Фосфолипидный состав сеголеток атлантического лосося Salmo salar в процессе роста и развития в аквакультуре: влияние разных режимов освещения и кормления

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Исследовано влияние различных режимов кормления и освещения (естественного и непрерывного) на фосфолипидный состав сеголеток атлантического лосося, выращиваемых в товарной аквакультуре в летне-осенний период в Северной Осетии-Алании. Качественное и количественное определение фосфатидилхолина, фосфатидилэтаноламина, фосфатидилсерина, фосфатидилинозитола, лизофосфатидилхолина, сфингомиелина проводили методом высокоэффективной жидкостной хроматографии. Установлено снижение (сентябрь-ноябрь) содержания исследованных фосфолипидов у сеголеток, которое следует рассматривать прежде всего как биохимическую адаптацию развития, подготовку молоди к предстоящей смолтификации. Эффекты режима освещения и кормления на состав фосфолипидов обнаружены главным образом для рыб, находящихся при постоянном режиме освещения и круглосуточном кормлении и рыб, выращиваемых при естественном освещении и кормлении в светлое время суток, при этом следует отметить, что наблюдаемые изменения не являлись специфическими для конкретной экспериментальной группы рыб в рамках настоящего исследования.

Об авторах

С. А. Мурзина

Институт биологии – обособленное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр Российской академии наук”

Автор, ответственный за переписку.
Email: murzina.svetlana@gmail.com
Россия, Петрозаводск

Д. С. Провоторов

Институт биологии – обособленное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр Российской академии наук”

Email: murzina.svetlana@gmail.com
Россия, Петрозаводск

В. П. Воронин

Институт биологии – обособленное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр Российской академии наук”

Email: murzina.svetlana@gmail.com
Россия, Петрозаводск

Д. И. Манойлова

Институт биологии – обособленное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр Российской академии наук”

Email: murzina.svetlana@gmail.com
Россия, Петрозаводск

А. Е. Курицын

Институт биологии – обособленное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр Российской академии наук”

Email: murzina.svetlana@gmail.com
Россия, Петрозаводск

С. Н. Пеккоева

Институт биологии – обособленное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр Российской академии наук”

Email: murzina.svetlana@gmail.com
Россия, Петрозаводск

Н. Н. Немова

Институт биологии – обособленное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр Российской академии наук”

Email: murzina.svetlana@gmail.com
Россия, Петрозаводск

Список литературы

  1. Крепс Е.М. Липиды клеточных мембран. Эволюция липидов мозга. Адаптационная функция липидов. СПб: Наука, 1981. 339 с.
  2. Болдырев А.А., Кяйвяряйнен Е.И., Илюха В.А. Биомембранология: учебное пособие. Петрозаводск: КарНЦ РАН, 2006. 226 с.
  3. Рабинович А.Л., Рипатти П.О. О конформационных свойствах и функциях докозагексаеновой кислоты // Доклады АНССР. 1990. Т. 314. № 3. С. 752–756.
  4. Лось Д.А. Структура, регуляция экспрессии и функционирование десатураз жирных кислот // Успехи биологической химии. 2001. Т. 41. С. 163–198.
  5. Kraffe E., Marty Y., Guderley H. Changes in mitochondrial oxidative capacity during thermal acclimation of rainbow trout: roles of membrane proteins, phospholipids and its fatty acid composition // J. Exper. Biology. 2007. V. 210. P. 149–165.
  6. Daum G. Lipids of Mitochondria // Biochim. Biophys. Acta. 1985. V. 822. P. 1–42.
  7. Немова Н.Н., Нефедова З.А., Мурзина С.А. и др. Влияние экологических условий обитания на динамику жирных кислот у молоди атлантического лосося (Salmo salar L.) // Экология. 2015. № 3. С. 206–211.
  8. Shulgina N.S., Churova M.V., Murzina S.A. et al. The effect of continuous light on growth and muscle-specific gene expression in Atlantic salmon (Salmo salar) yearlings // Life. 2021. V. 11. № 4. P. 328.
  9. Murzina S.A., Voronin V.P., Churova M.V. et al. The Effects of Low-Level Helium–Neon (He–Ne) Laser Irradiation on Lipids and Fatty Acids, and the Activity of Energetic Metabolism Enzymes and Proteome in the Blastula Stage and Underyearlings of the Atlantic Salmon Salmo salar: A Novel Approach in Salmonid Restoration Procedures in the North // Biomolecules. 2022. V. 12 (1). P. 133.
  10. Folch J., Lees M., Sloan-Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipids animal tissue (for brain, liver and muscle) // J. Biol. Chem. 1957. V. 226. P. 497–509.
  11. Arduini A., Peschechera A., Dottori S. et al. High performance liquid chromatography of long-chain acylcarnitine and phospholipids in fatty acid turnover studies // J. Lipid Res. 1996. V. 37. P. 684–689.
  12. Кабаков Р.И. R в действии: Анализ и визуализация данных в программе. М.: ДМК Пресс, 2016. 580 с.
  13. Bruce P., Bruce A., Gedeck P. Practical statistics for data scientists: 50+ essential concepts using R and Python. // O’Reilly Media, 2020.
  14. Мурзина С.А., Провоторов Д.С., Воронин В.П. и др. Показатели липидного обмена у сеголеток атлантического лосося Salmo salar в условиях аквакультуры в южном регионе РФ при разных режимах освещения и кормления // Известия РАН. 2023. В печати.
  15. Sheridan M.A. Alterations in lipid metabolism accompanying smoltification and seawater adaptation of salmonid fish // Aquaculture. 1989. V. 82 (1–4). P. 191–204.
  16. Геннис Р. Биомембраны: Молекулярная структура и функции. М.: Мир, 1997. 624 с.
  17. Verma S.K., Leikina E., Melikov K. et al. Cell-surface phosphatidylserine regulates osteoclast precursor fusion // JBC. 2017. P. 254–270. https://doi.org/10.1074/jbc.M117.809681
  18. Ипатова О.М. Фосфоглив: механизм действия и применение в клинике. М.: ГУНИИ биомедицинской химии РАМН, 2005. 318 с.
  19. Berrigge M.J. Inositol Triphosphate and Diacylglycerol: Two Interacting Second Messengers // Ann. Rev. Biochem. 1987. V. 56. P. 159–193.
  20. Kishimoto A.Y., Takai Y., Mori T. et al. Activation of calcium and phospholipid-dependent protein kinase by diacylglycerol, its possible relation to phosphatidylinositol turnover // Journal of Biological Chemistry. 1980. V. 255. № 6. P. 2273–2276.
  21. Kim Y.J., Guzman-Hernandez M.L., Balla T. Inositol lipid regulation of lipid transfer in specialized membrane domains // Trends in Cell Biology. 2013. V. 23. № 6. P. 270–278.
  22. Tocher D.R. Glycerophospholipid metabolism. In: Hochachka P.W., Mommsen T.P. (Eds.), Biochemistry and Molecular Biology of Fishes. Metabolic and Adaptational Biochemistry, vol. 4. Elsevier Press, Amsterdam, 1995. P. 119–157.
  23. Tocher D.R., Bendiksen E., Campbell P., Bell J. The role of phospholipids in nutrition and metabolism of Teleost fish // Aquaculture. 2008. V. 280. P. 21–34.
  24. Sawyer N., Cauchon E., Chateauneuf A. et al. Molecular pharmacology of the human prostaglandin D2 receptor, CRTH2 // Br J Pharmacol. 2002. V. 137 (8). P. 1163–72.
  25. Hanna V.S., Hafez E.A.A. Synopsis of arachidonic acid metabolism: a review //Journal of advanced research. 2018. V. 11. P. 23–32.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2.

Скачать (194KB)

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах