Biological features and medical significance of the Listeria bacteria

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

Bacteria of the genus Listeria are widely distributed in the environment; they are isolated from soil and water ecosystems, food products, environmental objects, and circulate in vivo. L. monocytogenes are pathogenic for animals and humans. The ecological plasticity, stress resistance and tolerance of Listeria determines their ability to switch from a saprophytic to a parasitic life cycle and survive under various environmental conditions. After thawing and subsequent cultivation of Listeria on fresh nutrient medium, a pronounced populational heteromorphism is noted: formation of protoplast-type cells, L-forms and convoluted revertant cells, which requires the use PCR and ELISA for bacteria detection. It is known that non-pathogenic Listeria, as well as pathogenic microorganisms forming a biocenosis with L. monocytogenes, can serve as a reservoir of pathogenicity and resistance determinants and be transferred to pathogenic Listeria by horizontal transfer, which leads to the emergence of new, more virulent and antibiotic-resistant strains. In addition, the most important adaptation mechanism of L. monocytogenes to adverse environmental factors is their ability to form biofilms markedly enhancing survival and disinfectant resistance. The relatively high genomic similarity between L. monocytogenes and some non-pathogenic Listeria species and often their coexistence in similar ecological niches, may provide an opportunity for the transfer of resistance or virulence genes. At the same time, the transmission of pathogenicity genes from L. monocytogenes to L. innocua is also possible, which predetermines the appearance of atypical hemolytic pathogenic strains, which, given the greater environmental prevalence of the latter can pose a great danger to humans and animals. The increasing role of Listeria in the pattern of human and animal infectious pathologies, the variability of their morphological, cultivable and biochemical properties, as well as the constant modification of the surface Listeria antigens underlies a need to improve listeriosis diagnostics and requires creation of new immunobiological preparations and modern regimens for isolation and identification of various Listeria types. This review discusses current views on Listeria spp. prevalence and biological qualities, virulence and pathogenicity factors of L. monocytogenes, as well as methods for identifying different Listeria species.

About the authors

I. A. Derevyanchenko

St. Petersburg Pasteur Institute; Eastern Branch of the Center of Hygiene and Epidemiology in the city of St. Petersburg and the Leningrad Region

Email: lykraeva@yandex.ru

Biologist at the Bacteriological Laboratory, Junior Researcher, Laboratory of Medical Bacteriology

Russian Federation, St. Petersburg; St. Petersburg

Lyudmila A. Kraeva

St. Petersburg Pasteur Institute; Military Medical Academy named after S.M. Kirov

Author for correspondence.
Email: lykraeva@yandex.ru

DSc (Medicine), Associate Professor, Head of the Laboratory of Medical Bacteriology, Professor of the Department of Microbiology

Russian Federation, St. Petersburg; St. Petersburg

References

  1. Антошина И.Ф., Мезенцева М.В. Listeria monocytogenes: распространение и механизмы иммунного ответа // Инфекция и иммунитет. 2012. Т. 2, № 3. С. 627–634. [Antoshina I.F., Mezentseva M.V. Listeria monocytogenes: spreading and mechanisms of immune response. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2012, vol. 2, no. 3, pp. 627–634. (In Russ.)] doi: 10.15789/2220-7619-2012-3-627-634
  2. Арзымбетова Ж.Х., Ахметова А.Т., Нургалиева К.Ж. Лабораторная диагностика листериоза // Медицинский журнал Западного Казахстана. 2011. Т. 30, № 2. С. 12–15. [Arzymbetova Zh.H., Ahmetova A.T., Nurgaliyeva K.Zh. Laboratory diagnostic of listeriosis. Meditsinskiy zhurnal Zapadnogo Kazakhstana = Medical Journal of Western Kazakhstan, 2011, vol. 30, no. 2, pp. 12–15. (In Russ.)]
  3. Асташкин Е.И., Алексеева Е.А., Борзенков В.Н., Кисличкина А.А., Мухина Т.Н., Платонов М.Е., Светоч Э.А., Шепелин А.П., Фурсова Н.К. Молекулярно-генетическая характеристика полирезистентных штаммов Listeria monocytogenes и идентификация новых сиквенс-типов // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2021. Т. 39, № 5. С. 3–13. [Astashkin E.I., Alekseeva E.A., Borzenkov V.N., Kislichkina A.A., Mukhina T.N., Platonov M.E., Svetoch E.A., Shepelin A.P., Fursova N.K. Molecular genetic characteristics of polyresistant Listeria monocytogenes strains and identification of new sequence types. Molekulyarnaya Genetika, Mikrobiologiya i Virusologiya = Molecular Genetics, Microbiology and Virology, 2021, vol. 39, no. 4, pp. 3–13. (In Russ.)] doi: 10.17116/molgen2021390413
  4. Балясова Н.А., Алимов А.М. Стабильность штаммов листерий // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2017. Т. 230, № 2. С. 24–26. [Balyasova N.A., Alimov A.M. Stability of listeria strains. Uchenyye zapiski Kazanskoy gosudarstvennoy akademii veterinarnoy meditsiny im. N.E. Baumana = Scientific notes of the Kazan State Academy of Veterinary Medicine. N.E. Bauman, 2017, vol. 230, no. 2, pp. 24–26. (In Russ.)]
  5. Банникова Д.А., Павлова И.Б., Кононенко А.Б., Болотский М.Н., Бритова С.В. Морфология популяций листерий при различных условиях культивирования (сканирующая электронная микроскопия). I сообщение // Российский журнал «Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии». 2009. Т. 2, № 2. С. 1–7. [Bannikova D.A., Pavlova I.B., Kononenko A.B., Bolotsky M.N., Britova S.V. Morphology of listeria popylation under thr different conditions of cultivation (scanning electron microscooy). Rossiyskiy zhurnal “Problemy veterinarnoy sanitarii, gigiyeny i ekologii” = Russian Journal “Problems of Veterinary Sanitation, Hygiene and Ecology”, 2009, vol. 2, no. 2, pp. 1–7. (In Russ.)]
  6. Болотский М.Н. Индикация Listeria monocytogenes в продовольственном сырье и продуктах животного происхождения методом ИФА // Ветеринарная патология. 2007. № 2. С. 46–49. [Bolotsky M.N. Indication of Listeria monocytogenes in food raw materials and products of animal origin by EIA. Veterinarnaya patologiya = Veterinary Pathology, 2007, no. 2, pp. 46–49. (In Russ.)]
  7. Бузолева Л.С., Терехова В.Е. Выживаемость и адаптивная изменчивость штаммов Listeria monocytogenes в морской и речной воде // Ветеринарная патология. 2004. № 5 (11). С. 31–35. [Buzoleva L.S., Terekhova V.E. Survival and adaptive variability of Listeria monocytogenes strains in sea and river water. Veterinarnaya patologiya = Veterinary Pathology, 2004, no. 4 (11), pp. 31–35. (In Russ.)]
  8. Васильев Д.А., Мастиленко А.В., Ковалева Е.Н. Разработка системы молекулярно-генетической детекции бактерий видов Listeria monocytogenes и Listeria ivanovii // Вестник Уральской государственной сельскохозяйственной академии. 2014. № 1 (25). С. 43–46. [Vasilyev D.Ar., Mastilenko A.V., Kovaleva E.N. Development of a system of molecular genetic detection of bacteria types of Listeria monocytogenes and Listeria ivanovii. Vestnik Ural’skoy gosudarstvennoy sel’skokhozyaystvennoy akademii = Bulletin of the Ural State Agricultural Academy, 2014, no. 1 (25), pp. 43–46. (In Russ.)]
  9. Васильев Д.А., Ковалева Е.Н., Мастиленко А.В. Идентификация бактерий видов Listeria monocytogenes и Listeria ivanovii методом мультиплексной ПЦР в режиме «реального времени» // Биотика. 2014. Т. 1, № 1. С. 3–6. [Vasiliev D.A., Kovaleva E.N., Mastilenko A.V. Identification of bacteria species Listeria monocytogenes and Listeria ivanovii by multiplex real-time PCR. Bïotïka = Biotika, 2014, vol. 1, no. 1, pp. 3–6. (In Russ.)]
  10. Гальцева Г.В., Федоренко Л.М., Инжеватова В.Б., Буланова Е.Е. Лабораторная диагностика листериоза // Успехи современного естествознания. 2006. № 1. С 52–53. [Galtseva G.V., Fedorenko L.M., Ingevatova V.B., Bulanova E.E. Laboratory diagnostics of listeriosis. Uspekhi sovremennogo yestestvoznaniya = Success in Modern Natural Science, 2006, no. 1, pp. 52–53. (In Russ.)]
  11. Громыко Н.Л., Захаренкова Т.Н., Желобкова Т.И., Недосейкина М.С., Кустова М.А. Акушерские аспекты листериоза // Проблемы здоровья и экологии. 2013. № 3 (37). С. 132–136. [Gromyko N.L., Zakharenkova T.N., Zhelobkova T.I., Nedoseikina M.S., Kustova M.A. Obstetrical aspects of listeriosis. Problemy zdorov’ya i ekologii = Problems of Health and Ecology, 2013, no. 3 (37), pp. 132–136. (In Russ.)]
  12. Детушев К.В., Богун А.Г., Мухина Т.Н., Соломенцев В.И. Сравнение методов прямого нанесения биомассы и белковых экстрактов при идентификации микроорганизмов рода Listeria методом MALDI-TOF-типирования // Бактериология. 2018. Т. 3, № 3. С. 28–33. [Detushev K.V., Bogun A.G., Mukhina T.N., Solomentsev V.I. Comparing methods of direct application of biomass and protein extracts in identification of microorganisms of the genus of listeria by MALDI-ToF typing method. Bakteriologiya = Bacteriology, 2018, vol. 3, no. 3, pp. 28–33. (In Russ.)]
  13. Егорова И.Ю., Цыбанова В.А. Дикие животные как источник пищевых токсикоинфекций человека // Ветеринарная патология. 2014. № 5. С. 45–49. [Egorova I.Yu., Tsybanova V.A. Wild animals as a source of human food poisoning. Veterinarnaya patologiya = Veterinary Pathology, 2014, no. 4, pp. 45–49. (In Russ.)]
  14. Ермолаева С.А., Тартаковский И.С. Регуляция экспрессии факторов вирулентности у Listeria monocytogenes // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2001. № 3. С. 106–110. [Ermolaeva S.A., Tartakovskiĭ I.S. Virulence factor expression regulation in Listeria monocytogenes. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 2001, no. 3, pp. 106–110. (In Russ.)]
  15. Зайцева Е.А. Особенности биологических свойств бактерии вида Listeria innocua, выделенных на территории Приморского края // Альманах клинической медицины. 2017. Т. 45, № 2. С. 147–153. [Zaitseva E.A. Specific biological properties of Listeria innocua spp. isolated in Primorye Territory. Al’manakh klinicheskoy meditsiny = Almanac of Clinical Medicine, 2017, vol. 45, no. 2, pp. 147–153. (In Russ.)]
  16. Зайцева Е.А., Ермолаева С.А. Дифференциация штаммов Listeria monocytogenes методом мультиплексной полимеразной цепной реакции // Тихоокеанский медицинский журнал. 2014. № 3. С. 40–42. [Zaytseva E.A., Yermolaeva S.A. Differentiation of listeria monocytogenes strains by the method of multiplex polymerase chain reaction. Tikhookeanskiy meditsinskiy zhurnal = Pacific Medical Journal, 2014, no. 3, pp. 40–42. (In Russ.)]
  17. Зайцева Е.А., Ермолаева С.А., Пуховская Н.М., Мусатов Ю.С., Иванов Л.И., Сомов Г.П. Распространение Listeria monocytogenes и ее роль в инфекционной патологии на Дальнем Востоке России // Тихоокеанский медицинский журнал. 2010. № 5. С. 19–23. [Zaitseva E.A., Ermolaeva S.A., Pukhovskaya N.M., Musatov Yu.S., Ivanov L.I., Somov G.P. Spreading Listeria monocytogenes and its role in infectious pathology in the russian far east. Tikhookeanskiy meditsinskiy zhurnal = Pacific Medical Journal, 2010, no. 4, pp. 19–23. (In Russ.)]
  18. Зайцева Е.А., Федянина Л.Н. О неспецифической профилактике листериоза // Тихоокеанский медицинский журнал. 2010. № 5. С. 5–7. [Zaitseva E.A., Fedyanina L.N. On non-specific prevention of listeriosis. Tikhookeanskiy meditsinskiy zhurnal = Pacific Medical Journal, 2010, no. 4. pp. 5–7. (In Russ.)]
  19. Зайцева Е.А., Сомов Г.П. Микробиологическая характеристика Listeria monocytogenes, изолированных из различных источников в Приморском крае // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2006. № 2. С. 3–6. [Zaitseva E.A., Somov G.P. Microbiological characterization of Listeria monocytogenes isolated from different sources in the primorsky territory. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 2006, no. 2, pp. 3–6. (In Russ.)]
  20. Идиатулин Р.И. Диагностический мониторинг листериоза // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. 2010. № 5. С. 23–26. [Idiatulin R.I. Diagnostic monitoring of listeriosis. Voprosy normativno-pravovogo regulirovaniya v veterinarii = Issues of Legal Regulation in Veterinary Medicine, 2010, no. 4, pp. 23–26. (In Russ.)]
  21. Карпова Т.И., Ермолаева С.А., Лопырев И.В. Новые методы идентификации Listeria monocytogenes // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2001. Т. 3, № 3. С. 266–227. [Karpova T.I., Ermolaeva S.A., Lopirev I.V., Brodinova N.S., Tartakovski I.S., Vazquez-Boland J.A. New Methods for Identification of Listeria monocytogenes. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya = Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy, 2001, vol. 3, no. 3, pp. 266–227. (In Russ.)]
  22. Куликовский А.В., Хапцев З.Ю., Макаров Д.А., Комаров А.А. Пищевая микробиология: эмерджентные зоонозы. М.: Издательство Юрайт, 2019. 233 с. [Kulikovsky A.V., Khaptsev Z.Yu., Makarov D.A., Komarov A.A. Food microbiology: emerging zoonoses. Moscow: Yurayt Publishing House, 2019. 233 p. (In Russ.)]
  23. Лабинская А.С., Костюкова Н.Н., Иванова С.М. Руководство по медицинской микробиологии. Частная медицинская микробиология и этиологическая диагностика инфекций. М.: БИНОМ, 2012. 1152 с. [Labinskaya A.S., Kostyukova N.N., Ivanova S.M. Guide to medical microbiology. Private medical microbiology and etiological diagnosis of infections. Moscow: BINOM, 2012. 1152 p. (In Russ.)]
  24. Мукантаев К.Н., Бегалиева А., Інірбай Б., Райымбек Г., Казыкен Д., Сегизбаева Г.Ж. Получение рекомбинантного антигена р60 Listeria monocytogenes // Биотехнология. Теория и практика. 2015. № 1. С. 17–25. [Mukantayev K.N., Shustov A.B., Sydyknabi I., Bigalyeva A., Raiymbek G., Mukanov K.K. Obtaining of recombinant protein fragment of the GP51 antigen virus of bovine leukemia expressed in E.coli without insert thioredoxin. Biotekhnologiya. Teoriya i praktika = Biotechnology. Theory and Practice, 2015, no. 1, pр. 17–25. (In Russ.)] doi: 10.11134/btp.1.2015.2
  25. Мухина Л.Б., Дмитриева Е.Ю. Организация контроля за распространением возбудителя листериоза Listeria monocytogenes на рыбоперерабатывающих предприятиях. СПб.: Моринтех, 2003. 32 с. [Mukhina L.B., Dmitrieva E.Yu. Organization of control over the spread of the causative agent of listeriosis Listeria monocytogenes at fish processing plants. St. Petersburg: Morintech, 2003. 32 p. (In Russ.)]
  26. Нафеев А.А., Сидорова Н.Н., Лебедько А.М., Никонов О.А., Минаев М.Ю., Сайфутдинова Ф.Ф., Попов В.В., Модникова В.И. Случай септико-тифозной формы листериоза // Клиническая медицина. 2013. № 2. С. 58–59. [Nafeev A.A., Sidorova N.N., Lebed’ko A.M., Nikonov O.A., Minaev M.Yu., Saifutdinova F.F., Popov V.V., Mednikova V.I. Clinical manifestations of listeriosis sepsis. Klinicheskaya meditsina = Clinical Medicine, 2013, no. 2, pp. 58–59. (In Russ.)]
  27. Нечаев А.Ю. Сравнительный анализ результатов выявления Listeria monocytogenes в мясе и мясопродуктах // Международный вестник ветеринарии. 2009. № 3. С. 13–17. [Nechaev A.Y. Comparative analysis of results for the determination of Listeria monocytogenes in meat and meat products. Mezhdunarodnyy vestnik veterinarii = International Bulletin of Veterinary Medicine, 2009, no. 3, pp. 13–17. (In Russ.)]
  28. Олещенко Е.П., Алферова Е.В. Листерии как возбудители пищевых инфекций // Здоровье. Медицинская экология. Наука. 2012. № 3–4. С. 211–212. [Oleshchenko E.P., Alferovа E.V. Lister as causative agents of food borne infections. Zdorov’ye. Meditsinskaya ekologiya. Nauka = Health. Medical Ecology. The Science, 2012, no. 3–4, pp. 211–212. (In Russ.)]
  29. Омарова С.М., Исаева Р.И. Биологические свойства штаммов Listeria monocytogenes, выделенных на новых отечественных селективных питательных средах из клинического материала при диагностике листериоза беременных и новорожденных // Астраханский медицинский журнал. 2011. Т. 6, № 1. С. 147–151. [Omarova S.M., Isaeva R.I. The biological properties of Listeria monocytogenes strains received on the base of new home-produced selective nutritive media from the clinical material in listeria diagnostics of pregnant women and new-borns. Astrakhanskiy meditsinskiy zhurnal = Astrakhan Medical Journal, 2011, vol. 6, no. 1, pp. 147–151. (In Russ.)]
  30. Омарова С.М., Ахмедова Э.М., Муртазалиева П.М. Питательные среды для изучения биологических свойств листерий // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2007. № 3. С. 95–97. [Akhmedova E.M., Omarova S.M., Murtuiaheva P.M., Nurmagomedova Z.M. Nutnent media for study of biologic characteristics of listeria. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 2007, no. 3, pp. 95–97. (In Russ.)]
  31. Пискунов А.В., Прунтова О.В., Шадрова Н.Б., Ручнова О.И. Использование MALDI-ToF масс-спектрометрии для идентификации бактерий рода Listeria // Труды федерального центра охраны здоровья животных. 2011. Т. 9, № 1. С. 242–249. [Piskunov A.V., Pruntova O.V., Shadrova N.B., Ruchnova O.I. Application of MALDI-ToF mass-spectrometry for identification of Listeria species. Trudy federal’nogo tsentra okhrany zdorov’ya zhivotnykh = Works of the Federal Center for Animal Health, 2011, vol. 9, no. 1, pp. 242–249. (In Russ.)]
  32. Покровский В.И., Пак С.Г., Брико Н.И., Данилкин Б.К. Инфекционные болезни и эпидемиология: учебник. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. 816 с. [Pokrovsky V.I., Pak S.G., Briko N.I., Danilkin B.K. Infectious diseases and epidemiology: a textbook. Moscow: GEOTAR-Media, 2009. 816 p. (In Russ.)]
  33. Поманская Л.А. О размножении листерий в почве // Микробиология, эпидемиология, иммунобиология. 1963. № 6. С. 99–101. [Pomanskaya L.A. On the reproduction of listeria in the soil. Mikrobiologiya, epidemiologiya, immunobiologiya = Microbiology, Epidemiology, Immunobiology, 1963, no. 6, pp. 99–101. (In Russ.)]
  34. Садова Н.В., Заплатников А.Л. Врожденный листериоз // Русский медицинский журнал. 2008. № 18. С. 162–165. [Sadova N.V., Zaplatnikov A.L. Congenital listeriosis. Russkiy meditsinskiy zhurnal = Russian Medical Journal, 2008, no. 18, pp. 162–165. (In Russ.)]
  35. Скитович Г.С., Шадрова Н.Б., Прунтова О.В., Серова К.В. Оптимизация ПЦР в реальном времени для выявления генома Listeria monocytogenes // Ветеринария сегодня. 2018. Т. 26, № 3. С. 63–68. [Skitovich G.S., Shadrova N.B., Pruntova O.V., Serova K.V. Real-time PCR optimization for Listeria monocytogenes genome detection. Veterinariya segodnya = Veterinary Today, 2018, vol. 26, no. 3, pp. 63–68. (In Russ.)]
  36. Сидоренко М.Л. Влияние летучих метаболитов бактерий рода Pseudomonas на размножение патогенных бактерий // Тихоокеанский медицинский журнал. 2001. № 7. С. 131. [Sidorenko M.L., Buzoleva L.S. Influence of volatile metabolites of bacteria of the genus Pseudomonas on the reproduction of pathogenic bacteria. Tikhookeanskiy meditsinskiy zhurnal = Pacific Medical Journal, 2001, no. 7, р. 131. (In Russ.)]
  37. Сомов Г.П. Особенности экологии внеорганизменных популяций патогенных бактерий и их отражение в эпидемиологии инфекции // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1997. № 5. С. 12–15. [Somov G.P. Features of the ecology of extraorganismal populations of pathogenic bacteria and their reflection in the epidemiology of infection. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 1997, no. 5, pp. 12–15. (In Russ.)]
  38. Стародумова С.М., Зайцева Е.А. Способ быстрой идентификации бактерий рода Listeria и патогенного вида Listeria monocytogenes с помощью мультиплексной ПЦР // Тихоокеанский медицинский журнал. 2014. № 1. С. 95–97. [Starodumova S.M., Zaitseva E.A. The way of a quick identification of bacteria genus Listeria and pathogenic species of Listeria monocytogenes by means of the multiplex polymerase chain reaction. Tikhookeanskiy meditsinskiy zhurnal = Pacific Medical Journal, 2014, no. 1, pp. 95–97. (In Russ.)]
  39. Тартаковский И.С. Листерии: роль в инфекционной патологии человека и лабораторная диагностика // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2000. Т. 2, № 2. С. 20–30. [Tartakovski I.S. Listeriae: the role in infection diseases and laboratory diagnostics. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya = Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy, 2000, vol. 2, no. 2, pp. 20–30. (In Russ.)]
  40. Хаптанова Н.М., Андреевская Н.М., Лукьянова С.В., Коновалова Ж.А., Гефан Н.Г., Остяк А.С., Токмакова Е.Г. Особенности серологической диагностики листериоза (обзор литературы) // Acta Biomedica Scientifica. 2019. Т. 4, № 1. С. 43–49. [Khaptanova N.M., Аndreevskaya N.M., Lukyanova S.V., Konovalova Zh.A., Gefan N.G., Ostyak А.S., Tokmakova E.G. Aspects of serological diagnostics of listeriosis (literature review). Acta Biomedica Scientifica, 2019, vol. 4, no. 1, pp. 43–49. (In Russ.)] doi: 10.29413/ABS.2019-4.1.7
  41. Цветкова Н.Б. Изменчивость биологических свойств Listeria monocytogenes под влиянием абиотических факторов // Здоровье. Медицинская экология. Наука. 2012. Т. 1–2, № 57–48. С. 253–257. [Tsvetkova N.B. The variability of the biological properties of Listeria monocytogenes under the influence of abiotic factors. Zdorov’ye. Meditsinskaya ekologiya. Nauka = Health. Medical Ecology. The Science, 2012, vol. 1–2, no. 47–48, pp. 253–257. (In Russ.)]
  42. Ющук Н.Д., Венгеров Ю.Я. Инфекционные болезни: национальное руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2015. 1061 р. [Yushchuk N.D., Vengerov Yu.Ya. Infectious diseases: national guidelines. Moscow: GEOTAR-Media, 2015. 1061 р. (In Russ.)] doi: 10.33029/9704- 6122-8-INB-2021-1-1104
  43. Andre P., Genicot A. First isolation of Listeria welshimeri in a human. Zentralbl. Bakteriol. Mikrobiol. Hyg A., 1987, vol. 263, no. 4, pp. 605–606
  44. Baquero F., Lanza V., Duval M., Coque T.M. Ecogenetics of antibiotic resistance in Listeria monocytogenes. Mol. Microbiol., 2020, vol. 113, no. 3, pp. 570–579. doi: 10.1111/mmi.14454
  45. Becker B., Schuler S. Schnellnachweis von Listeria monocytogenes in Fleischerzeugnissen. Fleischwirtschaft, 2007, vol. 87, no. 7, рр. 103–106.
  46. Berlec A., Janež N., Sterniša M., Klančnik A., Sabotič J. Listeria innocua biofilm assay using nanoluc luciferase. Bio Protoc., 2022, vol. 12, no. 3: e4308. doi: 10.21769/BioProtoc.4308
  47. Bertsch D., Rau J., Eugster M.R., Haug M.C., Lawson P.A., Lacroix C., Meile L. Listeria fleischmannii sp. nov., isolated from cheese. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2013, vol. 63, рр. 526–532. doi: 10.1099/ijs.0.036947-0
  48. Beumer R., Hazeleger W.C. Listeria monocytogenes: diagnostic problems. FEMS Immunol. Med. Microbiol., 2003, vol. 35, pp. 191–197. doi: 10.1016/s0928-8244(02)00444-3
  49. Bhunia A.K. Antibodies to Listeria monocytogenes. Crit. Rev. Microbiol., 2008, vol. 23, pp. 77–107. doi: 10.3109/10408419709115131
  50. Buchrieser C., Rusniok C., Kunst F., Cossart P., Glaser P. Comparison of the genome sequences of Listeria monocytogenes and Listeria innocua: clues for evolution and pathogenicity. FEMS Immunol. Med. Microbiol., 2003, vol. 35, no. 3, pp. 207–213. doi: 10.1016/S0928-8244(02)00448-0
  51. Burkholder K.M., Bhunia A.K. Listeria monocytogenes uses Listeria Adhesion Protein (LAP) to promote bacterial transepithelial translocation and induces expression of LAP Receptor Hsp60. Infect. Immun., 2010, vol. 78, pp. 5062–5073. doi: 10.1128/IAI.00516-10
  52. Burkholder K.M., Kim K.-P., Mishra K.K., Medina S., Hahm B.-K., Kim H., Bhunia A.K. Expression of LAP, a SecA2-dependent secretory protein, is induced under anaerobic environment. Microbes Infect., 2009, vol. 11, pp. 859–867. doi: 10.1016/j.micinf.2009.05.006
  53. Butman B.T., Plank M.C., Durham R.J., Mattingly J.A. Monoclonal antibodies which identify a genus-specific Listeria antigen. Appl. Environ. Microbiol., 1988, vol. 54, no. 6, pp. 1564–1569. doi: 10.1128/aem.54.6.1564-1569.1988
  54. Carrero J.A., Calderon B., Unanue E.R. Lymphocytes are detrimental during the early innate immune response against Listeria monocytogenes. J. Exp. Med., 2006, vol. 203, pp. 933–940. doi: 10.1084/jem.20060045
  55. Chen J., Chen Q., Jiang L., Cheng C., Bai F., Wang J., Mo F., Fang W. Internalin profiling and multilocus sequence typing suggest four Listeria innocua subgroups with different evolutionary distances from Listeria monocytogenes. BMC Microbiol., 2010, vol. 10, no. 1, pр. 97–123. doi: 10.1186/1471-2180-10-97
  56. Chen M., Cheng J., Wu Q., Zhang J., Chen Y., Zeng H., Ding Y. Prevalence, potential virulence, and genetic diversity of Listeria monocytogenes isolates from edible mushrooms in Chinese markets. Front. Microbiol., 2018, vol. 9, pp. 1711–1722. doi: 10.3389/fmicb.2018.01711
  57. Chen Y., Chen Y., Pouillot R., Dennis S., Xian Z., Luchansky J.B., Porto-Fett A.C.S., Lindsay J.A., Hammack T.S., Allard M., Van Doren J.M., Brown E.W. Genetic diversity and profiles of genes associated with virulence and stress resistance among isolates from the 2010–2013 interagency Listeria monocytogenes market basket survey. PLoS One, 2020, vol. 15, no. 4: e0231393. doi: 10.1371/journal.pone.0231393
  58. Chiara M., Caruso M., D’Erchia A.M., Manzari C., Fraccalvieri R., Goffredo E., Latorre L., Miccolupo A., Padalino I., Santagada G., Chiocco D., Pesole G., Horner D.S., Parisi A. Comparative genomics of Listeria sensu lato: genus-wide differences in evolutionary dynamics and the progressive gain of complex, potentially athogenicity related traits through lateral gene transfer. Genome Biol. Evol., 2015, vol. 7, no. 8, рр. 2154–2172. doi: 10.1093/gbe/evv131
  59. Clayton E.M., Daly K.M., Guinane C.M., Hill C., Cotter P.D., Ross P.R. Atypical Listeria innocua strains possess an intact LIPI-3. BMC Microbiol., 2014, vol. 14, no. 1, pp. 58–67. doi: 10.1186/1471-2180-14-58
  60. Cossart P. Illuminating the landscape of host-pathogen interactions with the bacterium Listeria monocytogenes. Proc. Natl Acad. Sci. USA, 2011, vol. 108, no. 49, pp. 19484–19491. doi: 10.1073/pnas.1112371108
  61. Cotter P.D., Draper L.A., Lawton E.M., Daly K.M., Groeger D.S., Casey P.G., Ross R.P., Hill C. Listeriolysin S., a novel peptide haemolysin associated with a subset of lineage I Listeria monocytogenes. PLoS Pathog., 2008, vol. 4: e1000144. doi: 10.1371/journal.ppat.1000144
  62. Curiale M.S., Lepper W., Robison B. Enzyme-linked immunoassay for detection of Listeria monocytogenes in dairy products, seafoods, and meats: collaborative study. J. AOAC Int., 1994, vol. 77, no. 6, рр. 1472–1489. doi: 10.1093/jaoac/77.6.1472
  63. Czuprynski C.J., Brown J.F., Wagner R.D., Steinberg H. Administration of antigranulocyte monoclonal antibody RB6-8C5 prevents expression of acquired resistance to Listeria monocytogenes infection in previously immunized mice. Infect. Immun., 1994, vol. 62, pp. 5161–5163. doi: 10.1128/iai.62.11.5161-5163.1994
  64. Den Bakker H.C., Warchocki S., Wright E.M., Allred A.F., Ahlstrom C., Manuel C.S., Stasiewicz M.J., Burrell A., Roof S., Strawn L.K., Fortes E., Nightingale K.K., Kephart D., Wiedmann M. Listeria floridensis sp. nov., Listeria aquatica sp. nov., Listeria cornellensis sp. nov., Listeria riparia sp. nov. and Listeria grandensis sp. nov., from agricultural and natural environments. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2014, vol. 64, no. Pt_6, рр. 1882–1889. doi: 10.1099/ijs.0.052720-0
  65. Den Bakker H.C., Manuel C.S., Fortes E.D., Wiedmann M., Nightingale K.K. Genome sequencing identifies Listeria fleischmannii subsp. Coloradonensis subsp. nov., isolated from a ranch. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2013, vol. 63, pt 9, pp. 3257–3268. doi: 10.1099/ijs.0.048587-0
  66. Den Bakker H.C., Cummings C.A, Ferreira V., Vatta P., Orsi R.H., Degoricija L., Barker M., Petrauskene O., Furtado M.R., Wiedmann M. Comparative genomics of the bacterial genus Listeria: Genome evolution is characterized by limited gene acquisition and limited gene loss. BMC Genomics, 2010, vol. 11, no. 1, pp. 688–708. doi: 10.1186/1471-2164-11-688
  67. Destro M.T., Leitao M.F., Farber J.M. Use of molecular typing methods to trace the dissemination of Listeria monocytogenes in a shrimp processing plant. Appl. Environm. Microbiol., 1996, vol. 62, no. 2, pp. 705–711. doi: 10.1128/aem.62.2.705-711.1996
  68. Doijad S.P., Poharkar K.V., Kale S.B., Kerkar S., Kalorey D.R., Kurkure N.V., Rawool D.B., Malik S.V.S., Ahmad R.Y., Hudel M., Chaudhari S.P., Abt B., Overmann J., Weigel M., Hain T., Barbuddhe S.B., Chakraborty T. Listeria goaensis sp. nov. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2018, vol. 68, no. 10, pp. 3285–3291. doi: 10.1099/ijsem.0.002980
  69. Doumith M., Buchrieser C., Glaser P. Differentiation of the major Listeria monocytogenes serovars by multiplex PCR. J. Clin. Microbiol., 2004, vol. 42, no. 8, pp. 3819–3822. doi: 10.1128/JCM.42.8.3819-3822.2004
  70. Drolia R., Bhunia A.K. Crossing the intestinal barrier via Listeria adhesion protein and internalin A. Trends Microbiol., 2019, vol. 27, no. 5, pp. 408–425. doi: 10.1016/j.tim.2018.12.007
  71. Drolia R., Tenguria S., Durkes A.C., Turner J.R., Bhunia A.K. Listeria adhesion protein induces intestinal epithelial barrier dysfunction for bacterial translocation. Cell. Host. Microbe, 2018, vol. 23, no. 4, pp. 470–484. doi: 10.1016/j.chom.2018.03.004
  72. Du X.-J., Zhang X., Wang X.-Y., Su Y.-L., Li P., Wang S. Isolation and characterization of Listeria monocytogenes in Chinese food obtained from the central area of China. Food Control, 2016, vol. 74, pp. 9–16. doi: 10.1016/j.foodcont.2016.11.024
  73. El-Shenawy M., Manes J., Soriano J.M. Listeria spp. in Street-Vended ReadytoEat Foods. Interdiscip. Perspect. Infect. Dis., 2011, vol. 2011, pp. 1–6. doi: 10.1155/2011/968031
  74. El-Shenawy M.A. Listeria spp. in the coastal environment of the Aqaba Gulf, Suez Gulf and the Red Sea. Epidemiol. Infect., 2006, vol. 134, no. 4, pp. 752–757. doi: 10.1017/S0950268805005601
  75. Ermolaeva S.A., Belyi Yu.F., Tartakovskii I.S. Characteristics of induction of virulence factor expression by activated charcoal in Listeria monocytogenes. FEMS Microbiol. Lett., 1999, vol. 174, no. 1, pp. 137–141. doi: 10.1111/j.1574-6968.1999.tb13560.x
  76. Forster B.M., Zemansky J., Portnoy D.A., Marquis H. Posttranslocation chaperone PrsA2 regulates the maturation and secretion of Listeria monocytogenes proprotein virulence factors. J. Bacteriol., 2011, vol. 193, pp. 5961–5970. doi: 10.1128/JB.05307-11
  77. Freitag N.E., Port G.C., Miner M.D. Listeria monocytogenes — from saprophyte to intracellular pathogen. Nat. Rev. Microbiol., 2009, vol. 7, no. 9, pp. 623–628. doi: 10.1038/nrmicro2171
  78. Gaballa A., Guariglia-Oropeza V., Wiedmann M., Boor K.J. Cross Talk between SigB and PrfA in Listeria monocytogenes Facilitates Transitions between Extra- and Intracellular Environments. Microbiol. Mol. Biol. Rev., 2019, vol. 83, no. 4: e00034-19. doi: 10.1128/MMBR.00034-19
  79. Gana J., Gcebe N., Pierneef R., Moerane R., Adesiyun A.A. Multiple-Locus Variable-Number Tandem Repeat Analysis Genotypes of Listeria monocytogenes Isolated from Farms, Abattoirs, and Retail in Gauteng Province, South Africa. J. Food Prot., 2022, vol. 85, no. 9, pp. 1249–1257. doi: 10.4315/jfp-22-081
  80. Gasanov U., Hughes D., Hansbro P.M. Methods for the isolation and identification of Listeria spp. and Listeria monocytogenes: a review. FEMS Microbiol. Rev., 2005, vol. 29, no. 5, pp. 851–875. doi: 10.1016/j.femsre.2004.12.002
  81. Gómez D., Azón E., Marco N., Carramiñana J.J., Rota C., Ariño A., Yangüela J. Antimicrobial resistance of Listeria monocytogenes and Listeria innocua from meat products and meat-processing environment. Food Microbiol., 2014, vol. 42, pp. 61–65. doi: 10.1016/j.fm.2014.02.017
  82. Gouin E., Mengaud J., Cossart P. The virulence gene cluster of Listeria monocytogenes is also present in Listeria ivanovii, an animal pathogen, and Listeria seeligeri, a nonpathogenic species. Infect. Immun., 1994, vol. 62, no. 8, pp. 3550–3553. doi: 10.1128/iai.62.8.3550-3553.1994
  83. Graves L.M., Helsel L.O., Steigerwalt A.G., Morey R.E., Daneshvar M.I., Roof S.E., Orsi R.H., Fortes E.D., Milillo S.R., Den Bakker H.C., Wiedmann M., Swaminathan B., Sauders B.D. Listeria marthii sp. nov., isolated from the natural environment, Finger Lakes National Forest. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2010, vol. 60, no. 6, pp. 1280–1288. doi: 10.1099/ijs.0.014118-0
  84. Grenningloh R., Darji A., Wehland J., Chakaraborty T., Weiss S. Listeriolysin and IrpA are major protein targets of the human humoral response against Listeria monocytogenes. Infect. Immun., 1997, vol. 65, no. 9, pp. 3976–3980. doi: 10.1128/iai.65.9.3976-3980.1997
  85. Gudmundsdottir S., Gudbjornsdottir B., Lauzon H.L., Einarsson H., Kristinsson K.G. Listeria monocytogenes isolates from cold-smoked salmon and its processing environment in Iceland using pulsed-field gel electrophoresis. Int. J. Food Microbiol., 2005, vol. 101, no. 1, pp. 41–51. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2004.08.023
  86. Hain T., Steinweg C., Kuenne C.T., Billion A., Ghai R., Chatterjee S.S., Domann E., Kärst U., Goesmann A., Bekel T., Bartels D., Kaiser O., Meyer F., Pühler A., Weisshaar B., Wehland J., Liang C., Dandekar T., Lampidis R., Kreft J., Goebel W., Chakraborty T. Whole-genome sequence of Listeria welshimeri reveals common steps in genome reduction with Listeria innocua as compared to Listeria monocytogenes. J. Bacteriol., 2006, vol. 188, no. 21, pp. 7405–7415. doi: 10.1128/JB.00758-06
  87. Harter E., Wagner E.M., Zaiser A., Halecker S., Wagner M., Rychli K. Stress Survival Islet 2, Predominantly Present in Listeria monocytogenes Strains of Sequence Type 121, Is Involved in the Alkaline and Oxidative Stress Responses. Appl. Environ. Microbiol., 2017, vol. 83, no. 16: e00827-17. doi: 10.1128/AEM.00827-17
  88. Hwang C.-A., Sheen S., Juneja V.K. Effect of salt, smoke compound, and temperature on the survival of Listeria monocytogenes in salmon during simulated smoking processes. J. Food Sci., 2009, vol. 74, no. 9, pp. 522–529. doi: 10.1111/j.1750-3841.2009.01377.x
  89. Jadhav S., Gulati V., Fox E.M., Karpe A., Beale D.J., Sevior D., Bhave M., Palombo E.A. Rapid identification and source-tracking of Listeria monocytogenes using MALDI-ToF mass spectrometry. Int. J. Food Microbiol., 2015, vol. 202, pp. 1–9. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2015.01.023
  90. Jadhav S., Bhave M., Palombo E.A. Methods used for the detection and subtyping of Listeria monocytogenes. J. Microbiol. Methods, 2012, vol. 88, no. 3, pp. 327–341. doi: 10.1016/j.mimet.2012.01.002
  91. Jagadeesan B., Koo O.K., Kim K.-P., Burkholder K.M., Mishra K.K., Aroonnual A., Bhunia A.K. LAP, an alcohol acetaldehyde dehydrogenase enzyme in Listeria promotes bacterial adhesion to enterocyte-like Caco-2 cells only in pathogenic species. Microbiology, 2010, vol. 156, no. 9, pp. 2782–2795. doi: 10.1099/mic.0.036509-0
  92. Jahan M., Holley R.A. Transfer of antibiotic resistance from Enterococcus faecium of fermented meat origin to Listeria monocytogenes and Listeria innocua. Lett. Appl. Microbiol., 2016, vol. 62, no. 4, pp. 304–310. doi: 10.1111/lam.12553
  93. Junttila J.R., Niemela S.I., Hirn J. Minimum growth temperatures of Listeria monocytogenes and non-haemolytic listeria. J. Appl. Bacteriol., 1988, vol. 65, no. 4, pp. 321–327. doi: 10.1111/j.1365-2672.1988.tb01898.x
  94. Kaszoni-Rückerl I., Mustedanagic A., Muri-Klinger S., Brugger K., Wagner K.H., Wagner M., Stessl B. Predominance of distinct Listeria innocua and Listeria monocytogenes in recurrent contamination events at dairy processing facilities. Microorganisms, 2020, vol. 8, no. 2: 234. doi: 10.3390/microorganisms8020234
  95. Kathariou S., Kanenaka R., Allen R.D., Fok A.K., Mizumoto C. Repression of motility and flagellin production at 37 degrees C is stronger in Listeria monocytogenes than in the nonpathogenic species Listeria innocua. Can. J. Microbiol., 1995, vol. 41, no. 7, pp. 572–577. doi: 10.1139/m95-076
  96. Keeney K.M., Stuckey J.A., O’Riordan M.X.D. LplA1-dependent utilization of host lipoyl peptides enables Listeria cytosolic growth and virulence. Mol. Microbiol., 2007, vol. 66, pp. 758–770. doi: 10.1111/j.1365-2958.2007.05956.x
  97. Koopmans M.M., Bijlsma M.W., Brouwer M.C., van de Beek D., van der Ende A. Listeria monocytogenes meningitis in the Netherlands, 1985–2014: A nationwide surveillance study. J. Infect., 2017, vol. 75, no. 1, pp. 12–19. doi: 10.1016/j.jinf.2017.04.004
  98. Laksanalamai P., Huang B., Sabo J., Burall L.S., Zhao S., Bates J., Datta A.R. Genomic Characterization of Novel Listeria monocytogenes Serotype 4b Variant Strains. PLoS One, 2014, vol. 9, no. 2: e89024. doi: 10.1371/journal.pone.0089024
  99. Lang Halter E., Neuhaus K., Scherer S. Listeria weihenstephanensis sp. nov., isolated from the water plant Lemna trisulca taken from a fresh water pond. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2013, vol. 63, pt 2, pp. 641–647. doi: 10.1099/ijs.0.036830-0
  100. Leclercq A., Clermont D., Bizet C., Grimont P.A., Le Fleche-Mateos A., Roche S.M., Buchrieser C., Cadet-Daniel V., Le Monnier A., Lecuit M., Allerberger F. Listeria rocourtiae sp. nov. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2010, vol. 60, no. 9, pp. 2210–2214. doi: 10.1099/ijs.0.017376-0
  101. Lee S., Ward T.J., Graves L.M., Wolf L.A., Sperry K., Siletzky R.M., Kathariou S. Atypical Listeria monocytogenes serotype 4b strains harboring a lineage II-specific gene cassette. Appl. Environ. Microbiol., 2012, vol. 78, no. 3, pp. 660–667. doi: 10.1128/AEM.06378-11
  102. Li M., Yan S., Fanning S., Li F., Xu J. Whole Genome Analysis of Three Multi-Drug Resistant Listeria innocua and Genomic Insights Into Their Relatedness With Resistant Listeria monocytogenes. Front. Microbiol., 2021, vol. 12, pp. 694361–694369. doi: 10.3389/fmicb.2021.694361
  103. Liao Y., Liu L., Zhou H., Fang F., Liu X. Case report: refractory Listeria innocua meningoencephalitis in a three-year-old boy. Front. Pediatr., 2022, vol. 10, pp. 857900–857905. doi: 10.3389/fped.2022.857900
  104. Locatelli A., Lewis M.A., Rothrock M.J.Jr. The Distribution of Listeria in Pasture-Raised Broiler Farm Soils Is Potentially Related to University of Vermont Medium Enrichment Bias toward Listeria innocua over Listeria monocytogenes. Front. Vet. Sci., 2017, vol. 4, pp. 227–237. doi: 10.3389/fvets.2017.00227
  105. Lomonaco S., Nucera D., Filipello V. The evolution and epidemiology of Listeria monocytogenes in Europe and the United States. Infect. Genet. Evol,. 2015, vol. 35, pp. 172–183. doi: 10.1016/j.meegid.2015.08.008
  106. Luque-Sastre L., Arroyo C., Fox E.M., McMahon B.J., Bai L., Li F., Fanning S. Antimicrobial Resistance in Listeria Species. Microbiol. Spectr., 2018, vol. 6, no. 4. doi: 10.1128/microbiolspec.ARBA-0031-2017
  107. Maćkiw E., Stasiak M., Kowalska J., Kucharek K., Korsak D., Postupolski J. Occurrence and characteristics of Listeria monocytogenes in ready-to-eat meat products in Poland. J. Food Prot., 2020, vol. 83, no. 6, pp. 1002–1009. doi: 10.4315/JFP-19-525
  108. Manqele A., Gcebe N., Pierneef R.E., Moerane R., Adesiyun A.A. Identification of Listeria species and Multilocus Variable-Number Tandem Repeat Analysis (MLVA) Typing of Listeria innocua and Listeria monocytogenes Isolates from Cattle Farms and Beef and Beef-Based Products from Retail Outlets in Mpumalanga and North West Provinces, South Africa. Pathogens, 2023, vol. 12, no. 1, рр. 147. doi: 10.3390/pathogens12010147
  109. Martín B., Bover-Cid S., Aymerich T. MLVA subtyping of Listeria monocytogenes isolates from meat products and meat processing plants. Food Res. Int., 2018, vol. 106, pp. 225–232. doi: 10.1016/j.foodres.2017.12.052
  110. Matto C., D’Alessandro B., Mota M.I., Braga V., Buschiazzo A., Gianneechini E., Varela G., Rivero R. Listeria innocua isolated from diseased ruminants harbour minor virulence genes of L. monocytogenes. Vet. Med. Sci., 2022, vol. 8, no. 2, pp. 735–740. doi: 10.1002/vms3.710
  111. Maury M.M., Bracq-Dieye H., Huang L., Vales G., Lavina M., Thouvenot P., Disson O., Leclercq A., Brisse S., Lecuit M. Hypervirulent Listeria monocytogenes clones’ adaption to mammalian gut accounts for their association with dairy products. Nat. Commun., 2019, vol. 10, no. 1, pp. 2488–2500. doi: 10.1038/s41467-019-10380-0
  112. Maury M.M., Tsai Y.-H.H., Charlier C., Touchon M., Chenal-Francisque V., Leclercq A., Criscuolo A., Gaultier C., Roussel S., Brisabois A., Disson O., Rocha E.P.C., Brisse S., Lecuit M. Uncovering Listeria monocytogenes hypervirulence by harnessing its biodiversity. Nat. Genet., 2016, vol. 48, pp. 308–313. doi: 10.1038/ng.3501
  113. Meinersmann R., Phillips R.W., Wiedmann M., Berrang M.E. Multilocus sequence typing of Listeria monocytogenes by use of hypervariable genes reveals clonal and recombination histories of three lineages. Appl. Environ. Microbiol., 2004, vol. 70, no. 4, pp. 2193–2203. doi: 10.1128/AEM.70.4.2193-2203.2004
  114. Meireles D., Pombinho R., Carvalho F., Sous S., Cabane D. Listeria monocytogenes wall teichoic acid glycosylation promotes surface anchoring of virulence factors, resistance to antimicrobial peptides, and decreased susceptibility to antibiotics. Pathogens, 2020, vol. 9, no. 4, р. 290. doi: 10.3390/pathogens9040290
  115. Melo J., Andrew P.W., Faleiro M.L. Listeria monocytogenes in cheese and the dairy environment remains a food safety challenge: the role of stress responses. Food Res. Int., 2015, vol. 67, pp. 75–90. doi: 10.1016/j.foodres.2014.10.031
  116. Milillo S.R., Friedly E.C., Saldivar J.C., Muthaiyan A., O’Bryan C., Crandall P.G., Johnson M.G., Ricke S.C. A review of the ecology, genomics, and stress response of Listeria innocua and Listeria monocytogenes. Crit. Rev. Food Sci. Nutr., 2012, vol. 52, no. 8, pp. 712–725. doi: 10.1080/10408398.2010.507909
  117. Montazeri N., Himelbloom B.H., Oliveira A.C., Leigh M.B., Crapo C.A. Refined liquid smoke: a potential antiListerial additive to coldsmoked sockeye salmon (Oncorhynchus nerka). J. Food Prot., 2013, vol. 76, no. 5, pp. 812–819. doi: 10.4315/0362-028X.JFP-12-368
  118. Montero D., Bodero M., Riveros G., Lapierre L., Gaggero A., Vidal R.M., Vidal M. Molecular epidemiology and genetic diversity of Listeria monocytogenes isolates from a wide variety of ready-toeat foods and their relationship to clinical strains from listeriosis outbreaks in Chile. Front. Microbiol., 2015, vol. 6: 384. doi: 10.3389/fmicb.2015.00384
  119. Murray E.G.D, Webb R.A., Swann M.B.R. A disease of rabbits characterized by large mononuclear leucocytosis caused by a hitherto und escribed bacillus Bacterium monocytogenes (n.sp.). J. Pathol. Bacteriol., 1926, vol. 29, no. 4, pp. 407–439. doi: 10.1002/path.1700290409
  120. NicAogain K., O’Byrne C.P. The role of stress and stress adaptations in determining the fate of the bacterial pathogen Listeria monocytogenes in the food Chain. Front. Microbiol., 2016, vol. 7: 1865. doi: 10.3389/fmicb.2016.01865
  121. Nightingale K., Windham K., Wiedmann M. Evolution and molecular phylogeny of Listeria monocytogenes isolated from human and animal listeriosis cases and foods. J. Bacteriol., 2005, vol. 187, no. 16, pp. 5537–5551. doi: 10.1128/JB.187.16.5537-5551.2005
  122. Norton D.M. Polimerase chain reaction-based methods for detection of Listeria monocytogenes: Toward real-time screening for food and environmental samples. J. AOAC Int., 2002, vol. 85, no. 2, pp. 505–515. doi: 10.1093/jaoac/85.2.505
  123. Nunez-Montero K., Leclercq A., Moura A., Vales G., Peraza J., Pizarro-Cerda J., Lecuit M. Listeria costaricensis sp. nov. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2018, vol. 68, pp. 844–850. doi: 10.1099/ijsem.0.002596
  124. O’Driscoll B., Gahan C.G.M., Hill C. Adaptive acid tolerance response in Listeria monocytogenes: isolation of an acid-tolerant mutant which demonstrates increased virulence. Appl. Environ. Microbiol., 1996, vol. 62, no. 5, pp. 1693–1698. doi: 10.1128/aem.62.5.1693-1698.1996
  125. Ojima-Kato T., Yamamoto N., Takahashi H., Tamura H. Matrix-assisted Laser Desorption Ionization-Time of Flight Mass Spectrometry (MALDI-ToF MS) Can Precisely Discriminate the Lineages of Listeria monocytogenes and Species of Listeria. PLoS One, 2016, vol. 11, no. 7: e0159730. doi: 10.1371/journal.pone.0159730
  126. Orsi R.H., Wiedmann M. Characteristics and distribution of Listeria spp., including Listeria species newly described since 2009. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2016, vol. 100, no. 12, pp. 5273–5287. doi: 10.1007/s00253-016-7552-2
  127. Osanai A., Li S.H., Asano K., Sashinami H., Hu D.L., Nakane A. Fibronectin-binding protein, FbpA, is the adhesin responsable for pathogenesis of Listeria monocytogenes infection. Microbiol. Immunol., 2013, vol. 57, pp. 253–262. doi: 10.1111/1348-0421.12030
  128. Papagianni M. Ribosomally synthesized peptides with antimicrobial properties: biosynthesis, structure, function and applications. Biotechnol. Adv., 2003, vol. 21, no. 6, pp. 465–499. doi: 10.1016/s0734-9750(03)00077-6
  129. Paramithiotis S., Hadjilouka A., Drosinos E.H. Listeria Pathogenicity Island 1. Structure and function. In: Listeria Monocytogenes: food sources, prevalence and management strategies. Ed. E.C. Hambrick, 2014, pp. 265–282.
  130. Patange A., O’Byrne C., Boehm D., Cullen P.J., Keener K., Bourke P. The effect of atmospheric cold plasma on bacterial stress responses and virulence using Listeria monocytogenes knockout mutants. Front. Microbiol., 2019, vol. 10: 2841. doi: 10.3389/fmicb.2019.02841
  131. Poimenidou S.V., Dalmasso M., Papadimitriou K., Fox E.M., Skandamis P.N., Jordan K. Virulence Gene Sequencing Highlights Similarities and Differences in Sequences in Listeria monocytogenes Serotype 1/2a and 4b Strains of Clinical and Food Origin From 3 Different Geographic Locations. Front. Microbiol., 2018, vol. 9: 1103. doi: 10.3389/fmicb.2018.01103
  132. Quereda J.J., Nahori M.A., Meza-Torres J., Sachse M., Titos-Jiménez P., Gomez-Laguna J., Dussurget O., Cossart P., Pizarro-Cerdá J. Listeriolysin S is a streptolysin S-like virulence factor that targets exclusively prokaryotic cells in vivo. mBio, 2017, vol. 8, no. 2. doi: 10.1128/mbio.00259-17
  133. Rae C.S., Geissler A., Adamson P.C., Portnoy D.A. Mutations of the Listeria monocytogenes peptidoglycan N-deacetylase and O-acetylase result in enhanced lysozyme sentivity, bacteriolysis, and hyper induction of innate immune pathways. Infect. Immun., 2011, vol. 79, no. 9, pp. 3596–3606. doi: 10.1128/IAI.00077-11
  134. Raveneau J., Geoffroy C., Beretti J.L., Gaillard J.L., Alouf J.E., Berche P. Reduced virulence of a Listeria monocytogenes phospholipase-deficient mutant obtained by transposon insertion into the zinc metalloprotease gene. Infect. Immun., 1992, vol. 60, pp. 916–921. doi: 10.1128/iai.60.3.916-921.1992
  135. Réglier-Poupet H., Pellegrini E., Charbit A., Berche P. Identification of LpeA, a PsaA-like membrane protein that promotes cell entry by Listeria monocytogenes. Infect. Immun., 2003, vol. 71, pp. 474–482. doi: 10.1128/IAI.71.1.474-482.2003
  136. Réglier-Poupet H., Frehel C., Dubail I., Beretti J.C., Berche P., Charbit A., Raynaud C. Maturation of lipoproteins by type II signal peptidase is required for phagosomal escape of Listeria monocytogenes. J. Biol. Chem., 2003, vol. 278, no. 49, pp. 49469–49477. doi: 10.1074/jbc.M307953200
  137. Ripio M.T., Dominguez-Bernal G., Suarez M., Brehm K., Berche P., Vázquez-Boland J.-A. Transcriptional activation of virulence genes in wild-type strains of Listeria monocytogenes in response to a change in extracellular medium composition. Res. Microbiol., 1996, vol. 147, no. 5, pp. 371–384. doi: 10.1016/0923-2508(96)84712-7
  138. Ryser E.T., Marth E.H. Listeria, listeriosis and food safety. 3rd ed. Ed. E.T. Ryser. New York: Marcel Dekker Inc, 2007, 896 р. doi: 10.1201/9781420015188
  139. Rocha P.R., Dalmasso A., Grattarola C., Casalone C., Del Piero F., Bottero M.T., Capucchio M.T. Atypical cerebral listeriosis associated with Listeria innocua in a beef bull. Res. Vet. Sci., 2013, vol. 94, no. 1, pp. 111–114. doi: 10.1016/j.rvsc.2012.07.017
  140. Rocourt J., Hof H., Schrettenbrunner A., Malinverni R., Bille J. Acute purulent Listeria seeligeri meningitis in an immunocompetent adult. Schweiz. Med. Wochenschr., 1986, vol. 116, no. 8, pp. 248–251
  141. Ruiz-Llacsahuanga B., Hamilton A., Zaches R., Hanrahan I., Critzer F. Prevalence of Listeria Species on Food Contact Surfaces in Washington State Apple Packinghouses. Appl. Environ. Microbiol., 2021, vol. 87, no. 9: e02932-20. doi: 10.1128/AEM.02932-20
  142. Salimnia H., Patel D., Lephart P.R., Fairfax M.R., Chandrasekar P.H. Listeria grayi: vancomycin-resistant, gram-positive rod causing bacteremia in a stem cell transplant recipient. Transpl. Infect. Dis., 2010, vol. 12, no. 6, pp. 526–528. doi: 10.1111/j.1399-3062.2010.00539.x
  143. Schlüter D., Domann E., Buck C., Hain T., Hof H., Chakraborty T., Deckert-Schlüter M. Phosphatidylcholine-specific phospholipase C from Listeria monocytogenes is an important virulence factor in murine cerebral listeriosis. Infect. Immun., 1998, vol. 66, no. 12, pp. 5930–5938. doi: 10.1128/iai.66.12.5930-5938.1998
  144. Shen Y., Liu Y., Zhang Y., Cripe J., Conway W., Meng J., Hall G., Bhagwat A.A. Isolation and characterization of Listeria monocytogenes isolates from readytoeat foods in Florida. Appl. Environ. Microbiol., 2006, vol. 72, no. 7, pp. 5073–5076. doi: 10.1128/aem.00435-06
  145. Somers E.B., Wong A.C.L. Efficaly of two cleaning and sanitizing combinations on Listeria monocytogenes biofilms formed at low temperature on a variety of materials on the presence of ready-to-eat meat residue. J. Foot Prot., 2004, vol. 76, no. 10, pp. 2218–2229. doi: 10.4315/0362-028x-67.10.2218
  146. Stülke J., Hillen W. Regulation of Carbon Catabolism in Bacillus Species. Annu. Rev. Microbiol., 2000, vol. 54, no. 1, pp. 849–880. doi: 10.1146/annurev.micro.54.1.849
  147. Sue D., Fink D., Wiedmann M., Boor K.J. σB-dependent gene induction and expression in Listeria monocytogenes during osmotic and acid stress conditions simulating the intestinal environment. Microbiology, 2004, vol. 150, pt 11, pp. 3843–3855. doi: 10.1099/mic.0.27257-0
  148. Swaminathan B., Gerner-Smidt P. The epidemiology of human listeriosis. Microbes Infect., 2007, vol. 9, no. 10, pp. 1236–1243. doi: 10.1016/j.micinf.2007.05.011
  149. Travier L., Guadagnini S., Gouin E., Dufour A., Chenal-Francisque V., Cossart P., Olivo-Marin J.-Ch., Ghigo J.-M., Disson O., Lecuit M. ActA promotes Listeria monocytogenes aggregation, intestinal colonization and carriage. PLoS Pathog., 2013, vol. 9, no. 1: e1003131. doi: 10.1371/journal.ppat.1003131
  150. Vázquez-Boland J.A., Kuhn M., Berche P., Chakraborty T., Domínguez-Bernal G., Goebel W., González-Zorn B., Wehland J., Kreft J. Listeria pathogenesis and molecular virulence determinants. J. Clin. Microbiol. Rev., 2001, vol. 14, no. 3, pp. 584–640. doi: 10.1128/CMR.14.3.584-640.2001
  151. Vilchis-Rangel R.E., Espinoza-Mellado M.D.R., Salinas-Jaramillo I.J., Martinez-Pena M.D., Rodas-Suarez O.R. Association of Listeria monocytogenes LIPI-1 and LIPI-3 marker llsX with invasiveness. Curr. Microbiol., 2019, vol. 76, no. 5, pp. 637–643. doi: 10.1007/s00284-019-01671-2
  152. Weller D., Andrus A., Wiedmann M., Den Bakker H.C. Listeria booriae sp. nov. and Listeria newyorkensis sp. nov., from food processing environments in the USA. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2015, vol. 65, pt 1, pp. 286–292. doi: 10.1099/ijs.0.070839-0
  153. Williams D., Castleman J., Lee Ch., Mote B., Smith M.A. Risk of fetal mortality after exposure to Listeria monocytogenes based on dose-response data from pregnant guinea pigs and primates. Risk Anal., 2009, vol. 29, no. 11, pp. 1495–1505. doi: 10.1111/j.1539-6924.2009.01308.x
  154. Zhang Y., Dong S., Chen H., Chen J., Zhang J., Zhang Z., Yang Y., Xu Z., Zhan L., Mei L. Prevalence, Genotypic Characteristics and Antibiotic Resistance of Listeria monocytogenes From Retail Foods in Bulk in Zhejiang Province, China. Front. Microbiol., 2019, vol. 10: 1710. doi: 10.3389/fmicb.2019.01710

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2024 Derevyanchenko I.A., Kraeva L.A.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».