ВИРУС КРАСНУХИ И ЕГО ТЕРАТОГЕННОЕ ДЕЙСТВИЕ. ПАТОГЕНЕЗ, КЛИНИКА, ДИАГНОСТИКА, ПРОФИЛАКТИКА СИНДРОМА ВРОЖДЕННОЙ КРАСНУХИ. Сообщение 1. Вирус краснухи: молекулярно-биологические свойства

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Резюме. Обзор посвящен вирусу краснухи, его тератогенному действию; описанию синдрома врожденной краснухи (СВК), современных методов диагностики и профилактики инфекции. Настоящее сообщение освещает современные представления о структурно-функциональной организации Rubella virus (род Rubivirus, семейство Togaviridae), этапах репродукции вируса.

Об авторах

А. Ю. Антипова

ФГУН «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера» Роспотребнадзора, Санкт-Петербург

Автор, ответственный за переписку.
Email: anti130403@mail.ru

младший научный сотрудник лаборатории детских вирусных инфекций

197101, Санкт-Петербург, ул. Мира, 14

Россия

Список литературы

  1. Анджапаридзе О.Г., Червонский Г.И. Краснуха. — Москва, 1975. — 102 с.
  2. Вирусология: пер. с англ. / Под ред. Б. Филда, Д. Найпа. — М.: Мир, 1989. — Т. 2. — 494 c.
  3. Гайдамович С.Я., Логинова Н.В. Общая и частная вирусология / Под ред. В.М. Жданова, С.Я. Гайдамович — М.: Медицина, 1986. — Т. 2. — С. 49–95.
  4. Лаврентьева И.Н. Штамм «Орлов-Д» для получения живой аттенуированной вакцины против краснухи: Дис. ... д-ра мед. наук. — СПб., 2009. — 328 с.
  5. Львов Д.К., Урываев Л.В. Тогавирусы (Togaviridae) // Медицинская вирусология: Руководство; под ред. Д.К. Львова. — М.: ООО «Медицинс кое информационное агентство», 2008. — С. 217–224.
  6. Львов Д.К., Урываев Л.В. Краснуха // Медицинская вирусология: Руководство; под. ред. Д.К. Львова. — М: ООО «Медицинское информационное агенство», 2008. — 447–450 с.
  7. Семериков В.В., Лаврентьева И.Н., Таточенко В.К., Нисевич Л.Л., Фельдблюм И.В., Краснуха. — Пермь–СПб.–М.: ИПК «Звезда», 2002. — 175 с.
  8. Atreya C.D., Kulkarni S., Mohan K.V. Rubella virus P90 associated with cytokinesis regulatory protein Citron-k kinase and the viral infection and constitutive expression of 90 protein both induce cell cycle arrest following S phase in the cell culture // Arch. Virol. — 2004. — Vol. 149, N 4. — P. 779–789.
  9. Bardeletti G., Tektoff J., Gautheron D. Rubella Virus maturation and production in two host cell systems // Intervirology. — 1979. — Vol. 11, N 2. — P. 97–103.
  10. Baron M.D., Ebel T., Suomalainen M. Intracellular transport of rubella virus structural proteins expressed from cloned cDNA // J. Gen. Virol. — 1992. — Vol. 73. — P. 1073–1086.
  11. Baron M.D., Forsell K. Oligomerization of the structural proteins of rubella virus // Virology. — 1991. — Vol. 185. — P. 811–819.
  12. Beatch M.D., Hobman T.C. Rubella virus capsid associates with host cell protein p32 and localizes to mitochondria // J. Virol. — 2000. — Vol. 74, N 12. — P. 5569–5576.
  13. Chaye H.H., Mauracher C.A., Tingle A.J., Gillam S. Cellular and humoral immune responses to rubella virus structural proteins E1, E2 and C // J. Clin. Virol. —1992. — Vol. 30, N 9. — P. 2323–2329.
  14. Chaye H.H., Chong P., Tripet B., Brush B., Gillam S. Localization of the virus neutralizing and hemagglutinin epitopes of E1 glycoprotein of rubella virus // Virology. — 1992. — Vol. 189. — P. 483–492.
  15. Chen M.H. Rubella v 15. virus capcid protein modulates viral genome replication and virus infectivity // J. Virol. — 2004. — Vol. 78, N 8. — P. 4314–4322.
  16. Clark D.M., Loo T.W., McDonald H., Gillam S. Expression of rubella virus cDNA coding for the structural proteins // Gene. — 1988. — Vol. 65. — P. 23–30.
  17. Clarke D.M., Loo T.W., Hui I., Chong P., Gillam S. Nucleotide sequence and in vitro expression of rubella virus 24S subgenomic messenger RNA encoding the structural proteins E1, E2 and C // Nucleic Acids Research. — 1987. — Vol. 15, N 7. — P. 3041–3056.
  18. Claus C., Hofmann J., Überla K., Liebert U.G. Rubella virus pseudotypes and cell-cell fusion assay as tools for functional analysis of the rubella virus E2 and E1 envelope glycoproteins // J. Gen. Virol. — 2006. — Vol. 87. — P. 3029–3037.
  19. Corboba P., Grutadauria S., Cuffini C., Zapata M. Neutralizing monoclonal antibody to the E1 glycoprotein epitopeof rubella virus mediates virus arrest in vero cells // Viral. Immunol. — 2000. — Vol. 13, N 1. — P. 83–92.
  20. Dominguez C., Wang C.Y., Frey T.K. Sequence of the genome RNA of Rubella virus: evidence for genetic rearrangement during togavirus evolution // Virology. — 1990. — N 177. — P. 225–238.
  21. Duncan R., Esmaili A., Law L., Bertholet S., Hobman T., Nakhasi H. RUBV capsid protein induces apoptosis in transfected RK 13 cells // Virology. — 2000. — Vol. 275. — P. 20–29.
  22. Fontana J., López-Iglesias C., Tzenh W.-P., Frey T.K., Fernández J.J., Risco C. Three-dimensional structure of Rubella virus factories // Virology. — 2010. — Vol. 405, N 2. — P. 579–591.
  23. Forng R.J., Frey T.K. Identification of the Rubella virus nonstructural proteins // Virology. — 1995. — Vol. 206. — P. 843–853.
  24. Forng R.J., Atreya C.D. Mutations in the retinoblastoma protein-binding LXCXE motif of rubella virus putative replicase affect virus replication // J. Gen. Virol. — 1999. — Vol. 80. — P. 327–332.
  25. Frey T.K. Molecular biology of RUBV // Adv. Virus Res. — 1994. — Vol. 44. — P. 69–160.
  26. Frey T.K., Marr L.D. Sequence of the region coding for virions proteins C and E2 and the carboxy terminus of the nonstructural proteins of rubella virus: comparison with alphaviruses // Gene. — 1988. — Vol. 62. — P. 85–99.
  27. Fundamental virology // Chief Edition B.N. Fields, D.M. Knipe. — N.Y., 1989. — Vol. 2. — P. 344–346.
  28. Garbutt M., Law L.M., Chan H., Horban T.C. Role of rubella virus domains in assembly of virus-like particles // J. Virol. — 1999. — Vol. 73. — P. 3524–3533.
  29. Hobman T.C., Gillam S. In vitro and in vivo expression of rubella virus glycoprotein E2: the signal peptide is contained in the C-terminal region of capsid protein // Virology. — 1989. — Vol. 173. — P. 241–250.
  30. Horban T.C., Lundstrem M.L., Gillam S. Processing and intracellular transport of rubella virus structure protein in COS cells // Virology. — 1990. — Vol. 78. — P. 122–123.
  31. Kujala P. Intracellular distribution of rubella virus nonstructural protein 150 // J. Virol. — 1999. — Vol. 73, N 9. — P. 7805–7811.
  32. Lee J.Y., Marshall J.A., Bowden D.S. Localization of rubella virus core particles in vero cells // Virology. — 1999. — Vol. 265, N. 1. — Р. 110–119.
  33. Lee J.-Y., Bowden D.S. Rubella virus replication and links to teratogenicity // Clin. Microbiol. Rev. — 2000. — Vol. 13, N 4. — P. 571–587.
  34. Liang Y., Giilam S. Mutational analysis of the rubella virus nonstructural polyprotein and its cleavage products in virus replication and RNA synthesis // J. Virol. — 2000. — Vol. 74, N 11. — P. 5133–5141.
  35. Liang Y., Yao J., Gillam S. Rubella virus nonstructural protein protease domains involved in trans- and cyscleavage activities // J. Virol. — 2000. — Vol. 74, N 12. — P. 5412–5423.
  36. Liu Z.Y., Qui Z., Lim K.T., Chong P., Gillam S. Identification of domains in RUBV genomic RNA and capsid protein necessary for scecific interaction// J. Virol. — 1996. — Vol. 70. — P. 2184–2190.
  37. Marr L.D., Sanchez A., Frey T.K. Efficient in vitro translation and processing of rubella virus structural proteins in the presence of microsomes // Virology. — 1991. — Vol. 180. — P. 400–405.
  38. Marr L.D., Wang C.-J., Frey T.K. Expression of the rubella virus nonstructural protein ORF and demonstration of proteolytic processing // Virology. — 1994. — Vol. 198. — P. 586–592.
  39. Mastromarino P., Cioe L., Rieti S., Orsi N. Role of membrane phospholipids and glycolipids in the Vero cellssurface receptor for rubella virus // Med. Microbiol. Immunol. — 1990. — Vol. 179. — P. 105–114.
  40. Mauracher C.A., Gillam S., Shukin R., Tingle A.J. pH-dependent solubility shift of rubella virus capsid protein // Virology. — 1991. — Vol. 181. – P. 773–777.
  41. Menser M.A., Harley J.D., Hertzberg R., Dorman D.C., Murphy A.M. Persistence of virus in lens for three years after prenatal rubella // Lancet. — 1967. — Vol. 2, N 7512. — P. 387–388.
  42. Menser M.A., Forrest J.M. Rubella — high incidence of defect in children concidered normal at birth // JAMA. — 1974. — Vol. 1. — P. 123–126.
  43. Modin J.E., Brandling-Bennet A.D. Surveillance of Congenital Rubella Syndrom 1969–1973// Rev. Infect. Dis. — 1974. — Vol. 130. — P. 316–318.
  44. Nakhasi H.L., Zheng D., Hewlett K., Liu T. RUBV replication: effect on interferon and actinomycin D // Virus Res. — 1988. — Vol. 10. — P. 1–15.
  45. Oker-Blom C., Petterson R.F., Summers M.D. Baculovirus polyhedron promoter-directed expression of rubella virus envelope glycoproteins, E1 and E2, in Spodoptera frugiperda cells // Virology. — 1989. — Vol. 172, N 1. — P. 82–91.
  46. Oker-Blom C., Ulmanen I., Kääriäinen L., Pettersson R.F. Rubella virus 40S genome RNA specifies a 24S subgenomic mRNA that encodes for a precursor to structural proteins// J. Virol. — 1984. — Vol. 49. — P. 403–408.
  47. Oker-Blom C. The gene order for rubella virus structural proteins is NH2-C-E2-E1-COOH // J. Virol. — 1984. — Vol. 51. — P. 354–358.
  48. Petruzziello R., Orsi N., Macchia S., Rieti S.W., Frey T.K., Mastromarino P. Pathway of rubella virus infectious entry into Vero cells //J. Gen. Virol. — 1996. — Vol. 77. — P. 303–308.
  49. Peuvot J.A., Schanck L., Linds L., Brasseur R. Are the fussion processes involved in birth, life and death of he cell depending on tilted insertion of peptides into membranes? // J. Theoretic Biol. — 1999. — Vol. 198, N 2. — P. 173–181.
  50. Suomalainen M.H., Garoff H., Baron M.D. The E2 signal sequence of rubella virus remains part of the capsid protein and confers membrane association in vitro // J. Virol. — 1990. — Vol. 64. — P. 5500–5509.
  51. Terry G.M., Ho-Terry L., Rees K.R. Localization of rubella E1 epitopes // Arch. Virol. — 1988. — Vol. 98. — P. 189–197.
  52. Tzeng W.P., Frey T.K. C-E1 fusion protein synthesized by rubella virus DI RNAs maintained during serial passage // Virology. — 2006. — Vol. 356, N 1–2. — P. 198–207.
  53. Tzeng W.P., Frey T.K. Rubella virus capsid protein modulation of viral genomic and subgenomic RNA synthesis // Virology. — 2005. — Vol. 337, N 2. — P. 327–334.
  54. Vaheri A., Sedwick W.D., Plotkin S.A. Grown of the rubella virus in BHK 21 cells. 1. Virus production and infectivity assays // Prok. Soc. Exp. Biol. (N.Y.). — 1967. — Vol. 125. — P. 1086–1092.
  55. Webster W.S. Teratogen update: congenital rubella // Teratology. — 1998. — Vol. 58. — P. 13–23.
  56. WHO. Standardization of the nomenclature for genetic characteristics of wild-type rubella viruses // Wkly Epidemiol. Rec. — 2005. — Vol. 80. — P. 126–132.
  57. Yao J., Gillam S. A single-amino-acid substitution of a tyrosine residue in the rubella virus E1 cytoplasmic domain blocks virus release // J. Virol. — 2000. — Vol. 74, N 7. — Р. 3029–3036.
  58. Yao J., Gillam S. Mutational analysis, using a fulllength rubella virus CAN clone, of rubella virus E1 transmembrane and cytoplasmic domains required virus release // J. Virol. — 1999. — Vol. 73. — P. 4622–4630.
  59. Zheng D.-P., Katow Sh., Abernathy E.S., Song Ki-J., Xu W.-B., Yarulin V., Desjatskova R.G., Aboudy Y., Enders G., Croxson M. Global distribution of Rubella virus genotypes // Emerg. Infect. Dis. — 2003. — Vol. 9, N 12. — Р. 1523–1530.
  60. Zheng D.-P. Update of standard nomenclature for wild-type rubella viruses, 2007 // Wkly Epidemiol. Rec. — 2007. — Vol. 82, N 4. — P. 216–222.
  61. Zhou Y. Genomic analysis of diverse rubella virus genotypes / J. Gen. Virol. — 2007. — Vol. 88. — P. 932–941.
  62. http://www.ictvonline.org/virusTaxonomy.asp?version=2009

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Антипова А.Ю., 2014

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».