Вителлиформные изменения макулярной области, встречающиеся у взрослых пациентов

Обложка
  • Авторы: Мацко Н.В.1,2, Гацу М.В.1,2, Григорьева Н.Н.3,4
  • Учреждения:
    1. ФГАУ «Национальный медицинский исследовательский центр „Межотраслевой научно-технический комплекс «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Фёдорова“» Минздрава России
    2. ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России
    3. СПбГБУЗ «Городской консультативно-диагностический центр № 1», Территориальный диабетологический центр
    4. ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный университет»
  • Выпуск: Том 12, № 4 (2019)
  • Страницы: 73-86
  • Раздел: В помощь практикующему врачу
  • URL: https://journals.rcsi.science/ov/article/view/18513
  • DOI: https://doi.org/10.17816/OV18513
  • ID: 18513

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Введение. Вителлиформные поражения центральной области сетчатки у взрослых пациентов представляют собой гетерогенную группу заболеваний. В статье описаны различные варианты вителлиформных изменений у взрослых по данным опубликованной литературы.

Материалы и методы. Проанализированы и описаны различные варианты вителлиформных изменений сетчатки у взрослых по данным опубликованной литературы, приведены примеры из собственной клинической практики с использованием мультимодального подхода.

Обсуждение. Вителлиформные изменения центральной области сетчатки могут дебютировать в разном возрасте, протекать моно- и мультифокально, иметь различные стадии деградации вителлиформного материала, маскируясь под другие поражения макулярной зоны и заднего полюса глаза. Многие из этих заболеваний появляются в связи с мутациями в отдельных генах, однако достаточно большая часть случаев расценивается как спорадическая. В настоящее время описаны характерные признаки различных вариантов заболеваний с наличием вителлиформного материала, однако дифференциальная диагностика с другими похожими заболеваниями (отдельными формами возрастной макулярной дегенерации и центральной серозной хориоретинопатией) весьма затруднительна и требует мультимодального офтальмологического подхода, а в ряде случаев — проведения генетических исследований.

Заключение. Вителлиформные поражения центральной области сетчатки, которые встречаются у взрослых пациентов, — это группа заболеваний, которые сложно поддаются диагностике, маскируясь под другие заболевания центрального отдела сетчатки, что требует от врача определённых знаний, возможности проведения мультимодальной диагностики для постановки диагноза и назначения лечения при необходимости.

Об авторах

Наталия Валентиновна Мацко

ФГАУ «Национальный медицинский исследовательский центр „Межотраслевой научно-технический комплекс «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Фёдорова“» Минздрава России; ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: matsko.natalia@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8909-9999

врач-офтальмолог, 5-е  офтальмологическое отделение; аспирант, кафедра офтальмологии

Россия, Санкт-Петербург

Марина Васильевна Гацу

ФГАУ «Национальный медицинский исследовательский центр „Межотраслевой научно-технический комплекс «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Фёдорова“» Минздрава России; ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России

Email: m-gatsu@yandex.ru

д-р мед. наук, заместитель директора по организационно-клинической работе; доцент, кафедра офтальмологии

Россия, Санкт-Петербург

Нюргуяна Николаевна Григорьева

СПбГБУЗ «Городской консультативно-диагностический центр № 1», Территориальный диабетологический центр; ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный университет»

Email: grinur@mail.ru

канд. мед. наук, врач-офтальмолог; ассистент, кафедра отоларингологии и офтальмологии

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Chowers I, Tiosano L, Audo I, et al. Adult-onset foveomacular vitelliform dystrophy: a fresh perspective. Prog Retin Eye Res. 2015;47:64-85. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2015.02.001.
  2. Dubovy S, Hairston R, Schatz H, et al. Adult-jnset foveomacular pigment epithelial dystrophy: clinicopathologic correlation of three cases. Retina. 2000;20(6):638-649. https://doi.org/10.1097/00006982-200006000-00010.
  3. Arnold J, Sarks J, Killingsworth M, et al. Adult vitelliform macular degeneration: a clinicopathological study. Eye. 2003;17(6):717-726. https://doi.org/10.1038/sj.eye.6700460.
  4. Benhamou N, Souied E, Zolf R, et al. Adult-onset foveomacular vitelliform dystrophy: a study by optical coherence tomography. Am J Ophthalmol. 2003;135(3):362-367. https://doi.org/10.1016/s0002-9394(02)01946-3.
  5. Querques G, Bux A, Prato R, et al. Correlation of visual function impairment and optical coherence tomography findings in patients with adult-onset foveomacular vitelliform macular dystrophy. Am J Ophthalmol. 2008;146(1):135-142. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2008.02.017.
  6. Freund K, Laud K, Lima L, et al. Acuired vitelliform lesions. Retina. 2011;31(1):13-25. https://doi.org/10.1097/iae.0b013e3181ea48ba.
  7. Marmor M, Byers B. Pattern dystrophy of the pigment epithelium. Am J Ophthalmol. 1977;84(1):32-44. https://doi.org/10.1016/ 0002-9394(77)90320-8.
  8. Hsieh R, Fine B, Lyons J. Patterned dystrophies of the retinal pigment epithelium. Arch Ophthalmol. 1977;95(3):429-435. https://doi.org/10.1001/archopht.1977.04450030071006.
  9. Gass JD. Stereoscopic atlas of macular diseases: diagnosis and treatment. 4th ed. Mosby-Year Book Inc., St Louis; 1997.
  10. Francis P. Genetic and phenotypic heterogeneity in pattern dystrophy. Br J Ophthalmol. 2005;89(9):1115-1119. https://doi.org/10.1136/bjo.2004.062695.
  11. Boon C, van Schooneveld M, den Hollander A, et al. Mutations in the peripherin/RDS gene are an important cause of multifocal pattern dystrophy simulating STGD1/fundus flavimaculatus. Br J Ophthalmol. 2007;91(11):1504-1511. https://doi.org/10.1136/bjo.2007.115659.
  12. Yang Z, Lin W, Moshfeghi D, et al. A novel mutation in the RDS/Peripherin gene causes adult-onset foveomacular dystrophy. Am J Ophthalmol. 2003;135(2):213-218. https://doi.org/10.1016/s0002-9394(02)01815-9.
  13. Gass J. A clinicopathologic study of a peculiar foveomacular dystrophy. Trans Am Ophthalmol Soc. 1974;72:139-156.
  14. Renner A, Tillack H, Kraus H, et al. Morphology and functional characteristics in adult vitelliform macular dystrophy. Retina. 2004;24(6): 929-39. https://doi.org/10.1097/00006982-200412000-00014.
  15. Furino C, Boscia F, Cardascia N, et al. Fundus autofluorescence, optical coherence tomography and visual acuity in adult-onset foveomacular dystrophy. Ophthalmologica. 2008;222(4):240-244. https://doi.org/10.1159/000130427.
  16. Parodi M, Iacono P, Pidio M, et al. Autofluorescence in adult-onset foveomacular vitelliform dystrophy. Retina. 2008;28(6):801-807. https://doi.org/10.1097/iae.0b013e31816f859d.
  17. Coscas F, Puche N, Coscas G, et al. Comparison of macular choroidal thickness in adult onset foveomacular vitelliform dystrophy and age-related macular degeneration. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2014;55(1):64-69. https://doi.org/10.1167/iovs.13-12931.
  18. Burgess D, Olk R, Uniat L. Macular disease resembling adult foveomacular vitelliform dystrophy in older adults. Ophthalmology. 1987;94(4):362-6. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(87) 33438-4.
  19. Bandah-Rozenfeld D, Collin R, Banin E, et al. Mutations in IMPG2, encoding interphotoreceptor matrix proteoglycan 2, cause autosomal-recessive retinitis pigmentosa. Am J Hum Gen. 2010;87(2):199-208. https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2010.07.004.
  20. Boon C, den Hollander A, Hoyng C, et al. The spectrum of retinal dystrophies caused by mutations in the peripherin/RDS gene. Prog Retin Eye Res. 2008;27(2):213-235. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2008.01.002.
  21. Wells J, Wroblewski J, Keen J, et al. Mutations in the human retinal degeneration slow (RDS) gene can cause either retinitis pigmentosa or macular dystrophy. Nat Genet. 1993;3(3):213-218. https://doi.org/10.1038/ng0393-213.
  22. Petrukhin K, Koisti M, Bakall B, et al. Identification of the gene responsible for Best macular dystrophy. Nat Genet. 1998;19(3):241-247. https://doi.org/10.1038/915.
  23. Krämer F, White K, Pauleikhoff D, et al. Mutations in the VMD2 gene are associated with juvenile-onset vitelliform macular dystrophy (Best disease) and adult vitelliform macular dystrophy but not age-related macular degeneration. Eur J Hum Gen. 2000;8(4):286-292. https://doi.org/10.1038/sj.ejhg.5200447.
  24. Renner A, Tillack H, Kraus H, et al. Late onset is common in best macular dystrophy associated with VMD2 gene mutations. Ophthalmology. 2005;112(4):586-592.e2. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2004.10.041.
  25. Querques G, Zerbib J, Santacroce R, et al. Functional and clinical data of Best vitelliform macular dystrophy patients with mutations in the BEST1 gen. Mol Vis. 2009;15:2960-2972.
  26. Meunier I, Manes G, Bocquet B, et al. Frequency and clinical pattern of vitelliform macular dystrophy caused by mutations of interphotoreceptor matrix IMPG1 and IMPG2 genes. Ophthalmology. 2014;121(12): 2406-2414. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2014.06.028.
  27. Spaide R. Autofluorescence from the outer retina and subretinal space: hypothesis and review. Retina. 2008;28(1):5-35. https://doi.org/10.1097/IAE.0b013e318158eca4.
  28. Boon CJ, Kleverin BJ, Leroy BP, et al. The spectrum of ocular phenotypes caused by mutations in the BEST1 gene. Prog Retin Eye Res. 2009;28(3):187-205. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2009.04.002.
  29. Querques G, Forte R, Querques L, et al. Natural course of adult-onset foveomacular vitelliform dystrophy: a spectral-domain optical coherence tomography analysis. Am J Ophthalmol. 2011;152:304-313. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2011.01.047.
  30. Barbazetto IA, Yannuzzi NA, Klais CM, et al. Pseudo-vitelliform macular detachment and cuticular drusen: exclusion of 6 candidate genes. Ophthalmic Genet. 2007;28(4):192-197. https://doi.org/10.1080/13816810701538596.
  31. Jaouni T, Averbukh E, Burstyn-Cohen T, et al. Association of pattern dystrophy with an HTRA1 singlenucleotide polymorphism. Arch Ophthalmol. 2012;130(8):987-991. https://doi.org/10.1001/archophthalmol.2012.1483.
  32. Deutman AF, van Blommestein JD, Henkes HE, et al. Butterfly-shaped pigment dystrophy of the fovea. Arch Ophthalmol. 1970;83(5):558-569. https://doi.org/ 10.1001/archopht.1970. 00990030558006.
  33. Weleber RG, Carr RE, Murphey WH, et al. Phenotypic variation including retinitis pigmentosa, pattern dystrophy, and fundus flavimaculatus in a single family with a deletion of codon 153 or 154 of the peripherin/RDS gene. Arch Ophthalmol. 1993;111(11):1531-1542. https://doi.org/10.1001/archopht.1993.01090110097033.
  34. Apfelstedt-Sylla E, Theischen M, Ruther K, et al. Extensive intrafamilial and interfamilial phenotypic variation among patients with autosomal dominant retinal dystrophy and mutations in the human RDS/peripherin gene. Br J Ophthalmol. 1995;79(1):28-34. https://doi.org/10.1136/bjo.79.1.28.
  35. Gorin MB, Jackson KE, Ferrell RE, et al. A peripherin/retinal degeneration slow mutation (Pro-210-Arg) associated with macular and peripheral retinal degeneration. Ophthalmology.1995;102(2):246-255. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(95)31029-9.
  36. Yang Z, Li Y, Jiang L, et al. A novel RDS/peripherin gene mutation associated with diverse macular phenotypes. Ophthalmic Genet. 2004;25(2):133-145. https://doi.org/10.1080/13816810490514388.
  37. Hannan SR, de Salvo G, Stinghe A, et al. Common spectral domain OCT and electrophysiological findings in different pattern dystrophies. Br J Ophthalmol. 2013;97(5):605-610. https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2011-301257.
  38. Slezak H, Hommer K. [Fundus pulverulentus. (In German)]. Albrecht Von Graefes Arch Klin Exp Ophthalmol. 1969;178(2):176-182. https://doi.org/10.1007/bf00414383.
  39. Roy R, Saurabh K, Shah D. Multimodal imaging in a case of fundus pulverulentus. Retina. 2018;38(7): e55-e58. https://doi.org/10.1097/iae.0000000000002213.
  40. Clemett R. Vitelliform dystrophy: long-term observations on New Zealand pedigrees. Aust N Z J Ophthalmol. 1991;19(3):221-227. https://doi.org/10.1111/j.1442-9071.1991.tb00665.x.
  41. Deutman AF. The hereditary dystrophies of the posterior pole of the eye. Br J Ophthalmol. 1971;55:788. https://doi.org/10.1136/bjo.55.11.788.
  42. Burgess R, Millar ID, Leroy BP, et al. Biallelic mutation of BEST1 causes a distinct retinopathy in humans. Am J Hum Genet. 2008;82(1):19-31. https://doi.org/ 10.1016/j.ajhg.2007.08.004.
  43. Borman AD, Davidson AE, O’Sullivan J, et al. Childhoodonset autosomal recessive bestrophinopathy. Arch Ophthalmol. 2011;129(8): 1088-1093. https://doi.org/10.1001/archophthalmol.2011.197.
  44. Gerth C, Zawadzki RJ, Werner JS, Héon E. Detailed analysis of retinal function and morphology in a patient with autosomal recessive bestrophinopathy (ARB). Doc Ophthalmol. 2009;118(3):239-246. https://doi.org/10.1007/s10633-008-9154-5.
  45. Boon CJ, van den Born LI, Visser L, et al. Autosomal recessive bestrophinopathy: differential diagnosis and treatment options. Ophthalmology. 2013;120(4):809-820. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2012.09.057.
  46. Gass J, Chuang E, Granek H. Acute exudative polymorphous vitelliform maculopathy. Trans Am Ophthalmol Soc. 1988;86:354-366.
  47. Barbazetto I, Dansingani K, Dolz-Marco R, et al. Idiopathic acute exudative polymorphous vitelliform maculopathy. Ophthalmology. 2018;125(1):75-88. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2017.07.020.
  48. Koreen L, He SX, Johnson MW, et al. Anti-retinal pigment epithelium antibodies in acute exudative polymorphous vitelliform maculopathy. Arch Ophthalmol. 2011;129(1):23-29. https://doi.org/10.1001/archophthalmol.2010.316.
  49. Саакян С.В., Мякошина Е.Б. Меланома-ассоциированная вителлиформная ретинопатия (клиническое наблюдение) // Вестник офтальмологии. – 2018. – Т. 134. – № 4. – С. 61-67. [Saakyan SV, Myakoshina EB. Melanoma-associated vitelliform retinopathy (a clinical case study). Annals of ophthalmology. 2018;134(4): 61-67. (In Russ.)]. https://doi.org/10.17116/oftalma201813404161.
  50. Eksandh L, Adamus G, Mosgrove L, Andréasson S. Autoantibodies against bestrophin in a patient with vitelliform paraneoplastic retinopathy and a metastatic choroidal malignant melanoma. Arch Ophthalmol. 2008;126(3):432-435. https://doi.org/10.1001/archopht.126.3.432.
  51. Aronow M, Adamus G, Abu-Asab M, et al. Paraneoplastic vitelliform retinopathy: clinicopathologic correlation and review of the literature. Surv Ophthalmol. 2012;57(6):558-564. https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2012.02.004.
  52. Urner-Bloch U, Urner M, Stieger P, et al. Transient MEK inhibitor-associated retinopathy in metastatic melanoma. Annals of Oncology. 2014;25(7):1437-1441. https://doi.org/10.1093/annonc/mdu169.
  53. Genead M, Fishman G, Anastasakis A, et al. Macular vitelliform lesion in desferrioxamine-related retinopathy. Doc Ophthalmol. 2010;121(2):161-166. https://doi.org/10.1007/s10633-010-9236-z.
  54. Ergun E, Tittl M, Stur M. Photodynamic therapy with verteporfin in subfoveal choroidal neovascularization secondary to central serous chorioretinopathy. Arch Ophthalmol. 2004;122(1):37-41. https://doi.org/10.1001/archopht.122.1.37.
  55. Mimoun G, Caillaux V, Querques G, et al. Ranibizumab for choroidal neovascularization associated with adult-onset foveomacular vitelliform dystrophy. Retina. 2013;33(3):513-521. https://doi.org/10.1097/iae.0b013e3182753adb.
  56. Tiosano L, Jaouni T, Averbukh E, et al. Bevacizumab treatment for choroidal neovascularization associated with adult-onset foveomacular vitelliform dystrophy. Eur J Ophthalmol. 2014;24(6):890-896. https://doi.org/10.5301/ejo.5000486.
  57. Conley S, Naash M. Gene therapy for PRPH2-associated ocular disease: challenges and prospects. Cold Spring Harb Perspect Med. 2014;4(11): a017376-a017376. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a017376.
  58. Tang P, Kono M, Koutalos Y, et al. New insights into retinoid metabolism and cycling within the retina. Prog Retin Eye Res. 2013;32:48-63. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2012.09.002.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Варианты вителлиформных изменений центральной области сетчатки, встречающиеся у взрослых пациентов

Скачать (59KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Типичный случай вителлиформной дистрофии взрослых: a — цветное фото сетчатки (в фовеоле желтый округлый очаг диаметром около 1/3 диаметра диска зрительного нерва); b — исследование аутофлюоресценции (в фовеоле гипераутофлюоресцирующий очаг диаметром около 1/3 диаметра диска зрительного нерва); c — ОКТ высокого разрешения (гиперрефлективное вителлиформное вещество, заполняющее пространство под отслоенным нейроэпителием); d — ОКТ в ангиорежиме, слой хориокапилляров с наложенными собственными сосудами (отсутствуют признаки новообразованных сосудов); e — ФАГ (ранняя артериовенозная фаза исследования, гипофлюоресценция в фовеоле); f — ФАГ (поздняя артериовенозная фаза исследования, гиперфлюоресценция в зоне наличия вителлиформного вещества); g — ангиография с индоцианин-зелёным красителем (гипофлюоресцентное пятно в фовеоле в зоне наличия вителлиформного вещества)

Скачать (165KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Типичный случай дистрофии в виде «крыльев бабочки»: a — цветное фото сетчатки (в макуле округлый участок атрофии и гиперплазии пигментного эпителия); b — исследование аутофлюоресценции (гипераутофлюоресцирующие «спицы», фигура бабочки, гипоаутофлюоресценция между «спицами», свидетельствующая об атрофии пигментного эпителия); c — ФАГ (артериовенозная фаза исследования, зоны гипо- и гиперфлюоресценции формируют характерный рисунок); d — ОКТ высокого разрешения (оптически пустая отслойка нейроэпителия с остаточным количеством вителлиформного вещества)

Скачать (123KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Типичный случай болезни Беста, дебютирующей во взрослом возрасте: a — цветное фото 2014 г. (в макуле очаг овальной формы жёлтого цвета с отложением пигмента); b — исследование аутофлюоресценции 2014 г. (в макуле гипераутофлюоресцирующий очаг овальной формы с гипофлюоресцирующей зоной над очагом); c — цветное фото 2016 г. (в макуле очаг овальной формы жёлтого цвета с отложением пигмента, который значительно увеличился в размере по сравнению с 2014 г.); d — исследование аутофлюоресценции 2016 г. (в макуле гипераутофлюоресцирующий очаг овальной формы, гипофлюоресцирующая зона над очагом не видна из-за увеличения площади, занятой вителлиформным веществом).

Скачать (192KB)
Метаданные
6. Рис. 5. Типичный случай болезни Беста, дополнительные исследования: a — ОКТ высокого разрешения (гиперрефлективное вителлиформное вещество, заполняющее пространство под отслоенным нейроэпителием); b — ФАГ (ранняя артериовенозная фаза исследования, округлый гипофлюоресцирующий очаг в макуле); c — ФАГ (поздняя артериовенозная фаза исследования, гиперфлюоресценция в зоне наличия вителлиформного вещества в виде «кольца»); d — ангиография с индоцианин-зеленым красителем (гипофлюоресцентное пятно в фовеоле в зоне наличия вителлиформного вещества)

Скачать (220KB)
Метаданные
7. Рис. 6. Случай болезни Беста, осложнённой формированием хориоидальной неоваскуляризации в процессе наблюдения за пациентом: a — цветное фото сетчатки при первом визите (в макуле округлый очаг с признаками атрофии и гиперплазии пигментного эпителия); b — исследование аутофлюоресценции при первом визите (гипераутофлюоресцирующие мелкие очаги по краю зоны атрофии пигментного эпителия, в центре — участки гипоаутофлюоресценции, соответствующие зонам атрофии ретинального пигментного эпителия); c — цветное фото сетчатки через год после первого визита (значительное увеличение площади участка атрофии пигментного эпителия, признаки рубцевания в центре); d — исследование аутофлюоресценции через год (гипоаутофлюоресцирующее кольцо атрофии пигментного эпителия, гипераутофлюоресцирующий участок, соответствующий хориоидальной неоваскуляризации с признаками рубцевания в центре); e — ОКТ при первом визите (отслойка нейроэпителия прилежит, зоны разрушения фоторецепторов, признаки атрофии ретинального пигментного эпителия); f — ОКТ через год после первого визита (пигментный эпителий утолщен, пигменный эпителий и нейроэпителий приподняты гиперэхогенным субстратом, соответствующим хориоидальной неоваскуляризации, кисты в слоях нейросенсорной ретины)

Скачать (184KB)
Метаданные
8. Рис. 7. Семейный случай аутосомно-рецессивной бестрофинопатии (отец семейства): a — фото сетчатки (в макуле участок атрофии и гиперплазии пигментного эпителия с желтыми включениями, множественные желтые очаги вдоль сосудистых аркад); b — исследование аутофлюоресценции (гипераутофлюоресцирующие мелкие очаги вдоль сосудистых аркад, с височной стороны от диска зрительного нерва, в макуле мелкоточечная гипер- и гипоаутофлюоресценция); c — ОКТ высокого разрешения (отслойка нейроэпителия с остаточным количеством вителлиформного вещества со стороны диска зрительного нерва, «вытягивание» фоторецепторов, зоны их разрушения, кистозные изменения нейроэпителия, признаки атрофии ретинального пигментного эпителия); d — ОКТ в ангиорежиме, слой хориокапилляров (отсутствуют признаки наличия новообразованных сосудов)

Скачать (195KB)
Метаданные
9. Рис. 8. Семейный случай аутосомно-рецессивной бестрофинопатии (сын пациента, представленного на рис. 7). Вариант течения с формированием хориоретинального рубца в исходе заболевания: a — цветное фото сетчатки (в макуле округлый очаг с признаками атрофии и гиперплазии пигментного эпителия с желтыми включениями по краю очага); b — исследование аутофлюоресценции (гипераутофлюоресцирующие мелкие очаги по нижнему краю очага в виде «бус», в центре очага — участки гипоаутофлюоресценции, свидетельствующие о наличии атрофии ретинального пигментного эпителия и рубцовых изменений); c — ОКТ высокого разрешения (отслойка нейроэпителия с остаточным количеством вителлиформного вещества, «вытягивание» фоторецепторов, обширные зоны их разрушения, признаки атрофии ретинального пигментного эпителия, рубцовые изменения в центре очага); d — ОКТ в ангиорежиме, слой хориокапилляров (отсутствуют признаки наличия новообразованных сосудов)

Скачать (191KB)
Метаданные
10. Рис. 9. Случай острой экссудативной полиморфной вителлиформной макулопатии, мужчина, 40 лет: a, b — сетчатка обоих глаз при первом посещении (обширные множественные отслойки нейроэпителия на обоих глазах, заполненные вителлиформным веществом); c, d — сетчатка обоих глаз через 6 мес. (определяется изменение локализации вителлиформного вещества, формирование отчетливого псевдогипопиона); e, f — сетчатка обоих глаз через 21 мес. (полное прилегание отслоек нейроэпителия с частичным рассасыванием вителлиформного вещества); g, h — сетчатка обоих глаз через 6 лет от начала заболевания (полное прилегание отслоек нейроэпителия, остаточное количество вителлиформного вещества)

Скачать (197KB)
Метаданные

© Мацко Н.В., Гацу М.В., Григорьева Н.Н., 2020

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах