Methodical aspects of various biomorphs ornamental plants regeneration study

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

The paper raises the problem of conservation, maintenance, rejuvenation and accelerated reproduction of plant objects in bioresource collections using green cutting propagation. The authors describe experimental methods of herbaceous and woody plants regeneration study in agricultural, physiological-biochemical and morphological directions. In agricultural direction the main factors are the timing and methods of green cutting, as well as the microecological conditions in which regeneration takes place (humidity, temperature of the air and substrate). The physiological and biochemical aspect concerns the use of various growth stimulants, including concentrations and timing for the treatment of unruly cuttings. The reliable positive effect of the growth stimulants in comparison with control natural regeneration can be proved by the t-criteria. The morphological aspect shows features of callusogenesis and rhizogenesis. The most profound analysis is possible when representatives of generic complexes, species and varieties of various ecological, geographical and genetic origin are involved in the experiment. A highly informative classification of callusogenesis and rhizogenesis proposed by N.F. Dovbysh, N.A. Oleinik and G.A. Kudina (1993) is described in detail; in this classification three types of callus implantation are described: circular, focal and continuous, as well as five types of localization and development of roots. Root formation can occur 1) in the zone of the node, 2) from the callus tissue, 3) from the side of the bud and leaf trail, 4) over the entire surface of the internode, as well as 5) mixed (from the tissues in the node zone and from callus tissue). Based on the long-term study of the regeneration of shrub and herbaceous ornamental plants, the authors of the paper propose one more type – in the entire surface of the lower cut.

About the authors

Olga Yurievna Vasilyeva

Central Siberian Botanical Garden of Siberian Branch of Russian Academy of Sciences

Email: vasil.flowers@rambler.ru

doctor of biological sciences, head of Ornamental Plants Introduction Laboratory

Russian Federation, Novosibirsk

Inna Yanovna Sarlaeva

Central Siberian Botanical Garden of Siberian Branch of Russian Academy of Sciences

Author for correspondence.
Email: inn1311@mail.ru

junior researcher of Ornamental Plants Introduction Laboratory

Russian Federation, Novosibirsk

References

  1. Васильева О.Ю., Дорогина О.В., Кубан И.Н., Сарлаева И.Я., Буглова Л.В. Методические аспекты изучения биоресурсных коллекций редких и хозяйственно ценных растений // Садоводство и виноградарство. 2018. № 4. С. 12-18.
  2. Новикова Т.И., Дорогина О.В. Сохранение редких и исчезающих видов флоры Сибири методами ex situ // Труды Томского государственного университета. Серия: Биология. 2010. Т. 274. С. 276-278.
  3. Новикова Т.И. Использование биотехнологических подходов для сохранения биоразнообразия растений // Растительный мир Азиатской России. 2013. № 2 (12). С. 119-128.
  4. Мазуренко М.Т., Хохряков А.П. Структура и морфогенез кустарников. М., 1977. 158 с.
  5. Серебрякова Т.И., Воронин Н.С., Еленевский А.Г., Батыгина Т.Б., Шорина Н.И., Савиных Н.П. Ботаника с основами физиологии: анатомия и морфология растений. М.: Академкнига, 2006. 543 с.
  6. Довбыш Н.Ф., Олейник Н.А., Кудина Г.А. К изучению особенностей каллюсо- и ризогенеза при вегетативном размножении растений // Промышленная ботаника: состояние и перспективы развития: тез. докл. междунар. конф. Донецк: Донецк. бот. сад, 1993. С. 225-226.
  7. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. М.: Агропромиздат, 1985. 350 с.
  8. Иванова З.Я. Биологические основы вегетативного размножения древесных растений стеблевыми черенками. Киев: Наукова думка, 1982. 286 с.
  9. Хамурзаев С.М., Борзаев Р.Б. Зеленое черенкование калины и кизила // Горное сельское хозяйство. 2017. № 2. С. 91-94.
  10. Дениско И.Л. Размножение роз садовой группы Патио черенкованием // Hortus Botanicus. 2013. Т. 8. С. 33-46.
  11. Габибова Е.Н. Черенкование как лучший способ сохранения разнообразия форм можжевельника обыкновенного и туи западной // Инновации в науке, образовании и бизнесе - основа эффективного развития АПК. 2011. С. 36-38.
  12. Матвеев И.В. Флоксы метельчатые. М.: Фитон XXI, 2014. 152 с.
  13. Сафонова О.Н., Воронин А.А. Черенкование роз в условиях защищенного грунта // Вестник Саратовского госагроуниверситета им. Н.И. Вавилова. 2011. № 1. С. 36-38.
  14. Васильева О.Ю. Особенности регенерации видов, форм и сортов роз при зеленом черенковании // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2006. № 6. С. 19-24.
  15. Жидехина Т.В. Результаты применения регуляторов роста при зеленом черенковании смородины черной // Плодоводство и ягодоводство России. 2008. Т. 18. С. 141-155.
  16. Абдуллаева Э.В., Рамазанова А.Р. Особенности размножения туи западной черенкованием // Субтропическое и декоративное садоводство. 2011. № 45. С. 156-159.
  17. Зубарев Ю.А., Гунин А.В., Воробьева А.В. Развитие корневой системы трудноокореняемых сортов облепихи при зеленом черенковании с использованием различных концентраций стимуляторов корнеобразования // Современные тенденции развития аграрного комплекса. 2016. С. 839-844.
  18. Вьюгин С.М., Вьюгина Г.В. Использование синтетических аналогов растительных гормонов при зеленом черенковании декоративных кустарников // Защита и карантин растений. 2016. № 10. С. 47-48.
  19. Усенко В.И., Цымбалюк М.А. Эффективность обработки маточных растений и зеленых черенков стимуляторами роста при размножении жимолости // Достижения науки и техники АПК. 2009. № 5. С. 28-30.
  20. Рахматова Н.Р. Особенности ризогенеза при черенковании некоторых интродуцированных видов Ligustrum L. // Вестник Воронежского государственного университета. Серия: География. Геоэкология. 2010. № 2. С. 79-81.
  21. Васильева О.Ю. Онтоморфологические особенности семенных и клоновых подвоев садовых роз в условиях Сибири // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2008. № 1. С. 52-59.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
2. Figure 1 - Removal of roots over the entire surface of the lower cut

Download (29KB)
3. Figure 2 - Removal of roots from the bud and leaf track, as well as over the entire surface of the lower cut

Download (26KB)
4. Figure 3 - Removal of roots over the entire surface of the internode

Download (27KB)
5. Figure 4 - Removal of roots over the entire surface of an internode in a shrub biomorph

Download (26KB)

Copyright (c) 2018 Vasilyeva O.Y., Sarlaeva I.Y.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies