ADAPTATION OF EUROPEAN CRANBERRY TO NON-STERILE CONDITIONS WITH THE ADDITION OF ORGANIC PRODUCTS AND HORMONES
- Authors: Makarov S.S.1, Kuznetsova I.B.2, Rodin S.A.3, Tsaregradskaya S.Y.3, Belan A.I.4
-
Affiliations:
- Central European Forest Experimental Station
- Kostroma State Agricultural Academy
- All-Russian Scientific Research Institute of Silviculture and Mechanization of Forestry
- Petrozavodsk State University
- Issue: No 1 (2022)
- Pages: 52-60
- Section: RESEARCH ARTICLES
- URL: https://journals.rcsi.science/2311-1410/article/view/316219
- DOI: https://doi.org/10.15372/SJFS20220105
- ID: 316219
Cite item
Full Text
Abstract
The results of studies on rooting in vitro of European cranberry Oxycoccus palustris Pers. plants of Dar of Kostroma cultivar and hybrid form 1-15-635 during clonal micropropagation on a WPM 1/4 nutrient medium and its adaptation to non-sterile conditions. With an increase in the concentration of IAA from 0.5 to 1.0 ml/l and with the addition of Ecogel at a concentration of 0.5 mg/l the number of roots of European cranberry plants of the Dar of Kostroma cultivar increased by 36.7 %, of the hybrid form 1-15-635 - by 7.4 % at the stage of rooting in vitro. Substrates from high-moor peat are used with the addition of mycorrhizal-type ecological preparations (Mycorrhiza, Biomikoriza, Mycogel) at the stage of adaptation of European cranberry to non-sterile conditions ex vitro . The maximum survival (98-100 %) of cranberry are observed when using a peat substrate with the addition of Mycorrhiza. The timing of transplantation had a significant impact on the survival rate of cranberry plants. The best survival rates (84-86 %) are observed in plants of both cultivars transplanted in May. The survival rate of plants is high (92-96 %) in the first year of cultivation after transplanting European cranberry to a high-moor peat plot under natural conditions. Yield data has a high values.
Keywords
About the authors
S. S. Makarov
Central European Forest Experimental Station
Author for correspondence.
Email: makarov_serg44@mail.ru
Kostroma, Russian Federation
I. B. Kuznetsova
Kostroma State Agricultural Academy
Email: sonnereiser@yandex.ru
Karavaevo, Russian Federation
S. A. Rodin
All-Russian Scientific Research Institute of Silviculture and Mechanization of Forestry
Email: info@vniilm.ru
Pushkino, Russian Federation
S. Yu. Tsaregradskaya
All-Russian Scientific Research Institute of Silviculture and Mechanization of Forestry
Email: tsaregradskaya@vniilm.ru
Pushkino, Russian Federation
A. I. Belan
Petrozavodsk State University
Email: anna.belan.66@mail.ru
Petrozavodsk, Russian Federation
References
- Барнаулов О. Д., Поспелова М. Л. Лекарственные свойства фруктов и ягод. СПб.: Информ-Навигатор, 2013. 256 с.
- Доспехов Б. А. Методика полевого опыта. М.: Агропромиздат, 1985. 351 с.
- Зонтиков Д. Н., Зонтикова С. А., Малахова К. В., Марамохин Э. В. Влияние состава питательных сред и регуляторов роста при клональном микроразмножении некоторых полиплоидных форм рода Vaccinium L. // Изв. Самар. НЦ РАН. 2019. Т. 21. № 2. С. 39–44.
- Калашникова Е. А. Клеточная инженерия растений: учеб. пособ. М.: РГАУ-МСХА, 2012. 318 с.
- Кожурин С. И. Организация управления адаптивным природопользованием: моногр. Кострома: Костром. гос. технол. ун-т, 2007. 183 с.
- Колонтарев К. Б., Зайцев А. В. Применение проантоцианидинов клюквы в терапии рецидивирующей мочевой инфекции. Обзор литературы и собственный опыт // Мед. совет. 2014. № 19. С. 28–31.
- Коренев И. А., Тяк Г. В., Макаров С. С. Создание новых сортов лесных ягодных растений и перспективы их интенсивного размножения (in vitro) // Лесохоз. информ. 2019. № 3. С. 180–189.
- Корепанова Д. Д., Новиков И. Л. Выращивание плантационной клюквы на минеральных и торфяных почвах в условиях Удмуртской Республики // Вестн. Удмурт. гос. ун-та. Биол. Науки о земле. 2011. Вып. 3. С. 43–46.
- Кухарчик Н. В., Кастрицкая М. С., Семенас С. Э., Колбанова Е. В., Красинская Т. А., Волосевич Н. Н., Соловей О. В., Змушко А. А., Божидай Т. Н., Рундя А. П., Малиновская А. М. Размножение плодовых растений в культуре in vitro / Ред. Н. В. Кухарчик. Минск: Беларус. навука, 2016. 208 с.
- Макаров С. С., Калашникова Е. А., Кузнецова И. Б., Киракосян Р. Н. Выращивание лесных ягодных растений в условиях in vitro: лаб. практ. Караваево: Костром. гос. с.-х. акад., 2019. 48 с.
- Макеев В. А., Макеева Г. Ю. Клюква // Помология. Т. V. Земляника. Малина. Орехоплодные и редкие культуры. Орел: ВНИИСПК, 2014. С. 419–431.
- Паспорт национального проекта «Экология». Утв. протоколом президиума Совета при Президенте РФ по стратегическому развитию и национальным проектам от 24.12.2018 № 16.
- Рекомендации по созданию плантаций клюквы в европейских районах СССР. Гомель, 1977. 25 с.
- Сельскохозяйственная биотехнология и биоинженерия: учебник. Изд. 4-е, перераб. и доп. / Под общ. ред. В. С. Шевелухи. М.: URSS, 2015. 700 с.
- Сычев Д. А. Применение препаратов клюквы в урологической практике: взгляд клинического фармаколога // Урология. 2011. № 6. С. 97–103.
- Ториков В. Е. Лекарственная ценность овощных, плодово-ягодных, полевых растений и дикоросов: моногр. Брянск: Брян. ГСХА, 2013. 292 с.
- Тяк Г. В., Курлович Л. Е., Тяк А. В. Биологическая рекультивация выработанных торфяников путем создания посадок лесных ягодных растений // Вестн. Казан. гос. агр. ун-та. 2016. Т. 11. № 2. С. 43–46.
- Харитонова Л. А., Харитонова Н. К. Все о ягодах. Маленькая энциклопедия с рецептами. М.: Эксмо, 2010. 232 с.
- Черкасов А. Ф. Плантационное возделывание клюквы в США // Лесн. хоз-во. 2002. № 4. С. 46.
- Черкасов А. Ф., Буткус В. Ф., Горбунов А. Б. Клюква. М.: Лесн. пром-сть, 1981. 214 с.
- Brown P. N., Turi C. E., Shipley P. R., Murch S. J. Comparisons of large (Vaccinium macrocarpon Ait.) and small (Vaccinium oxycoccos L., Vaccinium vitis-idaea L.) cranberry in British Columbia by phytochemical determination, antioxidant potential, and metabolomic profiling with chemometric analysis // Planta Med. 2012. V. 78. N. 6. P. 630–640.
- Eck P. The American cranberry. New Brunswick and London: Rutgers Univ. Press, 1990. 420 p.
- Litwińczuk W. Micropropagation of Vaccinium sp. by in vitro axillary shoot proliferation // Protocols for micropropagation of selected economically-important horticultural plants. NY: Springer Sci., Business Media, 2013. P. 63–76.
- Lloyd G., McCown B. Commercially-feasible micropropagation of Mountain Laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot tip culture // Comb. Proc. Int. Plant Propagator’s Soc. 1980. N. 30. P. 421–427.
- Noormets M., Karp K., Paal T. Recultivation of opencast peat pits with Vaccinium culture in Estonia // Ecosystems and Sustainable Development IV. Wessex Inst. Technol., UK & J.-L. USO, Univ. Jaume I, Spain, 2003. N. 2. P. 1005–1014.
- Vahejõe K., Albert T., Noormets M., Karp K., Paál T., Starast M., Värnik R. Berry cultivation in cutover peatlands in Estonia: agricultural and economical aspects // Balt. For. 2010. V. 16. N. 2. P. 264–272.
- Vilbaste H., Vilbaste J., Ader K. Cranberry – the grape of the north. Tallinn: Ministry of Environ., Rep. Estonia, Nigula St. Nat. Reserve, 1995. 16 p.
Supplementary files
