Динамика микробных сообществ российских ржаных заквасок спонтанного брожения
- Авторы: Локачук М.Н.1, Савкина О.А.1, Хлесткин В.К.2, Кузнецова Л.И.1, Парахина О.И.1
-
Учреждения:
- Научно-исследовательский институт хлебопекарной промышленности
- Федеральный исследовательский центр институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
- Выпуск: Том 23, № 3 (2025)
- Страницы: 249-261
- Раздел: Метагеномика экосистем
- URL: https://journals.rcsi.science/ecolgenet/article/view/361850
- DOI: https://doi.org/10.17816/ecogen678986
- EDN: https://elibrary.ru/EKUPBX
- ID: 361850
Цитировать
Аннотация
Обоснование. В настоящее время во всем мире уделяется большое внимание изучению микробиома хлебопекарных заквасок спонтанного брожения. Однако таксономическая структура микробиома российских заквасок спонтанной ферментации остается недостаточно изученной с применением метагеномных методов, несмотря на важную роль микробиома в обеспечении качества и безопасности хлеба.
Цель исследования. Изучение динамики микробных сообществ российских заквасок спонтанного брожения в процессе их длительного ведения.
Методы. Объектами исследования были восемь заквасок спонтанного брожения: четыре густые ржаные и четыре жидкие ржаные без заварки. Для приготовления заквасок были использованы четыре партии ржаной муки разных сортов («обойная» и «обдирная»). Состав микробных сообществ определяли с помощью высокопроизводительного секвенирования фрагментов гена 16S рРНК.
Результаты. Было показано, что в процессе последовательных освежений заквасок доля протеобактерий уменьшается, а доля Firmicutes увеличивается. Изменения в составе бактериальных сообществ совпали со снижением рН заквасок, а также значительным изменением запаха заквасок с неприятного гнилостного на выраженный заквасочный. В зрелых заквасках преобладали представители Firmicutes, преимущественно представленные молочнокислыми бактериями семейства Lactobacillaceae. Было обнаружено, что в процессе последовательных освежений заквасок водно-мучными питательными смесями происходят значительные изменения таксономической структуры микробиома заквасок на уровне семейства Lactobacillaceae. Так, относительная численность родов Latilactobacillus, Levilactobacillus, Lactiplantibacillus, Weissella, Pediococcus, Leuconostoc, Lactococcus, Enterococcus, характерных для молодых заквасок спонтанного брожения, снижается, при одновременном увеличении доли Fructilactobacillus и Companilactobacillus в густых заквасках, Limosilactobacillus и Fructilactobacillus в жидких заквасках без заварки. Лактобациллы Fructilactobacillus sanfranciscensis и Companilactobacillus sp. доминировали в зрелых густых ржаных заквасках, Limosilactobacillus pontis — в жидких ржаных заквасках без заварки на обдирной муке, а на обойной муке — L. pontis и F. sanfranciscensis.
Заключение. В результате проведенных исследований статистически значимых различий в альфа- и бета-разнообразии между заквасками, выведенными с использованием разных сортов и партий муки, выявлено не было. Показано, что параметры ведения российских заквасок (влажность, температура), которые отличаются от принятых за рубежом, оказывают решающее влияние на формирование микробиома заквасок спонтанного брожения на уровне видов лактобацилл.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Марина Николаевна Локачук
Научно-исследовательский институт хлебопекарной промышленности
Автор, ответственный за переписку.
Email: m.lokachuk@gosniihp.ru
ORCID iD: 0000-0001-5074-2457
SPIN-код: 7622-8404
Санкт-Петербургский филиал
Россия, 196608, Санкт-Петербург, г. Пушкин, ш. Подбельского, д. 7Олеся Александровна Савкина
Научно-исследовательский институт хлебопекарной промышленности
Email: 1103savkina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2372-4277
SPIN-код: 7310-0439
канд. техн. наук, Санкт-Петербургский филиал
Россия, 196608, Санкт-Петербург, г. Пушкин, ш. Подбельского, д. 7Вадим Камильевич Хлесткин
Федеральный исследовательский центр институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
Email: dir2645@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9605-8028
SPIN-код: 6367-2970
канд. хим. наук
Россия, 630090, Новосибирск, пр. Академика Лаврентьева, д. 10Лина Ивановна Кузнецова
Научно-исследовательский институт хлебопекарной промышленности
Email: l.kuznetcova@gosniihp.ru
ORCID iD: 0000-0002-1149-6043
SPIN-код: 9226-0790
д-р техн. наук, Санкт-Петербургский филиал
Россия, 196608, Санкт-Петербург, г. Пушкин, ш. Подбельского, д. 7Ольга Ивановна Парахина
Научно-исследовательский институт хлебопекарной промышленности
Email: o.parakhina@gosniihp.ru
ORCID iD: 0000-0002-0508-2813
SPIN-код: 1548-3089
канд. техн. наук, Санкт-Петербургский филиал
Россия, 196608, Санкт-Петербург, г. Пушкин, ш. Подбельского, д. 7Список литературы
- Gobbetti M, Minervini F, Pontonio E, et al. Drivers for the establishment and composition of the sourdough lactic acid bacteria biota. Int J Food Microbiol. 2016;239:3–18. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2016.05.022
- Montemurro M, Pontonio E, Gobbetti M, Rizzello CG. Investigation of the nutritional, functional and technological effects of the sourdough fermentation of sprouted flours. Int J Food Microbiol. 2019;302:47–58. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2018.08.005
- Lutter L, Jõudu I, Andreson H. Volatile organic compounds and their generation in sourdough. Agron Res. 2023;21(S2):504–536. doi: 10.15159/AR.23.017
- Easterbrook-Smith G. By bread alone: baking as leisure, performance, sustenance, during the COVID-19 crisis. Leisure Sci. 2022;43(1–2):164–170. doi: 10.1080/01490400.2020.1773980
- Reese AT, Madden AA, Joossens M, et al. Influences of ingredients and bakers on the bacteria and fungi in sourdough starters and bread. mSphere. 2020;5(1):e00950–19. doi: 10.1128/msphere.00950-19
- Corsetti A, Settanni L, López CC, et al. A taxonomic survey of lactic acid bacteria isolated from wheat (Triticum durum) kernels and non-conventional flours. Syst Appl Microbiol. 2007;30(7):561–571. doi: 10.1016/j.syapm.2007.07.001
- Calvert MD, Madden AA, Nichols LM, et al. A review of sourdough starters: Ecology, practices, and sensory quality with applications for baking and recommendations for future research. PeerJ. 2021;9:11389. doi: 10.7717/peerj.11389
- Martín-Garcia A, Riu-Aumatell M, López-Tamames E. Influence of process parameters on sourdough microbiota, physical properties and sensory profile. Food Rev Int. 2023;39(1):334–348. doi: 10.1080/87559129.2021.1906698
- Mayrink Lima TT, de Oliveira Hosken B, De Dea Lindner J, et al. How to deliver sourdough with appropriate characteristics for the bakery industry? The answer may be provided by microbiota. Food Biosci. 2023;56:103072. doi: 10.1016/j.fbio.2023.103072
- De Vuyst L, González-Alonso V, Wardhana YR, Pradal I. Taxonomy and species diversity of sourdough lactic acid bacteria. In: Gobbetti M, Gänzle M, editors. Handbook on sourdough biotechnology. Springer, Cham: Springer International Publishing; 2023. P. 97–160. doi: 10.1007/978-3-031-23084-4_6
- De Vuyst L, Comasio A, Kerrebroeck SV. Sourdough production: fermentation strategies, microbial ecology, and use of non-flour ingredients. Crit Rev Food Sci Nutr. 2023;63(15):2447–2479. doi: 10.1080/10408398.2021.1976100
- De Vuyst L, Van Kerrebroeck S, Leroy F. Microbial ecology and process technology of sourdough fermentation. Adv Appl Microbiol. 2017;100:49–160. doi: 10.1016/bs.aambs.2017.02.003
- Van Kerrebroeck S, Bastos FCC, Harth H, De Vuyst L. A low pH does not determine the community dynamics of spontaneously developed backslopped liquid wheat sourdoughs but does influence their metabolite kinetics. Int J Food Microbiol. 2016;239:54–64. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2016.07.019
- Arora K, Ameur H, Polo A, et al. Thirty years of knowledge on sourdough fermentation: A systematic review. Trends Food Sci Technol. 2021;108:71–83. doi: 10.1016/j.tifs.2020.12.008
- Landis EA, Oliverio AM, McKenney EA, et al. The diversity and function of sourdough starter microbiomes. Elife. 2021;10:e61644. doi: 10.7554/eLife.61644
- Costa LF, Kothe CI, Grassotti TT, et al. Evolution of the spontaneous sourdoughs microbiota prepared with organic or conventional whole wheat flours from South Brazil. An Acad Bras Ciênc. 2022;94(S4): 0001–3765202220220091. doi: 10.1590/0001-3765202220220091
- Ercolini D, Pontonio E, De Filippis F, et al. Microbial ecology dynamics during rye and wheat sourdough preparation. Appl Environ Microbiol. 2013;79(24):7827–7836. doi: 10.1128/AEM.02955-13
- Minervini F, De Angelis M, Di Cagno R, Gobbetti M. Ecological parameters influencing microbial diversity and stability of traditional sourdough. Int J Food Microbiol. 2014;171:136–146. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2013.11.021
- Harth H, Van Kerrebroeck S, De Vuyst L. Community dynamics and metabolite target analysis of spontaneous, backslopped barley sourdough fermentations under laboratory and bakery conditions. Int J Food Microbiol. 2016;228:22–32. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2016.04.011
- Oshiro M, Zendo T, Nakayama J. Diversity and dynamics of sourdough lactic acid bacteriota created by a slow food fermentation system. J Biosci Bioeng. 2021;131(4):333–340. doi: 10.1016/j.jbiosc.2020.11.007
- Alvarez-Sieiro P, Montalbán-López M, Mu D, Kuipers OP. Bacteriocins of lactic acid bacteria: extending the family. Appl Microbiol Biotechnol. 2016;100:2939–2951. doi: 10.1007/s00253-016-7343-9
- Sadiq FA, Yan B, Tian F, et al. Lactic acid bacteria as antifungal and anti-mycotoxigenic agents: a comprehensive review. Compr Rev Food Sci Food Saf. 2019;18(5):1403–1436. doi: 10.1111/1541-4337.12481
- Darbandi A, Asadi A, Mahdizade Ari M, et al. Bacteriocins: properties and potential use as antimicrobials. J Clin Lab Anal. 2022;36(1):e24093. doi: 10.1002/jcla.24093
- Gänzle MG, Zheng J. Lifestyles of sourdough lactobacilli — Do they matter for microbial ecology and bread quality? Int J Food Microbiol. 2019;302:15–23. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2018.08.019
- Kosovan AP, editor. Collection of modern bakery technologies. Moscow: Moscow Printing House No. 2; 2008. (In Russ.)
- Bessmeltseva M, Viiard E, Simm J, et al. Evolution of bacterial consortia in spontaneously started rye sourdoughs during two months of daily propagation. PLoS One. 2014;9(4):0095449. doi: 10.1371/journal.pone.0095449
- McKenney EA, Nichols LM, Alvarado S, et al. Sourdough starters exhibit similar succession patterns but develop flour-specific climax communities. PeerJ. 2023;11:e16163. doi: 10.7717/peerj.16163
- Boreczek J, Litwinek D, Żylińska-Urban J, et al. Bacterial community dynamics in spontaneous sourdoughs made from wheat, spelt, and rye wholemeal flour. MicrobiologyOpen. 2020;9:e1009. doi: 10.1002/mbo3.1009
- Afanasyeva OV. Microbiological control of bakery production. Moscow; 1976. (In Russ.)
- Khlestkin VK, Lokachuk MN, Savkina OA, et al. Taxonomic structure of bacterial communities in sourdoughs of spontaneous fermentation. Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2022;26(4):385–393. doi: 10.18699/VJGB-22-47 EDN: CYDECO
- Lokachuk MN, Frolova JM. Study of the microbiota species composition and biotechnological properties of spontaneous sourdough during propagation. In: Proceedings of the International scientific and practical conference of young scientists and specialists “Current issues and modern solutions in food systems”; 2022 Sept 20–22; Moscow. EDN: LPJONE
- Kuznetsova LI, Parakhina OA, Savkina OA, Burykina MS. Starting compositions of microorganisms for sourdoughs. Bakery and confectionery forum. 2021;49:54–57. (In Russ.)
- Afanasyeva OV. Microbiology of bakery production. Saint Petersburg; 2003. (In Russ.)
- Picozzi C, Gallina S, Fera TD, Foschino R. Comparison of cultural media for the enumeration of sourdough lactic acid bacteria. Ann Microbiol. 2005;55(4):317–320.
- Gobbetti M, Rizzello CG, editors. Basic methods and protocols on sourdough. New York: Humana Press; 2024. 176 p. doi: 10.1007/978-1-0716-3706-7
- Bates ST, Berg-Lyons D, Caporaso JG, et al. Examining the global distribution of dominant archaeal populations in soil. ISME J. 2010;5(5):908–917. doi: 10.1038/ismej.2010.171
- Bolger AM, Lohse M, Usadel B. Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data. Bioinformatics. 2014;30(15):2114–2120. doi: 10.1093/bioinformatics/btu170
- McMurdie PJ, Holmes S. phyloseq: An R package for reproducible interactive analysis and graphics of microbiome census data. PLoS ONE. 2013;8(4):e61217. doi: 10.1371/journal.pone.0061217
- Wright ES. Using DECIPHER v2.0 to analyze big biological sequence data in R. The R Journal. 2016;8(1):352–359. doi: 10.32614/RJ-2016-025
- Caporaso JG, Kuczynski J, Stombaugh J, et al. QIIME allows analysis of highthroughput community sequencing data. Nat Methods. 2010;7(5): 335–336. doi: 10.1038/nmeth.f.303
- Menezes LAA, Salvo Sardaro ML, Duarte RTD, et al. Sourdough bacterial dynamics revealed by metagenomic analysis in Brazil. Food Microbiol. 2020;85:103302. doi: 10.1016/j.fm.2019.103302
- von Gastrow L, Michel E, Legrand J, et al. Microbial community dispersal from wheat grains to sourdoughs: A contribution of participatory research. Mol Ecol. 2023;32(10):2413–2427. doi: 10.1111/mec.16630
- Bilska A, Wochna K, Habiera M, Serwańska-Leja K. Health hazard associated with the presence of clostridium bacteria in food products. Foods. 2024;13(16):2578. doi: 10.3390/foods13162578
- Liu X, Zhou M, Jiaxin C, et al. Bacterial diversity in traditional sourdough from different regions in China. LWT. 2018;96(2):251–259. doi: 10.1016/j.lwt.2018.05.023
- Oleinikova Y, Amangeldi A, Zhaksylyk A, et al. Sourdough microbiota for improving bread preservation and safety: Main directions and new strategies. Foods. 2025;14(14):2443. doi: 10.3390/foods14142443
- Ceresino EB, Juodeikiene G, Schwenninger SM, da Rocha JMF, editors. Sourdough microbiota and starter cultures for industry. Switzerland: Springer International Publishing AG; 2024. 495 p. doi: 10.1007/978-3-031-48604-3
- Van Kerrebroeck S, Maes D, De Vuyst L. Sourdoughs as a function of their species diversity and process conditions, a meta-analysis. Trends Food Sci Technol. 2017;68:152–159. doi: 10.1016/j.tifs.2017.08.016
Дополнительные файлы





