Изменения роговицы после фульгурации и кросслинкинга в эксперименте

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Актуальность. Тяжёлые прогрессирующие формы инфекционного кератита часто сопряжены с риском нарушения структурной целостности глазного яблока и развитием эндофтальмита. При наличии отрицательной динамики на фоне консервативной этиотропной терапии при тяжёлом кератите целесообразно использовать хирургические методы лечения. Комбинация двух хирургических методов воздействия на фармакорезистентный инфекционный процесс в роговице — кросслинкинга и фульгурации — является перспективным и требует дальнейшего изучения.

Цель — в эксперименте оценить воздействие на ткани роговицы различных режимов фульгурации постоянным током, в том числе в комбинации с кросслинкингом.

Материалы и методы. Экспериментальное исследование in vivo было проведено на 19 кроликах (38 глаз) породы советская шиншилла, средняя масса тела животных составила 2,5–4,0 кг. В зависимости от этапа исследования, вида и мощности воздействия при фульгурации кролики были разделены на 3 группы.

Результаты. При воздействии на роговицу в режиме 5 фульгурации изменения охватывали лишь 10–15 % передней стромы, около 50 мкм, и как клинически, так и гистологически были недостаточными. При воздействии в режиме 6 и 7 через 3 мес. изменения стромальной структуры распространялись примерно на 150 мкм. При использовании режима 8 между десцеметовой мембраной и эндотелием отмечалось незначительное разрастание соединительной ткани. Сочетание кросслинкинга с фульгурацией позволило получить более компактную структуру передних слоёв стромы роговицы и стабильность эпителия.

Выводы. Фульгурация может быть относительно безопасным способом воздействия на роговицу при фармакорезистентных прогрессирующих кератитах. Фульгурация и кросслинкинг роговицы могут потенцировать эффект друг друга. Режим фульгурации 7 (1,5 Вт) оптимален при воздействии на роговицу для эрадикации инфекционных агентов.

Об авторах

Рафик Бутаба

Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Email: dr.rafik_boutaba@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3700-8255
SPIN-код: 3416-3915
Россия, 197022, Санкт-Петербург, ул. Льва Толстого, д. 6–8

Сергей Владимирович Труфанов

Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Email: trufanov05@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4360-793X
SPIN-код: 1603-8931

д-р мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Инна Александровна Рикс

Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Email: riks0503@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5187-1047
SPIN-код: 4297-6543

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Мэгги Эзугбая

Диагностический центр № 7 (глазной)

Email: maggie-92@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0421-1804
Россия, Санкт-Петербург

Галина Юрьевна Юкина

Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Email: pipson@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0001-8888-4135
SPIN-код: 2533-2084

канд. биол. наук, доцент

Россия, Санкт-Петербург

Елена Геннадиевна Сухорукова

Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Email: len48@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0001-5521-7248
SPIN-код: 2115-9041

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Санасар Сурикович Папанян

Диагностический центр № 7 (глазной)

Email: Dr.papanyan@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-3766-2211
SPIN-код: 9794-4692

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Светлана Леонидовна Николаенко

Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Email: nikolaenkos@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5184-3775

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Ольга Владимировна Горчакова

Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Автор, ответственный за переписку.
Email: gorchakova-spmu@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-5458-4329

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Raj A., Bahadur H., Dhasmana R. Outcome of therapeutic penetrating keratoplasty in advanced infectious keratitis // J Curr Ophthalmol. 2018. Vol. 30, No. 4. P. 315–332. doi: 10.1016/j.joco.2018.04.0017
  2. Tuli S., Gray M. Surgical management of corneal infections // Curr Opin Ophthalmol. 2016. Vol. 27, No. 4. P. 340–347. doi: 10.1097/ICU.0000000000000274
  3. Труфанов С.В., Шахбазян Н.П., Зайцев А.В., Розинова В.Н. Хирургические методы лечения инфекционных кератитов // Вестник офтальмологии. 2021. Т. 137, № 4. С. 128–135. doi: 10.17116/oftalma2021137041128
  4. Труфанов С.В., Зайцев А.В., Шахбазян Н.П. Кросслинкинг и фульгурация в лечении акантамебного кератита // Офтальмология. 2020. Т. 17, № 4. С. 725–732. doi: 10.18008/1816-5095-2020-4-725-732
  5. Tsugita A., Okada Y., Uehara K. Photosensitized inactivation of ribonucleic acids in the presence of riboflavin // Biochim Biophys Acta. 1965. Vol. 103, No. 2. P. 360–363. doi: 10.1016/0005-2787(65)90182-6
  6. Goodrich R.P., Edrich R.A., Li J., Seghatchian J. The Mirasol PRT system for pathogen reduction of platelets and plasma: an overview of current status and future trends // Transfus Apher Sci. 2006. Vol. 35, No. 1. P. 5–17. doi: 10.1016/j.transci.2006.01.007
  7. Marschner S., Goodrich R. Pathogen reduction technology treatment of platelets, plasma and whole blood using riboflavin and UV light // Transfus Med Hemother. 2011. Vol. 38, No. 1. P. 8–18. doi: 10.1159/000324160
  8. Ruane P.H., Edrich R., Gampp D., et al. Photochemical inactivation of selected viruses and bacteria in platelet concentrates using riboflavin and light // Transfusion. 2004. Vol. 44, No. 6. P. 877–885. doi: 10.1111/j.1537-2995.2004.03355
  9. Reddy H.L., Dayan A.D., Cavagnaro J., et al. Toxicity testing of a novel riboflavin-based technology for pathogen reduction and white blood cell inactivation // Transfus Med Rev. 2008. Vol. 22, No. 2. P. 133–153. doi: 10.1016/j.tmrv.2007.12.003
  10. Khan Y.A., Kashiwabuchi R.T., Martins S.A., et al. Riboflavin and ultraviolet light a therapy as an adjuvant treatment for medically refractive Acanthamoeba keratitis // Ophthalmology. 2011. Vol. 118, No. 2. P. 324–331. doi: 10.1016/j.ophtha.2010.06.041
  11. Garduño-Vieyra L., Gonzalez-Sanchez C.R., Hernandez-Da Mota S.E. Ultraviolet — a light and riboflavin therapy for Acanthamoeba keratitis // Case Rep Ophthalmol. 2011. Vol. 2, No. 2. P. 291–295. doi: 10.1159/000331707
  12. Berra M., Galperin G., Boscaro G., et al. Treatment of Acanthamoeba keratitis by corneal cross-linking // Cornea. 2013. Vol. 32, No. 2. P. 174–178. doi: 10.1097/ICO.0b013e31825cea99
  13. Del Buey M.A., Cristobal J.A., Casas P., et al. Evaluation of in vitro efficacy of combined riboflavin and ultraviolet A for Acanthamoeba isolates // Am J Ophthalmol. 2012. Vol. 153, No. 3. P. 399–404. doi: 10.1016/j.ajo.2011.07.025
  14. Lamy R., Chan E., Good S.D., et al. Riboflavin and ultraviolet A as adjuvant treatment against Acanthamoeba cysts // Clin Exp Ophthalmol. 2016. Vol. 44, No. 3. P. 181–187. doi: 10.1111/ceo.12644
  15. Kashiwabuchi R.T., Carvalho F.R.S., Khan Y.A., et al. Assessing efficacy of combined riboflavin and UV-A light (365 nm) treatment of Acanthamoeba trophozoites // Investig Ophthalmol Vis Sci. 2011. Vol. 52, No. 13. P. 9333–9338. doi: 10.1167/iovs.11-8382
  16. Price M.O., Price F.W. Jr. Corneal cross-linking in the treatment of corneal ulcers // Curr Opin Ophthalmol. 2016. Vol. 27, No. 3. P. 250–255. doi: 10.1097/ICU.0000000000000248
  17. Каспарова Е.А., Зайцев А.В., Каспарова Е.А., Каспаров А.А. Микродиатермокоагуляция в лечении инфекционных язв роговицы // Офтальмология. 2016. Т. 13, № 3. С. 157–162. doi: 10.18008/1816-5095-2016-3-157-162
  18. Патент РФ на изобретение № 2732696/ 21.09.2020. Неспор Радек (CZ). Портативное устройство, используемое главным образом для прижигания и высушивания посредством искрового разряда. Москва: ФИПС.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Коагуляты на роговице кролика, режим 8

Скачать (250KB)
3. Рис. 2. Глаз кролика во время кросслинкинга

Скачать (194KB)
4. Рис. 3. Фрагмент роговицы после воздействия в подгруппе 1а. Фульгурация, режим 5. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×100

Скачать (103KB)
5. Рис. 4. Фрагмент роговицы через 3 мес. после воздействия в подгруппе 1а. Фульгурация, режим 6. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×40

Скачать (61KB)
6. Рис. 5. Фрагмент роговицы после воздействия в подгруппе 1а. Фульгурация, режим 7. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×100

Скачать (126KB)
7. Рис. 6. Фрагмент роговицы после воздействия в подгруппе 1а. Фульгурация, режим 8. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×40

Скачать (134KB)
8. Рис. 7. Фрагмент роговицы после воздействия в подруппе 1а. Кросслинкинг. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×100

Скачать (115KB)
9. Рис. 8. Фрагмент роговицы после воздействия в подгруппе 1б. Кросслинкинг + фульгурация, режим 5. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×40

Скачать (68KB)
10. Рис. 9. Фрагмент роговицы после воздействия в подгруппе 1б. Кросслинкинг + фульгурация, режим 6. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×100

Скачать (126KB)
11. Рис. 10. Фрагмент роговицы после воздействия в подгруппе 1б. Кросслинкинг + фульгурация, режим 7. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×40

Скачать (48KB)
12. Рис. 11. Фрагмент роговицы после воздействия в подгруппе 1б. Кросслинкинг + фульгурация, режим 8. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×100

Скачать (81KB)
13. Рис. 12. Фрагмент роговицы после воздействия в группе 2. Фульгурация, режим 6. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×100

Скачать (162KB)
14. Рис. 13. Фрагмент роговицы после воздействия в группе 2. Фульгурация, режим 7. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×40

Скачать (74KB)
15. Рис. 14. Фрагмент роговицы после воздействия в группе 2. Кросслинкинг + фульгурация, режим 6. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×40

Скачать (45KB)
16. Рис. 15. Фрагмент роговицы после воздействия в группе 2. Кросслинкинг + фульгурация, режим 7. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×40

Скачать (146KB)
17. Рис. 16. Фрагмент роговицы после воздействия в группе 3. Фульгурация, режим 7. Лейкоциты в строме роговицы. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×100

Скачать (140KB)

© Эко-Вектор, 2024

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах