Особенности фенотипа NK-клеток у больных хроническим вирусным гепатитом С в зависимости от генотипа вируса
- Авторы: Савченко А.А.1, Тихонова Е.П.2, Анисимова А.А.3, Кудрявцев И.В.4,5, Беленюк В.Д.1, Борисов А.Г.1
-
Учреждения:
- ФГБНУ ФИЦ Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук, обособленное подразделение НИИ медицинских проблем Севера
- ФГБОУ ВО Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого Минздрава России
- Краевое государственное бюджетное учреждение здравоохранения «Красноярская межрайонная клиническая больница скорой медицинской помощи имени Н.С.Карповича»
- ФГБНУ Институт экспериментальной медицины
- ФГБОУ ВО Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова
- Выпуск: Том 13, № 4 (2023)
- Страницы: 663-674
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- URL: https://journals.rcsi.science/2220-7619/article/view/158873
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-HCV-8047
- ID: 158873
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Элиминация вируса гепатита С (ВГС), вызванная действием препаратов прямого противовирусного действия (ПППВД), влияет на изменение фенотипа и, соответственно, функциональную активность NK-клеток. Однако имеющиеся в литературе данные весьма противоречивы. Целью настоящего исследования было изучение особенностей изменения фенотипа NK-клеток (с учетом субпопуляционного состава) после лечения больных хроническим вирусным гепатитом С (ХВГС) ПППВД в зависимости от генотипа ВГС. Материалы и методы. Обследовано 111 больных ХВГС и 21 здоровый человек в качестве контрольной группы. Диагноз ХВГС устанавливали на основании эпидемиологических и клинико-лабораторных данных при выявлении специфических серологических маркеров хронического гепатита С и РНК ВГС, включая генотипирование ВГС. Все 111 человек с ХВГС получали противовирусные препараты прямого действия (Софосбувир и Велпатасвир) в течение 12 недель. Изучение фенотипа NK-клеток крови проводили методом проточной цитометрии с использованием прямой иммунофлуоресценции цельной периферической крови с моноклональными антителами. Результаты. В крови больных ХВГС с различными генотипами ВГС до начала лечения ПППВД выявлено снижение количества цитокин-продуцирующих и увеличение количества цитотоксических NK-клеток. Дисбаланс цитотоксических клеток с высоким уровнем функциональной активности также был выявлен у больных ХВГС вне зависимости от генотипа ВГС. У пациентов с генотипами 1 и 3 ВГС наблюдалось достоверное увеличение NK-клеток с иммунорегуляторной активностью. Кроме того, у больных ВГС генотипов 1 и 3 выявлено увеличение количества NK-клеток, экспрессирующих гликогидролазу (CD38) и экто-5'-нуклеотидазу (CD73). Результатом выявленных нарушений в фенотипе NK-клеток у больных ХВГС было сохранение выраженной вирусной нагрузки, которая была максимальной при инфицированности генотипом 1 ВГС и минимальной у больных с генотипом 2 ВГС. Наиболее выраженные изменения фенотипического состава NK-клеток после лечения ДАД выявлены у больных ХВГС с генотипом 2 ВГС (нормализация субпопуляционного состава и количества NK-клеток, экспрессирующих CD8). Кроме того, только у больных c генотипом 2 ВГС после лечения наблюдалось повышение содержания дубль-негативных (по CD38 и CD73) NK-клеток в крови. У пациентов с генотипами 1 и 3 ВГС также наблюдалось улучшение состава NK-клеток с различными фенотипами после лечения ДАД, но эти изменения были минимальными. Выводы. Оценка особенностей изменения фенотипа NK-клеток при лечении в зависимости от генотипа имеет несомненную значимость и высокую актуальность. Полученные результаты обладают новизной и дополняют информацию об иммунопатогенезе ХВГС. Анализ фенотипов NK-клеток и их функциональной активности у пациентов с ХВГС может помочь в разработке новых методов лечения HCV-инфекции.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Андрей Анатольевич Савченко
ФГБНУ ФИЦ Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук, обособленное подразделение НИИ медицинских проблем Севера
Email: aasavchenko@yandex.ru
доктор медицинских наук, профессор, зав. лабораторией клеточно-молекулярной физиологии и патологии
Россия, КрасноярскЕлена Петровна Тихонова
ФГБОУ ВО Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого Минздрава России
Email: aasavchenko@yandex.ru
доктор медицинских наук, профессор, зав. кафедрой инфекционных болезней и эпидемиологии с курсом постдипломного образования курсом
Россия, КрасноярскАнна Александровна Анисимова
Краевое государственное бюджетное учреждение здравоохранения «Красноярская межрайонная клиническая больница скорой медицинской помощи имени Н.С.Карповича»
Email: aasavchenko@yandex.ru
врач инфекционного отделения
Россия, КрасноярскИгорь Владимирович Кудрявцев
ФГБНУ Институт экспериментальной медицины; ФГБОУ ВО Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова
Автор, ответственный за переписку.
Email: igorek1981@yandex.ru
кандидат биологических наук, зав. лабораторией клеточной иммунологии отдела иммунологии, доцент кафедры иммунологии
Россия, 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12; Санкт-ПетербургВасилий Дмитриевич Беленюк
ФГБНУ ФИЦ Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук, обособленное подразделение НИИ медицинских проблем Севера
Email: dyh.88@mail.ru
младший научный сотрудник лаборатории клеточно-молекулярной физиологии и патологии
Россия, КрасноярскАлександр Геннадьевич Борисов
ФГБНУ ФИЦ Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук, обособленное подразделение НИИ медицинских проблем Севера
Email: 2410454@mail.ru
кандидат медицинских наук, ведущий научный сотрудник лаборатории клеточно-молекулярной физиологии и патологии
Россия, КрасноярскСписок литературы
- Борисов А.Г., Савченко А.А., Кудрявцев И.В. Особенности иммунного реагирования при вирусных инфекциях // Инфекция и иммунитет. 2015. Т. 5, № 2. С. 148–156. [Borisov G.A., Savchenko A.A., Kudryavtsev I.V. Features of the immune response during viral infection. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2015, vol. 5, no. 2, pp. 148–156. (In Russ.)] doi: 10.15789/2220-7619-2015-2-148-156
- Борисов А.Г., Савченко А.А., Тихонова Е.П. Современные методы лечения вирусного гепатита C. Красноярск: НИИ медицинских проблем Севера, 2017. 74 с. [Borisov A.G., Savchenko A.A., Tikhonova E.P. Modern methods of treating viral hepatitis C. Krasnoyarsk: Research Institute of Medical Problems of the North, 2017. 74 p. (In Russ.)]
- Кудрявцев И.В., Субботовская А.И. Опыт измерения параметров иммунного статуса с использованием шестицветного цитофлуориметрического анализа // Медицинская иммунология. 2015. Т. 17, № 1. С. 19–26. [Kudryavtsev I.V., Subbo-tovskaya A.I. Application of six-color flow cytometric analysis for immune profile monitoring. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2015, vol. 17, no. 1, pp. 19–26. (In Russ.)] doi: 10.15789/1563-0625-2015-1-19-26
- Орлова С.Н., Басханова М.В. Эффективность противовирусной терапии хронического гепатита С у пациентов с недифференцированной дисплазией соединительной ткани // Эпидемиология и инфекционные болезни. 2019. № 2. С. 61–67. [Orlova S.N., Baskhanova M.V. Efficiency of antiviral therapy for chronic hepatitis c in patients with undifferentiated connective tissue dysplasia. Epidemiologiya i infektsionnye bolezni = Epidemiology and Infectious Diseases, 2019, no. 2, pp. 64–67. (In Russ.)] doi: 10.18565/epidem.2019. 2.61-67
- Щаницына С.Е., Бурневич Э.З., Никулкина Е.Н., Филатова А.Л., Моисеев С.В., Мухин Н.А. Факторы риска неблагоприятного прогноза хронического гепатита С // Терапевтический архив. 2019. Т. 91, № 2. С. 59–66. [Shchanitcyna S.E., Burnevich E.Z., Nikulkina E.N., Filatova A.L., Moiseev S.V., Mukhin N.A. Risk factors of unfavorable prognosis of chronic C. Terapevticheskiy arkhiv = Therapeutic Archive, 2019, vol. 91, no. 2, pp. 59–66. (In Russ.)] doi: 10.26442/00403660.2019.02.000082
- Южанинова С.В., Сайдакова Е.В. Феномен иммунного истощения // Успехи современной биологии. 2017. Т. 137, № 1. С. 70–83. [Yuzhaninova S.V., Saidakova E.V. Immune exhaustion. Uspekhi sovremennoy biologii = Advances in Modern Biology, 2017, vol. 137, no. 1, pp. 70–83. (In Russ.)]
- Abel A.M., Yang C., Thakar M.S., Malarkannan S. Natural killer cells: development, maturation, and clinical utilization. Front. Immunol., 2018, vol. 9, pp. 1869. doi: 10.3389/fimmu.2018.01869
- Anuforo O.U.U., Bjarnarson S.P., Jonasdottir H.S., Giera M., Hardardottir I., Freysdottir J. Natural killer cells play an essential role in resolution of antigen-induced inflammation in mice. Mol. Immunol., 2018, vol. 93, pp. 1–8. doi: 10.1016/ j.molimm.2017.10.019
- Badry A., Jaspers V.L.B., Waugh C.A. Environmental pollutants modulate RNA and DNA virus-activated miRNA-155 expression and innate immune system responses: Insights into new immunomodulative mechanisms. J. Immunotoxicol., 2020, vol. 17, no. 1, pp. 86–93. doi: 10.1080/1547691X. 2020.1740838
- Ben A.J., Neumann C.R., Mengue S.S. The brief medication questionnaire and Morisky-Green test to evaluate medication adherence. Rev. Saude Publica, 2012, vol. 46, no. 2, pp. 279–289. doi: 10.1590/s0034-89102012005000013
- Cichocki F., Grzywacz B., Miller J.S. Human NK cell development: one road or many? Front. Immunol., 2019, vol. 10: 2078. doi: 10.3389/fimmu. 2019.02078
- Deng X., Terunuma H. Harnessing NK cells to control metastasis. Vaccines (Basel), 2022, vol. 10, no. 12: 2018. doi: 10.3390/vaccines10122018
- Eldeeb M.K., Magour G.M., Bedair R.N., Shamseya M.M., Hammouda M.A. Study of Dickkopf-1 (DKK-1) in patients with chronic viral hepatitis C-related liver cirrhosis with and without hepatocellular carcinoma. Clin. Exp. Hepatol., 2020, vol. 6, no. 2, pp. 85–91. doi: 10.5114/ceh.2020.95831
- European Association for the Study of the Liver. Recommendations on Treatment of Hepatitis C 2018. J. Hepatol., 2018, vol. 69, no. 2, pp. 461–511. doi: 10.1016/j.jhep.2018.03.026
- European Association for the Study of the Liver. Recommendations on Treatment of Hepatitis C 2016. J. Hepatol., 2017, vol. 66, no. 1, pp. 153–194. doi: 10.1016/j.jhep.2016.09.001
- Fan R., Que W., Liu Z., Zheng W., Guo X., Liu L., Xiao F. Single-cell mapping reveals dysregulation of immune cell populations and VISTA+ monocytes in myasthenia gravis. Clin. Immunol., 2022, vol. 245: 109184. doi: 10.1016/j.clim.2022.109184
- Gao Z., Wang L., Song Z., Ren M., Yang Y., Li J., Shen K., Li Y., Ding Y., Yang Y., Zhou Y., Wei C., Gu J. Intratumoral CD73: an immune checkpoint shaping an inhibitory tumor microenvironment and implicating poor prognosis in Chinese melanoma cohorts. Front. Immunol., 2022, vol. 13: 954039. doi: 10.3389/fimmu.2022.954039
- Geng J., Raghavan M. CD8αα homodimers function as a coreceptor for KIR3DL1. Proc. Natl Acad. Sci. USA, 2019, vol. 116, no. 36, pp. 17951–17956. doi: 10.1073/pnas.1905943116
- Hashemi E., Malarkannan S. Tissue-resident NK cells: development, maturation, and clinical relevance. Cancers (Basel), 2020, vol. 12, no. 6: 1553. doi: 10.3390/cancers12061553
- Hughes T., Briercheck E.L., Freud A.G., Trotta R., McClory S., Scoville S.D., Keller K., Deng Y., Cole J., Harrison N., Mao C., Zhang J., Benson D.M., Yu J., Caligiuri M.A. The transcription factor AHR prevents the differentiation of a stage 3 innate lymphoid cell subset to natural killer cells. Cell. Rep., 2014, vol. 8, no. 1, pp. 150–162. doi: 10.1016/j.celrep.2014.05.042
- Jiang H.J., Wang X.X., Luo B.F., Cong X., Jin Q., Qin H., Zhang H.Y., Kong X.S., Wei L., Feng B. Direct antiviral agents upregulate natural killer cell potential activity in chronic hepatitis C patients. Clin. Exp. Med., 2019, vol. 19, no. 3, pp. 299–308. doi: 10.1007/s10238-019-00564-9
- Kudryavtsev I., Rubinstein A., Golovkin A., Kalinina O., Vasilyev K., Rudenko L., Isakova-Sivak I. Dysregulated immune responses in SARS-CoV-2-infected patients: a comprehensive overview. Viruses, 2022, vol. 14, no. 5: 1082. doi: 10.3390/v14051082
- Lugli E., Marcenaro E., Mavilio D. NK cell subset redistribution during the course of viral infections. Front. Immunol., 2014, vol. 5: 390. doi: 10.3389/fimmu.2014.00390
- Matos J., Paparo F., Bacigalupo L., Cenderello G., Mussetto I., De Cesari M., Bernardi S.P., Cevasco L., Forni G.L., Cassola G., Rollandi G.A. Noninvasive liver fibrosis assessment in chronic viral hepatitis C: agreement among 1D transient elastography, 2D shear wave elastography, and magnetic resonance elastography. Abdom. Radiol. (NY), 2019, vol. 44, no. 12, pp. 4011–4021. doi: 10.1007/s00261-019-02295-7
- McKinney E.F., Cuthbertson I., Harris K.M., Smilek D.E., Connor C., Manferrari G., Carr E.J., Zamvil S.S., Smith K.G.C. A CD8+ NK cell transcriptomic signature associated with clinical outcome in relapsing remitting multiple sclerosis. Nat. Commun., 2021, vol. 12, no. 1: 635. doi: 10.1038/s41467-020-20594-2
- Michel T., Poli A., Cuapio A., Briquemont B., Iserentant G., Ollert M., Zimmer J. Human CD56bright NK cells: an update. J. Immunol., 2016, vol. 196, no. 7, pp. 2923–2931. doi: 10.4049/jimmunol.1502570
- Murad S., Michen S., Becker A., Füssel M., Schackert G., Tonn T., Momburg F., Temme A. NKG2C+ NK cells for immunotherapy of glioblastoma multiforme. Int. J. Mol. Sci., 2022, vol. 23, no. 10: 5857. doi: 10.3390/ijms23105857
- Neo S.Y., Yang Y., Record J., Ma R., Chen X., Chen Z., Tobin N.P., Blake E., Seitz C., Thomas R., Wagner A.K., Andersson J., de Boniface J., Bergh J., Murray S., Alici E., Childs R., Johansson M., Westerberg L.S., Haglund F., Hartman J., Lundqvist A. CD73 immune checkpoint defines regulatory NK cells within the tumor microenvironment. J. Clin. Invest., 2020, vol. 130, no. 3, pp. 1185–1198. doi: 10.1172/JCI128895
- Pallmer K., Oxenius A. Recognition and regulation of T cells by NK cells. Front. Immunol., 2016, vol. 7: 251. doi: 10.3389/fimmu.2016.00251
- Sarrazin C. The importance of resistance to direct antiviral drugs in HCV infection in clinical practice. J. Hepatol., 2016, vol. 64, no. 2, pp. 486–504. doi: 10.1016/j.jhep.2015.09.011
- Sutherland D.R., Ortiz F., Quest G., Illingworth A., Benko M., Nayyar R., Marinov I. High-sensitivity 5-, 6-, and 7-color PNH WBC assays for both Canto II and Navios platforms. Cytometry B Clin. Cytom., 2018, vol. 94, no. 4, pp. 637–651. doi: 10.1002/cyto.b.21626
- Tarbiah N.I., Alkhattabi N.A., Alsahafi A.J., Aljahdali H.S., Joharjy H.M., Al-Zahrani M.H., Sabban A.M., Alghamdi R.A., Balgoon M.J., Khalifa R.A. T cells immunophenotyping and CD38 overexpression as Hallmarks of the severity of COVID-19 and predictors of patients’ outcomes. J. Clin. Med., 2023, vol. 12, no. 2: 710. doi: 10.3390/jcm12020710
- Villalba M., Alexia C., Bellin-Robert A., Fayd’herbe de Maudave A., Gitenay D. Non-genetically improving the natural cytotoxicity of natural killer (NK) Cells. Front. Immunol., 2020, vol. 10: 3026. doi: 10.3389/fimmu.2019.03026
- Viola D., Dona A., Caserta E., Troadec E., Besi F., McDonald T., Ghoda L., Gunes E.G., Sanchez J.F., Khalife J., Martella M., Karanes C., Htut M., Wang X., Rosenzweig M., Chowdhury A., Sborov D., Miles R.R., Yazaki P.J., Ebner T., Hofmeister C.C., Forman S.J., Rosen S.T., Marcucci G., Shively J., Keats J.J., Krishnan A., Pichiorri F. Daratumumab induces mechanisms of immune activation through CD38+ NK cell targeting. Leukemia, 2021, vol. 35, no. 1, pp. 189–200. doi: 10.1038/s41375-020-0810-4
- Vujanovic L., Chuckran C., Lin Y., Ding F., Sander C.A., Santos P.M., Lohr J., Mashadi-Hossein A., Warren S., White A., Huang A., Kirkwood J.M., Butterfield L.H. CD56dim CD16– natural killer cell profiling in melanoma patients receiving a cancer vaccine and interferon-α. Front. Immunol., 2019, vol. 10: 14. doi: 10.3389/fimmu.2019.00014
- Wang S., Gao S., Zhou D., Qian X., Luan J., Lv X. The role of the CD39-CD73-adenosine pathway in liver disease. J. Cell. Physiol., 2021, vol. 236, no. 2, pp. 851–862. doi: 10.1002/jcp.29932
- Xie J., Xu B., Wei L., Huang C., Liu W. Effectiveness and safety of Sofosbuvir/Velpatasvir/Voxilaprevir as a hepatitis C virus infection salvage therapy in the real world: a systematic review and meta-analysis. Infect. Dis. Ther., 2022, vol. 11, no. 4, pp. 1661–1682. doi: 10.1007/s40121-022-00666-0
- Yu J., Mao H.C., Wei M., Hughes T., Zhang J., Park I.K., Liu S., McClory S., Marcucci G., Trotta R., Caligiuri M.A. CD94 surface density identifies a functional intermediary between the CD56bright and CD56dim human NK-cell subsets. Blood, 2010, vol. 115, no. 2, pp. 274–281. doi: 10.1182/blood-2009-04-215491
- Zhang X., Jiang Y., Li S., Bian D., Liu M., Kong M., Chen Y., Duan Z., Zheng S. Direct-acting antiviral-induced transient recovery of NK cells in early-stage treatment of chronic hepatitis C patients. J. Clin. Transl. Hepatol., 2022, vol. 10, no. 6, pp. 1117–1124. doi: 10.14218/JCTH.2021.00427
Дополнительные файлы
