH doi: 10.20538/1682-0363-2006-4-48-51
- Ogorodova L.M., Freidin M.B., Sazonov A.E., et al. A pilot screening of prevalence of atopic states and opisthorchosis and their relationship in people of Tomsk Oblast // Parasitol Res. 2007. Vol. 101, N 4. Р. 1165–1168. doi: 10.1007/s00436-007-0588-6
- Fedorova O.S., Janse J.J., Ogorodova L.M., et al. O. felineus negatively associates with skin test reactivity in Russia-EuroPrevall-International Cooperation study // Allergy. 2017. Vol. 72, N 7. Р. 1096–1104. EDN: XMXPYP doi: 10.1111/all.13120
- Фёдорова О.С. Распространенность пищевой аллергии у детей в мировом очаге описторхоза // Бюллетень сибирской медицины. 2010. Т. 9, № 5. С. 102–107. EDN: MVJFYX doi: 10.20538/1682-0363-2010-5-102-107
- Saltykova I.V., Ogorodova L.M., Bragina E.Y., et al. O. felineus liver fluke invasion is an environmental factor modifying genetic risk of atopic bronchial asthma // Acta Trop. 2014. N 139. Р. 53–56. EDN: UEMZWL doi: 10.1016/j.actatropica.2014.07.004
- Кириллова Н.А., Деев И.А., Кремер Е.Э., и др. Субпопуляции Т-регуляторных клеток при бронхиальной астме и гетерогенных фенотипах хронической обструктивной болезни легких // Бюллетень сибирской медицины. 2011. Т. 10, № 1. С. 48–54. EDN: MKRKHY doi: 10.20538/1682-0363-2011-1-48-54
- Гонсорунова Д.С., Огородова Л.М., Фёдорова О.С., и др. Участие Т-регуляторных клеток в иммунном ответе при атопическом дерматите // Бюллетень сибирской медицины. 2011. Т. 10, № 4. С. 82–88. EDN: OFNNVD doi: 10.20538/1682-0363-2011-4-82-88
- Kremer E.E., Ogorodova L.M., Kirillova N.A., et al. [Immunophenotypic characteristic of dendritic cells in bronchial asthma in conditions of extract O. felineus in vitro. (In Russ)] // Annals Russ Academ Med Sci. 2013. N 5. Р. 66–70. EDN: QCUWIL doi: 10.15690/vramn.v68i5.665
- Pack A.D., Schwartzhoff P.V., Zacharias Z.R., et al. Hemozoin-mediated inflammasome activation limits long-lived anti-malarial immunity // Cell Rep. 2021. Vol. 36, N 8. Р. 109586. doi: 10.1016/j.celrep.2021.109586
- Fontana M.F., Saphire E.O., Pepper M. Plasmodium infection disrupts the T follicular helper cell response to heterologous immunization // Elife. 2023. N 12. Р. e83330. doi: 10.7554/eLife.83330
- Surette F.A., Guthmiller J.J., Li L., et al. Extrafollicular CD4 T cell-derived IL-10 functions rapidly and transiently to support anti-Plasmodium humoral immunity // PLoS Pathog. 2021. Vol. 17, N 2. Р. e1009288. doi: 10.1371/journal.ppat.1009288
- Chen M.M., Shi L., Sullivan D.J. Haemoproteus and schistosoma synthesize heme polymers similar to plasmodium hemozoin and beta-hematin // Mol Biochem Parasitol. 2001. Vol. 113, N 1. Р. 1–8. doi: 10.1016/s0166-6851(00)00365-0
- Hoang A.N., Ncokazi K.K., de Villiers K.A., et al. Crystallization of synthetic haemozoin (beta-haematin) nucleated at the surface of lipid particles // Dalton Trans. 2010. Vol. 39, N 5. Р. 1235–1244. doi: 10.1039/b914359a
- Coronado L.M., Nadovich C.T., Spadafora C. Malarial hemozoin: From target to tool // Biochim Biophys Acta. 2014. Vol. 1840, N 6. Р. 2032–2041. doi: 10.1016/j.bbagen.2014.02.009
- Xiao S.H., Sun J. Schistosoma hemozoin and its possible roles // Int J Parasitol. 2017. Vol. 47, N 4. Р. 171–183. doi: 10.1016/j.ijpara.2016.10.005
- Egan T.J. Haemozoin formation // Mol Biochem Parasitol. 2008. Vol. 157, N 2. Р. 127–136. doi: 10.1016/j.molbiopara.2007.11.005
- Dostert C., Guarda G., Romero J.F., et al. Malarial hemozoin is a Nalp3 inflammasome activating danger signal // PLoS One. 2009. Vol. 4, N 8. Р. e6510. doi: 10.1371/journal.pone.0006510
- Uraki R., Das S.C., Hatta M., et al. Hemozoin as a novel adjuvant for inactivated whole virion influenza vaccine // Vaccine. 2014. Vol. 32, N 41. Р. 5295–5300. doi: 10.1016/j.vaccine.2014.07.079
- Griffith J.W., Sun T., McIntosh M.T., Bucala R. Pure hemozoin is inflammatory in vivo and activates the NALP3 inflammasome via release of uric acid // J Immunol. 2009. Vol. 183, N 8. Р. 5208–5220. doi: 10.4049/jimmunol.0713552
- Jaramillo M., Gowda D.C., Radzioch D., Olivier M. Hemozoin increases IFN-gamma-inducible macrophage nitric oxide generation through extracellular signal-regulated kinase- and NF-kappa B-dependent pathways // J Immunol. 2003. Vol. 171, N 8. Р. 4243–4253. doi: 10.4049/jimmunol.171.8.4243
- Urban B.C., Todryk S. Malaria pigment paralyzes dendritic cells // J Biol. 2006. Vol. 5, N 2. Р. 4. doi: 10.1186/jbiol37
- Jiang Y., Xue X., Chen X., et al. Hemozoin from Schistosoma japonicum does not affect murine myeloid dendritic cell function // Parasitol Res. 2010. Vol. 106, N 3. Р. 653–659. doi: 10.1007/s00436-009-1717-1
- Truscott M., Evans D.A., Gunn M., Hoffmann K.F. Schistosoma mansoni hemozoin modulates alternative activation of macrophages via specific suppression of retnla expression and secretion // Infect Immun. 2013. Vol. 81, N 1. Р. 133–142. doi: 10.1128/IAI.00701-12
- Lee M.S., Igari Y., Tsukui T., et al. Current status of synthetic hemozoin adjuvant: A preliminary safety evaluation // Vaccine. 2016. Vol. 34, N 18. Р. 2055–2061. doi: 10.1016/j.vaccine.2016.02.064
- Bobade D., Khandare A.V., Deval M., et al. Hemozoin-induced activation of human monocytes toward M2-like phenotype is partially reversed by antimalarial drugs-chloroquine and artemisinin // Microbiologyopen. 2019. Vol. 8, N 3. Р. e00651. doi: 10.1002/mbo3.651
- Maknitikul S., Luplertlop N., Chaisri U., et al. Featured article: Immunomodulatory effect of hemozoin on pneumocyte apoptosis via CARD9 pathway, a possibly retarding pulmonary resolution // Exp Biol Med (Maywood). 2018. Vol. 243, N 5. Р. 395–407. doi: 10.1177/1535370218757458
- Keller C.C., Yamo O., Ouma C., et al. Acquisition of hemozoin by monocytes down-regulates interleukin-12 p40 (IL-12p40) transcripts and circulating IL-12p70 through an IL-10-dependent mechanism: In vivo and in vitro findings in severe malarial anemia // Infect Immun. 2006. Vol. 74, N 9. Р. 5249–5260. doi: 10.1128/IAI.00843-06
- Sherry B.A., Alava G., Tracey K.J., et al. Malaria-specific metabolite hemozoin mediates the release of several potent endogenous pyrogens (TNF, MIP-1 alpha, and MIP-1 beta) in vitro, and altered thermoregulation in vivo // J Inflamm. 1995. Vol. 45, N 2. Р. 85–96.
- Ranjan R., Karpurapu M., Rani A., et al. Hemozoin regulates inos expression by modulating the transcription factor nf-κb in macrophages // Biochem Mol Biol J. 2016. Vol. 2, N 2. Р. 10. doi: 10.21767/2471-8084.100019
- Dostert C., Guarda G., Romero J.F., et al. Malarial hemozoin is a Nalp3 inflammasome activating danger signal // PLoS One. 2009. Vol. 4, N 8. Р. e6510. doi: 10.1371/journal.pone.0006510
- Perkins D.J., Moore J.M., Otieno J., et al. In vivo acquisition of hemozoin by placental blood mononuclear cells suppresses PGE2, TNF-alpha, and IL-10 // Biochem Biophys Res Commun. 2003. Vol. 311, N 4. Р. 839–846. doi: 10.1016/j.bbrc.2003.10.073
- Shio M.T., Eisenbarth S.C., Savaria M., et al. Malarial hemozoin activates the NLRP3 inflammasome through Lyn and Syk kinases // PLoS Pathog. 2009. Vol. 5, N 8. Р. e1000559. doi: 10.1371/journal.ppat.1000559
- Saltykova I.V., Ittiprasert W., Nevskaya K.V., et al. Hemozoin from the liver fluke, O. felineus, modulates dendritic cell responses in bronchial asthma patients // Front Vet Sci. 2019. N 6. Р. 332. doi: 10.3389/fvets.2019.00332
- Schwarzer E., Skorokhod O.A., Barrera V., Arese P. Hemozoin and the human monocyte: A brief review of their interactions // Parassitologia. 2008. Vol. 50, N 1-2. Р. 143–145.
- Deroost K., Tyberghein A., Lays N., et al. Hemozoin induces lung inflammation and correlates with malaria-associated acute respiratory distress syndrome // Am J Respir Cell Mol Biol. 2013. Vol. 48, N 5. Р. 589–600. doi: 10.1165/rcmb.2012-0450OC
- Skorokhod O.A., Alessio M., Mordmüller B., et al. Hemozoin (malarial pigment) inhibits differentiation and maturation of human monocyte-derived dendritic cells: A peroxisome proliferator-activated receptor-gamma-mediated effect // J Immunol. 2004. Vol. 173, N 6. Р. 4066–4074. doi: 10.4049/jimmunol.173.6.4066
- Schwarzer E., Alessio M., Ulliers D., Arese P. Phagocytosis of the malarial pigment, hemozoin, impairs expression of major histocompatibility complex class II antigen, CD54, and CD11c in human monocytes // Infect Immun. 1998. Vol. 66, N 4. Р. 1601–1606. doi: 10.1128/IAI.66.4.1601-1606.1998
- Waseem S., Ur-Rehman K., Kumar R., Mahmood T. Hemozoin enhances maturation of murine bone marrow derived macrophages and myeloid dendritic cells // Iran J Immunol. 2016. Vol. 13, N 1. Р. 1–8.
- Cambos M., Bazinet S., Abed E., et al. The IL-12p70/IL-10 interplay is differentially regulated by free heme and hemozoin in murine bone-marrow-derived macrophages // Int J Parasitol. 2010. Vol. 40, N 9. Р. 1003–1012. doi: 10.1016/j.ijpara.2010.02.007
- Shi W., Xu N., Wang X., et al. Helminth therapy for immune-mediated inflammatory diseases: Current and future perspectives // J Inflamm Res. 2022. N 15. Р. 475–491. doi: 10.2147/JIR.S348079
- Liu J.Y., Li L.Y., Yang X.Z., et al. Adoptive transfer of dendritic cells isolated from helminth-infected mice enhanced T regulatory cell responses in airway allergic inflammation // Parasite Immunol. 2011. N 33. Р. 525–534. doi: 10.1111/j.1365-3024.2011.01308.x
- Coronado L.M., Nadovich C.T., Spadafora C. Malarial hemozoin: From target to tool // Biochim Biophys Acta. 2014. Vol. 1840, N 6. Р. 2032–2041. doi: 10.1016/j.bbagen.2014.02.009
- Broz P., Dixit V.M. Inflammasomes: Mechanism of assembly, regulation and signalling // Nat Rev Immunol. 2016. Vol. 16, N 7. Р. 407–420. doi: 10.1038/nri.2016.58
- Toldo S., Mauro A.G., Cutter Z., Abbate A. Inflammasome, pyroptosis, and cytokines in myocardial ischemia-reperfusion injury // Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2018. Vol. 315, N 6. Р. H1553–H1568. doi: 10.1152/ajpheart.00158.2018
- De Queiroz G.A., da Silva R.R., de Pires A.O., et al. New variants in NLRP3 inflammasome genes increase risk for asthma and blomia tropicalis-induced allergy in a Brazilian population // Cytokine X. 2020. Vol. 2, N 3. Р. 100032. doi: 10.1016/j.cytox.2020.100032
- Madouri F., Guillou N., Fauconnier L., et al. Caspase-1 activation by NLRP3 inflammasome dampens IL-33-dependent house dust mite-induced allergic lung inflammation // J Mol Cell Biol. 2015. Vol. 7, N 4. P. 351–365. doi: 10.1093/jmcb/mjv012
- Préfontaine D., Lajoie-Kadoch S., Foley S., et al. Increased expression of IL-33 in severe asthma: Evidence of expression by airway smooth muscle cells // J Immunol. 2009. Vol. 183, N 8. Р. 5094–5103. doi: 10.4049/jimmunol.0802387
- Faustino L.D., Griffith J.W., Rahimi R.A., et al. Luster interleukin-33 activates regulatory T cells to suppress innate γδ T cell responses in the lung // Nat Immunol. 2020. Vol. 21, N 11. Р. 1371–1383. doi: 10.1038/s41590-020-0785-3