Tissue specific peculiarities of vibration-induced hypoxia of the rabbit heart, liver and kidney

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

The purpose of the paper was experimental study of activity of energy production of the heart, liver and kidney after harmful action of general vibration with 8 and 44 Hz frequency. The functional state of native mitochondria in tissue homogenates was studied by polarographic method by means of closed oxygen device of halvanic type in thermostated cuvette of 1 ml volume in the salt medium of incubation. Metabolic states of mitochondria of the rabbit heart, liver and kidney were modeled in vitro in oxidation of endogenous substrates (before and after administration of inhibitors of different stages of breath chain) varying exogenous substrates (before and after administration of 2.4-DNP into the cell). In order to synchronize the changes in short time, the incomplete cycle of metabolic states “endogenous breath → rest → activity” was used. The velocity of mitochondrial oxidation of endogenous substrates was determined by tissue type, and was 16.3 ± 4.3, 5.2 ± 0.6 and 8.13 ± 1.4 ng-atom О min-1mg-1 protein for the heart, liver and kidney of intact animals respectively. In the heart, after high frequent vibration, the reduction of oxidation velocity of NAD-dependent substrates in rest and in active metabolic state of mitochondria was 43 % (р ≤ 0.05) and 30 % (р ≤ 0.01) respectively, while the velocity of oxidation for endogenous succinic acid increased by 77 % (р ≤ 0.05) to 21st session of vibration, then constantly decreasing to the end of vibration sessions. The same changes but in less degree were registerted in the liver and kidney. The systems of energy production of the heart and the studied parenchimatic organs were involved in reaction on vibration exposure and reacted typically by low energetic shift with hyperactivation of endogenous succinic acid system of oxidation and inhibition of NAD-depended part of the breath chain of mitochondria. Therefore, the study of bioenergetics mechanisms of hypoxia in different tissues allows to clear the molecular targets for pharmacological action by means of substrate antihypoxants.

About the authors

Viktoriya V Vorobieva

North-western State Medical University named after I.I. Mechnikov

Email: v.v.vorobeva@mail.ru
Doctor of Med. Sci. (Pharmacology), head of department of pharmacology

Petr D Shabanov

S.M. Kirov Military Medical Academy

Email: pdshabanov@mail.ru
Professor, Head, Dept. of Pharmacology

References

  1. Akopova OV, Nosar VI, Mankovskaya IN, Sagach VF. Calcium uptake in rat liver mitochondria accompanied with the activation of ATR-dependent potassium channel. Biochem. 2008;73(10):1429-1437.
  2. Ando H, Noguchi R, Ishitake T. Frequency dependence of hand-arm vibration on palmar sweating response. Scand. J. Work Environ. Health. 2002;28(5):324-327.
  3. Babsky AN, Doliba NM, Doliba NM, et al. Malonate sensitivity of mitochondria respiration under hypoxia and recovery as a test of endogenous Succinate oxidation. Hypoxia Med J. 1998;6:28.
  4. Bakeeva LE, Chentsov YS, Skulachev VP. Intermitochondrial contacts in myocardiocytes. J Mol Cell Cardiol. 1983;15:413-420. doi: 10.1016/0022-2828(83)90261-4.
  5. Ben-Dov C, Hartmann B, Lungren J, Valcarcel J. Genome-wide analysis of alternative pre-mRNA splicing. J Biol Chem. 2008;283(5):1229-1233. doi: 10.1074/jbc.R700033200.
  6. Bernardi P, Scorrano L, Colonna R, et al. Mitochondria and cell death. Mechanistic aspects and methodological issues. Eur J Biochem. 1999;264(6):687-701. doi: 10.1046/j.1432-1327.1999.00725.x.
  7. Биохимия. Молекулярные основы клеточной структуры и функции. Альберт Л. Ленинджер. - Нью-Йорк, 1972. - 957 c. [Leninger AL. Biochemistry. The molecular basis of cell structure and function. New York; 1972. 957 p. (In Russ).]
  8. Биологические мембраны / Под ред. Д.С. Парсонса. - М.: Атомиздат, 1978. - 230 c. [Biological membranes. Ed. by D.S. Parsons. Oxford: Clarendon Press; 1975. 230 p. (In Russ).]
  9. Бодиенкова Г.М., Куршевенко С. И. Нейроиммуногуморальные взаимодействия при воздействии локальной вибрации на работающих // Медицина труда и пром. экология. - 2015. - № 4. - С. 39-43. [Bodienkova GM, Kurchevenko SI. Neuroimmune and humoral interactions under exposure to local vibration in workers. Meditsina truda i promyshlennaya ekologiya. 2015;4:39-43. (In Russ).]
  10. Bovenzi M. Autonomic stimulation and cardiovascular reflex activity in the hand-arm vibration syndrome. Kurume Med J. 1990;37:85-94. doi: 10.2739/kurumemedj.37.SUPPLEMENT_S85.
  11. Brustovetsky NN, Maevsky EI, Kolaeva SG, et al. Role of the Ca cycle in uncoupling of oxidative phosphorilation in liver mitochondria of cold-acclimated rats. Biochem. Physiol. 1985;82(3):545-547.
  12. Brustovetsky NN, Maevsky EI. Regulation of the degree of coupling of oxidation with phosphorylation in rat liver mitochondria: relation to thermogenesis. IV Europ. Bioenerg Conf Short Reports. 1986;4:381.
  13. Buravkova LB, Andreeva ER, Rylova YV. Recept reseanches in modern medicine. Cambrige; 2011. Р. 43-48.
  14. Campbell KB. Myocardial contractile depression from high - freguency vibration is not due to increased cross - bridge breakage. Amer J Physiol. 1998;274:1141-1151.
  15. Carafoli E. The calcium rumping ATFase of plasma membrane. Ann Rev Physiol. 1991;53(4):531-547. doi: 10.1146/annurev.ph.53.030191.002531.
  16. Chance B, Williams G. Respiratory enzymes in oxidative phosphorylation. J Biol Chem. 1955; 217(1):324-327.
  17. Chance B, Hollunger G. The interaction of enerdgy and electron transfer reactions in mitochondria. J Biol Chem. 1961;236(5):1534-1584.
  18. Chidsey СА. Biochemical studies of energy production in the failing human heart. J Clin Invest. 1966;45:40-50. doi: 10.1172/JCI105322.
  19. Cline GW, Vidal-Puig AJ, Dufour S, Cadman KS, et al. In vivo effects of uncoupling protein-3 gene disruption on mitochondrial energy metabolism. J Biol Chem. 2001; 276(7):20240-20244. doi: 10.1074/jbc.M102540200.
  20. Cohen В, Gold D. Mitochondrial cytopathy in adults: What we know so far. Cleveland Clinic J Medicine. 2001;68(7):625-642. doi: 10.3949/ccjm.68.7.625.
  21. Correa PR, Kruglov EA, Thompon M. Succinate is a paracrine signal for liver damage. J Нepatology. 2007;47(2):262-269. doi: 10.1016/j.jhep.2007.03.016.
  22. Crompton M. Mitochondrial intermembrane functional complexes and their role in cell death. J Physiol. 2000;11:11-21. doi: 10.1111/j.1469-7793.2000.00011.x.
  23. Di Lisa F, Bernardi P. Mitochondrial function as a determinant of recovery or death in cell response to injury. Mol Cell Biochem. 1998;184(6):379-391. doi: 10.1023/A:1006810523586.
  24. Di Lisa F, Menabo R, Canton M, Petronilli V. The role of mitochondria in the salvage and the injury of the ischemic myocardium. Biochim Biophys Acta. 1998;1366(8):69-78. doi: 10.1016/S0005-2728(98)00121-2.
  25. Dodds PS, Rothman DH, Weitz JS. Re-examination of the "3/4-law" of metabolism. J Theor Biol. 2001;209:9-27. doi: 10.1006/jtbi.2000.2238.
  26. Drace-Holland A J. Infarct size in rabbits: a modified method illustrated by the effects of propranolol and trimetazidine. Basic Res Cardiol. 1993;88(3):250-258.
  27. Driver C, Georgiou A. How to re-energize old mitochondria without shooting yourself in the foot. Biogerontology. 2002; 3:103-106. doi: 10.1023/A:1015280018400.
  28. Estabrook RW. Mitochondrial respiratory control and the polarographic measurements of ADP: 0 ratios. In: Methods in enzymology. Ed. By RW Estabrook and ME Pellman. Acad Press. 1967;10:41-47.
  29. Farkkila А, Pyykko J, Heinonen E. Vibration stress the autonomic nervous system. Kurume Med J. 1990;37:53-60. doi: 10.2739/kurumemedj.37.SUPPLEMENT_S53.
  30. Fedotcheva NI, Sokolov AP, Kondrashova MN. Nonenzymatic formation of succinate in mitochondria under oxidative stress. Free Radic Biol Med. 2006; l(6):56-64.
  31. Foell JD, Balijepalli RC, Delisle BP, et al. Molecular heterogeneity of calcium channel beta-Subunits in canine and human heart: evidence fordifferential subcellular localization. Physiol Genomics. 2004;17:183-200. doi: 10.1152/physiolgenomics.00207.2003.
  32. Goa J. A micro biuret method for protein determination. Determination of total protein in cerebrospinal fluid. Scand J Clin Lab Invest. 1953;5:218-222.
  33. Горенков Р.И., Любченко П.Н., Казанчан П.О., и др. Ультразвуковое сканирование сонных артерий у больных вибрационной болезнью // Кардиология. - 1999. - № 5. - С. 57-61. [Gorenkov RV, Lyubchenko PN, Kazanchyan PO, et al. Ultrasound scanning of carotid arteries in patients with vibration disease. Kardiologiya. 1999;5:57-61. (In Russ).]
  34. Gerdes AM, Capasso JM. Structural remodeling and myocardial dysfunction of cardiac myocytes in heart failure. J Cell Cardiol. 1995;27:849-856. doi: 10.1016/0022-2828(95)90000-4.
  35. Greenstein D, Kester RC. The role leukocytes in the pathogenesis of vibration - induced white figner. Angiology. 1998;49(11):915-922. doi: 10.1177/000331979804901107.
  36. Griffin MJ, Bovenzi М. Dose-responte patterns for vibration-induced white figner. Occup Environ Med. 2003;60(1):16-26. doi: 10.1136/oem.60.1.16
  37. Grishina EV, Maevsky EI, Brustovetsky NN, Okon MS. Energy efficiency of anaerobic substrate transformation in mitochondria in rats. Hypoxia Medical J. 1996;2:30.
  38. Halestrap AP, Doran E, Gillespie JP, O'Toole A. Mitochondria and cell death. Biochemical Society Transactions. 2000;28(2):170-177. doi: 10.1042/bst0280170.
  39. Hansford R, Naotaka Т, Pepe S. Mitochondria in heart ischemia and aging. Biochem Soc Symp. 1999;66(l): 141-147.
  40. Harada N. Cold-stress tests involving finger skin temperature measurement for evaluation of vascular disorders in hand-arm vibration syndrome: review of the literature. Int Arch Occup Environ Health. 2002; 75(1-2): 14-19.
  41. He W, Miao FJ, Lin DC, et al. Citric acid cycle intermediates as ligands for orphan G- protein-coupled receptors. Nature. 2004;429:188-193. doi: 10.1038/nature02488.
  42. Inaba R, Okada A. Protection against the lethal effects of whole body vibration by the alpha-adrenergic system in rat. Jpn J Exp Med. 1988;58(5):207-211.
  43. Ishitake T. Hemodynamic changes in skin microcirculation induced by vibration stress in the conscious. Kurume Med J. 1990;37:235-245. doi: 10.2739/kurumemedj.37.235.
  44. Измеров Н.Ф. Роль профпатологии в системе медицины труда // Медицина труда и пром. Экология. - 2008. - № 11. - С. 1-11. [Izmerov NF. Role of professional pathology in the system of medicine of labor. Meditsina truda i promyshlennaya ecologiya. 2008;11:1-11. (In Russ).]
  45. Issever H, Aksoy C, Sabuncu H, Karan A. Vibration and its effects on the body. Med Princ Pract. 2003;12(1):34-38. doi: 10.1159/000068155.
  46. Janssen РМ. The effect of applied mechanical vibration on two different phases of rat papillary muscle ralaxation. Pflugers Arch. 1997;434(6):795-800. doi: 10.1007/s004240050467.
  47. Kakosy T. Vibration disease. Baillieres Clin Rheumatol. 1989(4):25-50.
  48. Kang TM, Hilgemann DW. Multiple transport modes of the cardiac Na+/Ca2+ exchanger. Nature. 2004;427:544-548. doi: 10.1038/nature02271.
  49. Карецкая Т.Д., Пфаф М.А., Чернов О.Е. Профессиональные заболевания на железнодорожном транспорте // Мед. труда и пром. экология. 2015. - №1. - С. 1-5. [Karetskaya TD, Pfaf VF, Chernov OT. Occupational diseases on railway transport. Meditsina truda i promyshlennaya ecologiya. 2015;1:1-5. (In Russ).]
  50. Kohout J, Huzi F, Bejckova H, Soukupova K. Treatment of vascular disease caused by vibration. Cent Eur J Public Health. 1995;3:137-138.
  51. Kondrashova M, Gogvadze V, Babsky A, Medvedev B. Succinic acid oxidation as the only energy support of intensive Ca2+ uptake by mitochondria. Biochem Biophys Res Commun. 1982;109(2):376-381. doi: 10.1016/0006-291X(82)91731-4.
  52. Kondrashova M, Grigorenko E. Natural mitochondria well conserve their state j in organism. Third Eur Bioenerg Conf Reports. Hannover: Congr. Ed.; 1984;3B:711-712.
  53. Kondrashova MN, Kuznetzova GD. Succinic acid as a physiological signal molecule. Manchester; New York: Manchester Univ. Press; 1991. 295 p.
  54. Koves TR, Noland RC, Bates AL, et al. Subsarcolemmal and intermyofibrillar mitochondria play distinct roles in regulating skeletal muscle fatty acid metabolism. Amer Physiol Cell Physiol. 2005;288(l):1074-1082.
  55. Lemasters JJ, Qian Т, Bradham СА, et al. Mitochondrial dysfunction in the pathogenesis of necrotic and apoptotic cell death. J Bioenerg Biomembr. 1999;8:305-319. doi: 10.1023/A:1005419617371.
  56. Lessler MA. Adaptation of Polarographic Oxygen Sensors for Biochemical Assays. Meth Biochem Anal. 1980;28:175-199. doi: 10.1002/9780470110485.ch4.
  57. Levy D, Garrison RJ. Prognostic implications of echocardiographically determined left ventricular mass in the Framingham Heart Study. N Engl J Med. 1990;32:1561-1566. doi: 10.1056/NEJM199005313222203.
  58. Lindblad LE, Ekenvall L. Alpha 2-adrenоceptor inhibition in patients with vibration whitefinger. Kurume Med J. 1990;37:95-99. doi: 10.2739/kurumemedj.37.SUPPLEMENT_S95.
  59. Lukyanova LD, Hargens A, Takeda N, Singal PK. Novel approaches to the understanding of molecular mechanisms of adaptation. Adaptation Biology and Medicine. Narosa Publishing House New Dehli, India; 2004;4:11-12.
  60. Lukyanova LD, Dubchenko AM, Tsybina TA, et al. Mitochondria signaling in adaptation to hypoxia. New Dehli, India: Narosa Publ. House; 2008;5:245-260.
  61. Lojda Z, Gossrau R, Schiebler T. Enzyme Histochemistry: A Laboratory Manual. Heidelberg: Springer-Verlag; 1979. 270 p.
  62. MacDonald MJ, Fahien LA, Brown LJ, et al. Perspective: emerging evidence for signaling roles of mitochondrial anaplerotic products in insulin secretion. Amer J Physiol Endocrinol Metab. 2005;288:1-15. doi: 10.1152/ajpendo.00218.2004.
  63. Maevsky EI, Grishina EV, Rosenfeld FS, et al. Substrate exchange in hypoxic animal cells. Abstract Workshop on intercellular communicion. Pushchino; 1994:65.
  64. Maevsky EI, Grishina EV. Preservation of animal mitochondria under hypoxia by means of anaerjbic redox substrate transformations. Hypoxia Medical J. 1996;2:43-44.
  65. Masao Kakoki. Amino acids as modulators of endothelium-derivet nitric oxide. Amer G Physiol Renal. 2006;291:297-304. doi: 10.1152/ajprenal.00417.2005.
  66. Matoba T. Pathophysiology and clinical pucture of hand-arm vibration syndrome in Japanes workers. Nagoya J Med Sci. 1994;57:19-26.
  67. Matoba T, Chiba М. Effects of diltiazem on occupational Raynaud's syndrome (vibration disease). Angiology. 1985; 36(12):850-856. doi: 10.1177/000331978503601203.
  68. Matoba T, Ishitake Т. Cardiovascular reflexes durind vibration stress. Kurume Med J. 1990;37:61-71. doi: 10.2739/kurumemedj.37.SUPPLEMENT_S61.
  69. Matsumoto Y, Griffin MJ. Vibration injury damages arterial endothelial cells. Muscle Nerve. 2002;25(4):527-534. doi: 10.1002/mus.10058.
  70. Matsumoto Y, Maeda S, Oji Y. Influence of frequency thresholds for magnitude of vertical sinusoidal whole-body vibration. Ind Health. 2002;40(4):313-319. doi: 10.2486/indhealth.40.313.
  71. Nattel S, Li D. Ionic remodeling in the heart: pathophysiological significance and new therapeutic opportunities for atrial fibrillation. Circ Res. 2000;87(6):440-447.
  72. Никольс Д. Биоэнергетика. Введение в хемиосмотическую теорию. - М.: Мир, 1985. - 190 с. [Nikols D. Bioenergetics. Introduction into chemiosmotic theory. Moscow: Mir; 1985. 190 р. (In Russ).]
  73. Olsen N. Hyperreactivity of the central sympathetic nervous system in vibratio - induced white finger. Kurume Med J. 1990;37:109-116. doi: 10.2739/kurumemedj.37.SUPPLEMENT_S109.
  74. Парфенова Е.В., Ткачук В.А. Терапевтический ангиогенез: достижения, проблемы, перспективы // Кардиологический вестник. - 2007. - Т. 2. - № 2. - С. 5-15. [Parfenova EV, Tkachuk VA. Therapeutic angiogenesis: advances, problems, perspectives. Kardiologicheskii vestnik. 2007;2(2):5-15. (In Russ).]
  75. Pepe S. Mitochondrial function in ischemia and reperfusion of the ageing heart. Clin Exp Pharmacol Physiol. 2000; 27(9):745-750. doi: 10.1046/j.1440-1681.2000.03326.x.
  76. Peproelska B, Szeszeia-Dabrowska N. Occupational diseases in Poland, 2001. Int J Occup Med Environ Healht. 2002;15(4):337-34.
  77. Perremans S. Influence of vertical vibration on heart rate of pigs. J Anim Su. 1998;76(2):416-420.
  78. Petersen KF, Befroy D, Dufour S, et al. Mitochondrion dysfunction in the elderly: possible role in insulin resistence. Science. 2003;300(9):1140-1142. doi: 10.1126/science.1082889.
  79. Pfeffer MA, Braunwald Е. Ventricular remodeling after myocardial infarction: experimental observations and clinical implications. Circulation. 1990;81:1161-1172. doi: 10.1161/01.CIR.81.4.1161.
  80. Потеряева Е.Л., Амирнова Е.Л., Никифорова Н.Г. Прогнозирование формирования и течения вибрационной болезни на основе изучения генно-метаболических факторов // Медицина труда и пром. экология. - 2015. - № 6. - С. 19-23. [Poteryaeva EL, Amirnova EL, Nikiforova NG. Forecasting the formation and course of vibration disease on basis of genetic metabolic markers study. Meditsina truda i promyshlennaya ecologiya. 2015;6:19-23. (In Russ).]
  81. Sastre J, Pallardo F, De la Asunction, Vina J. Mitochondria, oxidative stress and aging. Free Radical Res. 2000;32(3):189-198. doi: 10.1080/10715760000300201.
  82. Saxton JM. A neview of current literature on physiological tests and soft tissue biomarkers applicable to work-related uppen limd disonders. Occup Med (Lond.). 2000;50(2):121-130.
  83. Schmidt R. Hepаtic organ protection : from basic science to clinical practice. World J Gastroenterol. 2010;16(48):6044-6045. doi: 10.3748/wjg.v16.i48.6044.
  84. Semenza GL. Expression of hypoxia-inducible factor 1: mechanisms and consequences. Biochem Pharmacol. 2000;59:47-53. doi: 10.1016/S0006-2952(99)00292-0.
  85. Shishido T A, Sugimachi M, Kawaguchi O. А new method to measure regional myocardial time - varying elastance using minute vibration. Amer J Physiol. 1998;274;1404-1415.
  86. Шпагина Л.А., Лосева М.И., Сухаревская Т.М. Морфофункциональные изменения эритроцитов при вибрационной болезни // Гигиена труда и проф. заболевания. - 1990. - № 4. - С. 30-32. [Shpagina LA, Loseva MI, Sukharevskaya TM. Morphofunctional changes of erythrocytes in vibration disease. Meditsina truda i promyshlennaya ecologiya. 1990;4:30-32. (In Russ).]
  87. Smirnova EL, Nikiforova NG. Connective tissue metabolic features in patients with pneumatic hammer disease in the post-contact period. Health Care of the Russian Federation. 2011;5:6-7.
  88. Stroka DM, Burkhardt T, Desballerts I. HIF-1 is expressed in normoxia tissue and displays an organ - specific regulation under systemic hypoxia. FASEB J. 2001;15:2445-2453.
  89. Surgue M, Tatton W. Mitochondrial membrane potential in ageing cells. Biol Signals Recept. 2001;10(3-4):176-188.
  90. Szabo I, Zoratti М. The mitochondrial megachannel is the permeability transition pore. J Bioenerg Biomemb. 1992;24:111-117. doi: 10.1007/BF00769537.
  91. Tjandrawinata RR, Vincent VL, Hughes-Fulford M. Vibration force alters mRNA expression in osteoblasts. FASEB J. 1997;11(5):493-497.
  92. Vanden HTL, Shao Z, Li C, Shumacker PT, Becker LB. Mitochondrial electron transport can become a significant source of oxidative injury in cardiomyocytes. J Mol Cell Cardiology. 1997;29(9):2441-2450. doi: 10.1006/jmcc.1997.0481.
  93. Virokannas H. Cardiovascular reflexes in workers exposed to hand-arm vibration. Kurume Med J. 1990;37:100-107. doi: 10.2739/kurumemedj.37.SUPPLEMENT_S101.
  94. Воробьева В.В., Шабанов П.Д. Вибрационная модель гипоксического типа клеточного метаболизма, оцененная на кардиомиоцитах кролика // Бюл. эксперим. биол. и мед. - 2009. - Т. 147. - № 6. - С. 712-715. [Vorobieva VV, Shabanov PD. Vibration model for hypoxic type of cell metabolism evaluated on rabbit cardiomyocytes. Byulleten eksperimental'noi biologii i meditsiny. 2009;147(6):712-715. (In Russ).]
  95. Воробьева В.В., Шабанов П.Д. Экзогенная янтарная кислота уменьшает вибрационно-опосредованные нарушения энергетического обмена в кардиомиоцитах кролика // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. - 2009. - Т. 95. - № 8. - С. 857-864. [Vorobieva VV, Shabanov PD. Exogenous cuccinate reduces vibration-induced disorders of energy metabolism in rabbit cardiomyocytes. Rossiiskii fiziologicheskii zhurnal imeni I.M. Sechenova. 2009;95(8):857-864. (In Russ).]
  96. Воробьева В.В., Шабанов П.Д. Биоэнергетические феномены при стрессирующем воздействии локальной вибрации и защитном действии янтарной кислоты // Мед.-биол. и соц.-психол. пробл. безопасности в чрезвыч. ситуациях. - 2010. - № 4. - Ч. 1. - С. 87-92. [Vorobieva VV, Shabanov PD. The bioenergetic phenomena in stress exposure to local vibration and defensive action of succinate. Mediko-biologicheskie i sotsialno-psychologicheskiye problemy bezopasnosti v chrezvychainykh situatsiyakh. 2010;4/1:87-92. (In Russ).]
  97. Воробьева В.В., Шабанов П.Д. Фармакология вибрационно-опосредованных нарушений энергетического обмена в миокарде // Обз. по клин. фармакол. и лек. терапии. - 2011. - Т. 9. - № 1. - С. 3-44. [Vorobieva VV, Shabanov PD. Pharmacology of vibration-mediated disorders of energy metabolism in myocardium. Obzory po klinicheskoi farmakologii i lekarstvennoi terapii. 2011;9(1):3-43. (In Russ).]
  98. Воробьева В.В., Хоробрых В.Г., Шабанов П.Д. Влияние общей вибрации на функции дыхательной цепи паренхиматозных органов кроликов в эксперименте // Обз. по клин. фармакол. и лекарств. терапии. - 2012. - Т. 10. - № 4. - С. 16-29. [Vorobieva VV, Khorobrykh VG, Shabanov PD. Effect of general vibration on functions of breath chain in rabbit parenchimatic organs. Obzory po klinicheskoi farmakologii i lekarstvennoi terapii. 2012; 10(4):16-29. (In Russ).]
  99. Ward D. Restoring mitochondrial function and bio-energetics. Vit Res News. 2005;19(5):2-6.
  100. Weihai F, Frederick J-P, Miro S. Citric acid cycle intermediates as ligand for orfan G-protein coupled receptors. Nature. 2004; 429:188-193. doi: 10.1038/nature02488
  101. Winder WW. Energy-sensing and signaling by AMP-activated protein kinase in skeletal muscle. J Appl Physiol. 2001; 91:1017-1028.
  102. Wittenberger T, Schaller HC, Hellebrant S. An expressed sequence tag (EST) data mining strategy succeeding in the discovery of new G-protein coupled receptors. J Mol Biol. 2001;307:799-813. doi: 10.1006/jmbi.2001.4520.
  103. Wittenberger T. GPR99, a new G-protein coupled receptor with homology to a new subgroup of nucleotide receptors. BMC Genomics. 2002;3:17-22. doi: 10.1186/1471-2164-3-17.

Copyright (c) 2016 Vorobieva V.V., Shabanov P.D.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 


Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».