Получение первичных клеточных линий глиальных опухолей
- Авторы: Шамова Т.В.1, Ситковская А.О.1, Росторгуев Э.Е.2, Кузнецова Н.С.1, Кавицкий С.Э.1
-
Учреждения:
- Национальный медицинский исследовательский центр онкологии
- Национальный медицинский исследовательский центр онкологии,
- Выпуск: Том 37, № 5 (2020)
- Страницы: 79-89
- Раздел: Методы диагностики и технологии
- URL: https://journals.rcsi.science/PMJ/article/view/57674
- DOI: https://doi.org/10.17816/pmj37579-89
- ID: 57674
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Цель. Осуществлено исследование, ориентированное на получение первичных клеточных линий злокачественных опухолей головного мозга с использованием метода эксплантатов. Для исследования отобраны 13 мужчин и женщин в возрасте от 22 до 66 лет.
Материалы и методы. Опухолевый материал больных фрагментировали и помещали в культуральную посуду (флаконы) с полной питательной средой для клеток глиальных опухолей. В течение всего периода культивирования проводили фотофиксацию материала, определение морфологии клеток, а также оценку скорости образования монослоя на нулевом и первом пассажах.
Результаты. В результате было получено тринадцать первичных клеточных линий глиальных опухолей человека: шесть линий глиобластомы, две линии глиобластомы на фоне анапластической астроцитомы, одна линия анапластической олигодендроглиомы, одна линия диффузной астроцитомы, одна линия олигоастроцитомы, одна линия диффузной протоплазматической астроцитомы, одна линия анапластической астроцитомы. В культуре диффузной астроцитомы наблюдали клетки, образующие сеть на дне флакона. В культуре анапластической астроцитомы при конфлюентности 30–50 % были представлены фибробластоподобные клетки, а при конфлюентности 100 % происходило образование монослоя с интимно прилегающими клетками. В культуре олигоастроцитомы наблюдали как фибробластоподобные клетки, так и островки тесно переплетенных веретеновидных клеток. Подобное было характерно и для клеток диффузной протоплазматической астроцитомы. Анапластическая олигодендроглиома в течение первой недели культивирования была представлена преимущественно округлыми клетками с контрастным веществом, которые впоследствии прикреплялись и активно пролиферировали. При конфлюентности 30–80 % наблюдали фибробластоподобные клетки, а при 100 % – плотно прилегающие друг к другу веретеновидные клетки. Культуры глиобластом были представлены различными морфологическими типами клеток: встречались веретеновидные, фибробластоподобные клетки и клетки с длинными отростками, образующие сеть. Культуры глиобластомы на фоне анапластической астроцитомы были представлены сетью клеток с длинными отростками.
На нулевом пассаже скорость образования монослоя 100%-ной конфлюентности составляла от 22 до 85 суток. На первом пассаже клетки достигали полного монослоя в пределах от 4 до 25 суток. На нулевом пассаже дольше всех образцов монослой со 100%-ной конфлюентностью образовывали линии глиобластомы – в среднем 59 суток. Наименьшее время для достижения 100%-ной конфлюентности понадобилось клеткам диффузной астроцитомы, анапластической олигодендроглиомы и глиобластомы на фоне анапластической астроцитомы – 22–24 суток.
Выводы. В работе показано, что метод эксплантатов обеспечивает получение жизнеспособных клеток глиальных опухолей и возможность их дальнейшего культивирования.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Т. В. Шамова
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии
Автор, ответственный за переписку.
Email: tanyshamova@mail.ru
младший научный сотрудник
Россия, г. Ростов-на-ДонуА. О. Ситковская
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии
Email: tanyshamova@mail.ru
научный сотрудник, временно исполняющая обязанности руководителя лаборатории клеточных технологий
Россия, г. Ростов-на-ДонуЭ. Е. Росторгуев
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии,
Email: tanyshamova@mail.ru
кандидат медицинских наук, заведующий отделением нейроонкологии, врач-нейрохирург
Россия, г. Ростов-на-ДонуН. С. Кузнецова
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии
Email: tanyshamova@mail.ru
врач-онколог отделения нейроонкологии
Россия, г. Ростов-на-ДонуС. Э. Кавицкий
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии
Email: tanyshamova@mail.ru
кандидат медицинских наук, врач-нейрохирург отделения нейроонкологии
Россия, г. Ростов-на-ДонуСписок литературы
- Stupp R., Mason W.P., van den Bent M.J., Weller M., Fisher B., Taphoorn M.J.B., Belanger K., Brandes A.A., Marosi C., Bogdahn U., Curschmann J., Janzer R.C., Ludwin S.K., Gorlia T., Allgeier A., Lacombe D., Cairncross J.G., Eisenhauer E., Mirimanoff R.O. Radiotherapy plus concomitant and adjuvant temozolo- mide for glioblastoma. N Engl J Med 2005; 352: 987–996.
- Cloughesy T.F., Cavenee W.K., Mischel P.S. Glioblastoma. From Molecular Pathology to Targeted Treatment. Annu Rev Pathol Mech Dis 2014; 9: 1–25.
- DeAngelis L.M. Global consequences of malignant CNS tumours: a call to action. The Lancet Neurology 2019; 4: 324–325.
- Patel A.P., Tirosh I., Trombetta J.J, Shalek A.K., Gillespie S.M., Wakimoto H., Cahill D.P., Nahed B.V., Curry W.T., Martuza R.L., Louis D.N., Rozenblatt-Rosen O., Suvà M.L., Regev A., Bernstein B.E. Single-cell RNA-seq highlights intratumoral heterogeneity in primary glioblastoma. Science 2014; 344: 1396–1401.
- Polivka J., Holubec L., Kubikova T., Priban V., Hes O., Pivovarcikova K., Treskova I. Advances in Experimental Targeted Therapy and Immunotherapy for Patients with Glioblastoma Multiforme. Anticancer Res 2017; 37: 21–33.
- Cree I.A., Glaysher S., Harvey A.L. Efficacy of anti-cancer agents in cell lines versus human primary tumour tissue. Current Opinion in Pharmacology 2010; 4: 375–379.
- Ledur P.F., Onzi G.R., Zong H., Lenz G. Culture conditions defining glioblastoma cells behavior: what is the impact for novel discoveries? Oncotarget 2017; 40: 69185–69197.
- Межевова И.В, Ситковская А.О., Кит О.И. Первичные культуры опухолевых клеток: современные методы получения и поддержания in vitro. Южно-российский онкологический журнал 2020; 3: 36–49.
- Gorelik B., Ziv I., Shohat R., Wick M., Hankins W.D., Sidransky D., Agur Z. Efficacy of Weekly Docetaxel and Bevacizumab in Mesenchymal Chondrosarcoma: A New Theranostic Method Combining Xenografted Biopsies with a Mathematical Model. Cancer Res 2008; 21: 9033–9040.
- Freshney R.I. Culture of Animal Cells: A Manual of Basic Technique and Specialized Applications, Sixth Edition. New Jersey: Wiley-Blackwell 2010; 732.
- Foo L.C., Allen N.J., Bushong E.A., Ventura P.B., Chung W.S., Zhou L., Cahoy J.D., Daneman R., Zong H., Ellisman M.H., Barres B.A. Development of a Method for the Purification and Culture of Rodent Astrocytes. Neuron. 2011; 71: 799–811.
- Reiber H. Dynamics of brain-derived proteins in cerebrospinal fluid. Clin Chim Acta 2001; 310: 173–186.
- Piaskowski S., Bienkowski M., Stoczynska-Fidelus E., Stawski R., Sieruta M., Szybka M., Papierz W., Wolanczyk M., Jaskolski D.J., Liberski P.P., Rieske P. Glioma cells showing IDH1 mutation cannot be propagated in standard cell culture conditions. Br J Cancer 2011; 104: 968–970.
Дополнительные файлы
