Фенотипический и генетический анализ штаммов Klebsiella pneumoniae, выделенных от больных внебольничной пневмонией в г. Ростове-на-Дону в 2021–2023 гг.
- Авторы: Рыкова В.А.1, Подладчикова О.Н.1, Анисимова А.С.1, Аронова Н.В.1, Водопьянов А.С.1, Темякова С.Ю.1, Гудуева Е.Н.1
-
Учреждения:
- ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
- Выпуск: Том 14, № 6 (2024)
- Страницы: 1104-1116
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- URL: https://journals.rcsi.science/2220-7619/article/view/283031
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-PAG-17627
- ID: 283031
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Введение. В статье представлено исследование 33 штаммов Klebsiella pneumoniae, выделенных в Ростове-на-Дону в 2021–2023 гг. от пациентов с внебольничной пневмонией. Штаммы были проанализированы в соответствии с признаками, которые, как известно, связаны с гипервирулентностью. Проведено сравнение штаммов по фенотипическим (сидерофорная активность, гипермукоидность, чувствительность к бактериофагу) и генотипическим (плазмидный профиль, наличие генов сидерофоров и rmpA и rmpA2) свойствам. Материалы и методы. При проведении исследования были использованы следующие методы: определение чувствительности к бактериофагу, гипермукоидности с помощью «стринг-теста», сидерофорной активности на среде, содержащей хромазурол S, содержания плазмид и полногеномное секвенирование. Результаты. Секвенирование 11 штаммов, различающихся по мукоидности, показало, что все гипермукоидные штаммы содержали rmpA, в то время как rmpA2 либо отсутствовал, либо содержал одиночные инсерции или делеции нуклеотидов, что приводило к сдвигу рамки считывания. Те же мутации в гене rmpA2 наблюдались у немукоидных штаммов, у них отсутствовал rmpA. Штаммы отличались по набору из четырех сидерофорных кластеров, количество которых не коррелировало с сидерофорной активностью. Отсутствие у штаммов, не обладающих гипермукоидностью, rmpA и генов биосинтеза салмохелина при сохранении гена его рецептора указывает на наличие делеций, приводящих к потере гипермукоидности. Исследование 33 штаммов показало, что они способны диссоциировать, образуя колонии двух типов: темные и светлые, которые наблюдались как у гипермукоидных, так и у немукоидных штаммов. Темные клоны гипермукоидных штаммов это свойство сохраняли, в то время как светлые клоны его утрачивали. Оба варианта немукоидных штаммов сохраняли свойство немукоидности. Анализ разных 17 штаммов показал, что их темные клоны обладали сниженной сидерофорной активностью и чувствительностью к бактериофагу по сравнению со светлыми. Геномы разных клонов не отличались по сидерофорным кластерам, но rmpA был обнаружен только в темных клонах гипермукоидных штаммов. У немукоидных штаммов этот ген отсутствовал в обоих клонах, в то время как различия в сидерофорной активности и чувствительности к бактериофагу сохранялись. Заключение. Гипермукоидность K. pneumoniae связана с наличием rmpA, в то время как rmpA2 не является обязательным. Различия клонов по морфологии колоний, сидерофорной активности и чувствительности к бактериофагу не связаны с rmpA/rmpA2, а скорее обусловлены пока неизвестным механизмом.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Виолетта Александровна Рыкова
ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Автор, ответственный за переписку.
Email: violletryk@gmail.com
к.б.н., научный сотрудник лаборатории природно-очаговых и зоонозных инфекций
Россия, г. Ростов-на-ДонуО. Н. Подладчикова
ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Email: violletryk@gmail.com
к.х.н., старший научный сотрудник лаборатории природно-очаговых и зоонозных инфекций
Россия, г. Ростов-на-ДонуА. С. Анисимова
ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Email: violletryk@gmail.com
младший научный сотрудник лаборатории природно-очаговых и зоонозных инфекций
Россия, г. Ростов-на-ДонуН. В. Аронова
ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Email: violletryk@gmail.com
к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории природно-очаговых и зоонозных инфекций
Россия, г. Ростов-на-ДонуА. С. Водопьянов
ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Email: violletryk@gmail.com
к.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии природно-очаговых и зоонозных инфекций
Россия, г. Ростов-на-ДонуС. Ю. Темякова
ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Email: violletryk@gmail.com
младший научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии природно-очаговых и зоонозных инфекций
Россия, г. Ростов-на-ДонуЕ. Н. Гудуева
ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Email: gudueva_en@antiplague.ru
младший научный сотрудник лаборатории «Коллекция патогенных микроорганизмов»
Россия, г. Ростов-на-ДонуСписок литературы
- Агеевец В.A., Агеевец И.В., Сидоренко С.В. Конвергенция множественной резистентности и гипервирулентности у Klebsiella pneumoniae // Инфекция и иммунитет. 2022. Т. 12, № 3. C. 450–460. [Ageevets V.A., Ageevets I.V., Sidorenko S.V. Convergence of multiple resistance and hypervirulence in Klebsiella pneumonia. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2022, vol. 12, no. 3, pp. 450–460. (In Russ.)] doi: 10.15789/2220-7619-COM-1825
- Анисимова А.С., Павлович Н.В., Аронова Н.В., Цимбалистова М.В., Гудуева Е.Н., Пасюкова Н.И., Теплякова Е.Д., Носков А.К. Биологические свойства и антибиотикорезистентность Klebsiella pneumoniae и ее роль в этиологической структуре возбудителей внебольничных пневмоний // Антибиотики и химиотерапия. 2023. Т. 68, № 5–6. С. 11–18. [Anisimova A.S., Pavlovich N.V., Aronova N.V., Tsimbalistova M.V., Gudueva E.N., Pasyukova N.I., Teplyakova E.D., Noskov A.K. Biological properties and antibiotic resistance of Klebsiella pneumonia and its role in the etiological structure of community-acquired pneumonia pathogens. Antibiotiki i khimioterapiya = Antibiotics and Chemotherapy, 2023, vol. 68 (5–6), pp. 11–18. (In Russ.)] doi: 10.37489/0235-2990-2023-68-5-6-11-18
- Водопьянов А.С., Трухачев А.Л., Подладчикова О.Н., Писанов Р.В. СontigSearcher — программа для анализа результатов полногеномного секвенирования, определение наличия последовательностей различных генов в контигах, полученных при секвенировании, выявления INDEL-мутаций. Свидетельство о государственной регистрации программы для ЭВМ № 2018611348 от 01.02.2018. [Vodopyanov A.S., Trukhachev A.L., Podladchikova O.N., Pisanov R.V. ContigSearcher — a program for analyzing the results of whole-genome sequencing, determining the presence of sequences of various genes in the contigues obtained during sequencing, and detecting INDEL mutations. Certificate of state registration of the computer program No. 2018611348 dated 02/01/2018. (In Russ.)]
- Кузнецова Д.А., Водопьянов А.С., Подладчикова О.Н., Рыкова В.А., Трухачев А.Л. «SiderophoreAnalyzer» — программа для выявления генов, отвечающих за синтез сидерофоров, в полногеномных нуклеотидных последовательностях. Свидетельство о государственной регистрации программы для ЭВМ № 2022680676 от 03.08.2022 г. [Kuznetsova D.A., Vodopyanov A.S., Podladchikova O.N., Rykova V.A., Trukhachev A.L. «SiderophoreAnalyzer» — a program for identifying genes responsible for the synthesis of siderophores in whole-genome nucleotide sequences. Certificate of state registration of the computer program No. 2022680676 dated 08/03/2022. (In Russ.)]
- Методические указания для работы на приборах серии flex компании Bruker Daltonics. Прямое белковое профилирование. М., 2010. [MU for operation on Bruker Daltonics flex series devices “Direct protein profiling”. Moscow, 2010. (In Russ.)]
- Использование метода времяпролетной масс-спектрометрии с матрично-активированной лазерной десорбцией/ионизацией (MALDI-ToF MS) для индикации и идентификации возбудителей I–II групп патогенности: методические указания МУК 4.2.0089-14. [The use of time-of-flight mass spectrometry with matrix-assisted laser desorption/ionization (MALDI-ToF MS) for the indication and identification of pathogens of pathogenicity groups I–II: Methodological guidelines MUC 4.2.0089-14. (In Russ.)]
- Чеботарь И.В., Бочарова Ю.А., Подопригора И.В., Шагин Д.А. Почему Klebsiella pneumoniae становится лидирующим оппортунистическим патогеном // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2020. Т. 22, № 1. С. 4–19. [Chebotar I.V., Bocharova Yu.A., Podoprigora I.V., Shagin D.A. The reasons why Klebsiella pneumoniae becomes a leading opportunistic pathogen. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya = Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy, 2020, vol. 22, no. 1, pp. 4–19. (In Russ.)] doi: 10.36488/cmac.2020.1.4-19
- Bialek-Davenet S., Criscuolo A., Ailloud F., Passet V., Jones L., Delannoy-Vieillard A.S., Garin B., Le Hello S., Arlet G., Nicolas-Chanoine M.H., Decré D., Brisse S. Genomic definition of hypervirulent and multidrug-resistant Klebsiella pneumoniae clonal groups. Emerg. Infect. Dis., 2014, vol. 20, no. 11, рр. 1812–1820. doi: 10.3201/eid2011.140206
- Dai P., Hu D. The making of hypervirulent Klebsiella pneumoniae. J. Clin. Lab. Anal., 2022, vol. 36, no. 12: e24743. doi: 10.1002/jcla.24743
- Ernst C.M., Braxton J.R., Rodriguez-Osorio C.A., Zagieboylo A.P., Li L., Pironti A., Manson A.L., Nair A.V., Benson M., Cummins K., Clatworthy A.E., Earl A.M., Cosimi L.A., Hung D.T. Adaptive evolution of virulence and persistence in carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae. Nat. Med., 2020, vol. 26, pp. 705–711. doi: 10.1038/s41591-020-0825-4
- Guo Y., Wang S., Zhan L., Jin Y., Duan J., Hao Z., Lv J., Qi X., Chen L., Kreiswirth B.N., Wang L., Yu F. Microbiological and clinical characteristics of hypermucoviscous Klebsiella pneumoniae isolates associated with invasive infections in China. Front. Cell. Infect. Microbiol., 2017, vol. 7: 24. doi: 10.3389/fcimb.2017.00024
- Harada S., Aoki K., Yamamoto S., Ishii Y., Sekiya N., Kurai H., Furukawa K., Doi A., Tochitani K., Kubo K., Yamaguchi Y., Narita M., Kamiyama S., Suzuki J., Fukuchi T., Gu Y., Okinaka K., Shiiki S., Hayakawa K., Tachikawa N., Kasahara K., Nakamura T., Yokota K., Komatsu M., Takamiya M., Tateda K., Doi Y. Clinical and molecular characteristics of Klebsiella pneumoniae isolates causing bloodstream infections in Japan: occurrence of hypervirulent infections in health care. J. Clin. Microbiol., 2019, vol. 57, no. 11: e01206-19. doi: 10.1128/JCM.01206-19
- Holden V.I., Breen P., Houle S., Dozois C.M., Bachman M.A. Klebsiella pneumoniae siderophores induce inflammation, bacterial dissemination, and HIF-1a stabilization during pneumonia. mBio, 2016, vol. 7, no. 5: e01397-16. doi: 10.1128/mBio.01397-16
- Imai K., Ishibashi N., Kodana M., Tarumoto N., Sakai J., Kawamura T., Takeuchi S., Taji Y., Ebihara Y., Ikebuchi K., Murakami T., Maeda T., Mitsutake K., Maesaki S. Clinical characteristics in blood stream infections caused by Klebsiellapneumoniae, Klebsiella variicola, and Klebsiella quasipneumoniae: a comparative study, Japan, 2014–2017. BMC Infect. Dis., 2019, vol. 19, no. 1: 946. doi: 10.1186/s12879-019-4498-x
- Jia X., Zhu Y., Jia P., Liu X., Yu W., Li X., Xu Y., Yang Q. Emergence of a superplasmid coharboring hypervirulence and multidrug resistance genes in Klebsiella pneumoniae poses new challenges to public health. Microbiol. Spectr., 2022, vol. 10, no. 6: e0263422. doi: 10.1128/spectrum.02634-22
- Kado C.I., Liu S.T. Rapid procedure for detection and isolation of large and small plasmids. J. Bacteriol., 1981, vol. 145, no. 3, pp. 1365–1373. doi: 10.1128/jb.145.3.1365-1373.1981
- Khadka S., Ring B.E., Walker R.S., Krzeminski L.R., Pariseau D.A., Hathaway M., Mobley H.L.T., Mike L.A. Urine-mediated suppression of Klebsiella pneumoniae mucoidy is counteracted by spontaneous Wzc variants altering capsule chain length. mSphere., 2023, vol. 8, no. 5: e0028823. doi: 10.1128/msphere.00288-23
- Lam M.M.C., Wyres K.L., Judd L.M., Wick R.R., Jenney A., Brisse S., Holt K.E. Tracking key virulence loci encoding aerobactin and salmochelin siderophore synthesis in Klebsiella pneumonia. Genome Med., 2018, vol. 10, no. 1: 77. doi: 10.1186/s13073-018-0587-5
- Lawlor M.S., O’Connor C., Miller V.L. Yersiniabactin is a virulence factor for Klebsiella pneumoniae during pulmonary infection. Infect Immun., 2007, vol. 75, no. 3, pp. 1463–1472. doi: 10.1128/IAI.00372-06
- Mike L.A., Stark A.J., Forsyth V.S., Vornhagen J., Smith S.N., Bachman M.A., Mobley H.L.T. A systematic analysis of hypermucoviscosity and capsule reveals distinct and overlapping genes that impact Klebsiella pneumoniae fitness. PLoS Pathog., 2021, vol. 17, no. 3: e1009376. doi: 10.1371/journal.ppat.1009376
- Namikawa H., Niki M., Niki M., Oinuma K.I., Yamada K., Nakaie K., Tsubouchi T., Tochino Y., Takemoto Y., Kaneko Y., Kakeya H., Shuto T. Siderophore production as a biomarker for Klebsiella pneumoniae strains that cause sepsis: а pilot study. J. Formos Med. Assoc., 2022, vol. 121, no. 4, pp. 848–855. doi: 10.1016/j.jfma.2021.06.027
- Nucci A., Janaszkiewicz J., Rocha E.P.C., Rendueles O. Emergence of novel non-aggregative variants under negative frequency-dependent selection in Klebsiella variicola. Microlife, 2023, vol. 4: uqad038. doi: 10.1093/femsml/uqad038
- Russo T.A., Marr C.M. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae. Clin. Microbiol. Rev., 2019, vol. 32, pp. 1–42. doi: 10.1128/CMR.00001-19
- Russo T.A., Olson R., Macdonald U., Metzger D., Maltese L.M., Drake E.J., Gulick A.M. Aerobactin mediates virulence and accounts for increased siderophore production under iron-limiting conditions by hypervirulent (hypermucoviscous) Klebsiella pneumoniae. Infect. Immun., 2014, vol. 82, no. 6, pp. 2356–2367. doi: 10.1128/IAI.01667-13
- Russo T.A., Olson R., Fang C.T., Stoesser N., Miller M., MacDonald U., Hutson A., Barker J.H., La Hoz R.M., Johnson J.R. Identification of biomarkers for differentiation of hypervirulent Klebsiella pneumoniae from classical K. pneumoniae. J. Clin. Microbiol., 2018, vol. 56, no. 9: e00776-18. doi: 10.1128/JCM.00776-18
- Russo T.A., Shon A.S., Beanan J.M., Olson R., MacDonald U., Pomakov A.O., Visitacion M.P. Hypervirulent K. pneumoniae secretes more and more active iron-acquisition molecules than “classical” K. pneumoniae thereby enhancing its virulence. PLoS One, 2011, vol. 6, no. 10: e26734. doi: 10.1371/journal.pone.0026734
- Schwyn B., Neilands J.B. Universal chemical assay for the detection and determination of siderophores. Anal. Biochem., 1987, vol. 160, no. 1, pp. 47–56. doi: 10.1016/0003-2697(87)90612-9
- Shukla S., Joshi P., Trivedi P., Akinwotu O., Gajjar D. Genomic islands in Klebsiella pneumoniae. In: Microbial genomic islands in adaptation and pathogenicity. Eds: Mani I., Singh V., Alzahrani K.J., Chu D.T. Springer, Singapore, 2023, pp. 255–278. doi: 10.1007/978-981-19-9342-8_13
- Walker K.A., Miller V.L. The intersection of capsule gene expression, hypermucoviscosity and hypervirulence in Klebsiella pneumoniae. Curr. Opin. Microbiol., 2020, vol. 54, pp. 95–102. doi: 10.1016/j.mib.2020.01.006
- Walker K.A., Miner T.A., Palacios M., Trzilova D., Frederick D.R., Broberg C.A., Sepúlveda V.E., Quinn J.D., Miller V.L., Goldberg J.B. A Klebsiella pneumoniae regulatory mutant has reduced capsule expression but retains hypermucoviscosity. mBio, 2019, vol. 10: e00089-19. doi: 10.1128/mBio.00089-19
- Walker K.A., Treat L.P., Sepúlveda V.E., Miller V.L., Heran Darwin K. The small protein RmpD drives hypermucoviscosity in Klebsiella pneumoniae. mBio, 2020, vol. 11: e01750-20. doi: 10.1128/mBio.01750-20
- Zhu J., Wang T., Chen L., Du H. Virulence factors in hypervirulent Klebsiella pneumonia. Front. Microbiol., 2021, vol. 12, pp. 1–14. doi: 10.3389/fmicb.2021.642484
Дополнительные файлы
