EFFECT OF AMINO ACID ON THE DEVELOPMENT SKIN TISSUE ORGANOTYPIC CULTURE


Cite item

Full Text

Abstract

The effect of the 20 coded amino acids was investigated on the development of the processes of the proliferation in the organotypic tissue culture of rat skin. The amino acids lysine, arginine and glutamine acid at 0,05 ng/ml concentration stimulated the cellular proliferation in the growth zone of explants by 29-30%. The mustard-like agent cyclophosphane at 1 mg/ml concentration inhibited the cellular proliferation. The delay of this inhibiting effect of cyclophosphane was observed by the combined action of stimulating amino acids with the cyclophosphane. Thus, the amino acids with the charge radicals can be protectors of the cellular proliferation by the toxic effect of the cyclophosphane on the skin. This effect can be used for the treatment of the mustard injury of skin and for the delay of the adverse effect of cytostatic in oncology (1 figure, 1 table, bibliography: 28 refs).

About the authors

Natal'ya I Chalisova

I. P. Pavlov Institute of physiology S. M. Kirov Military Medical Academy the Russian Defense Ministry

Aleksander E Korovin

S. M. Kirov Military Medical Academy the Russian Defense Ministry

References

  1. Соловьев А. Ю., Чалисова Н. И., Чернова И. А., Шатаева Л. К., Синячкин Д. А. Механизмы стимуляции клеточной пролиферации под влиянием L-аминокислот в культуре тканей молодых и старых крыс. Успехи геронтологии. 2013; 26 (2): 186-97.
  2. Хавинсон В. Х., Чалисова Н. И., Линькова Н. С., Халимов Р. И., Ничик Т. Е. Зависимость тканеспецифического действия пептидов от количества аминокислот, входящих в их состав. Фундаментальные исследования. 2015; 2 (3): 497-503.
  3. Чалисова Н. И., Концевая Е. А., Войцеховская М. А. Регуляторное влияние кодируемых аминокислот на основные клеточные процессы у молодых и старых животных. Успехи геронтологии. 2011; 24 (2): 189-97.
  4. Chalisova N. I., Zakutzkii A. Effect of amino acids on cell proliferation and P53 expression in neonatal rats. Cell Biol. Int. 2008; 32 (2): 1574-7.
  5. Gerarde H. W., Jones M., Winnick T. Protein synthesis and amino acid turnover in tissue culture. J. Biol. Chem. 1966; 1: 51-68.
  6. Kimball S. R., Jefferson L. S. New functions for amino acids: effects on gene transcription and translation. Am. J. Clin. Nutr. 2006; 83 (2): 500-7.
  7. Neame K. D. Effect of neutral alpha- and omega-amino acids and basic alpha-amino acids on uptake of L-histidine by intestinal mucosa, testis, spleen and kidney in vitro: a comparison with effect in brain. J. Physiol. 1966; 185 (3): 627-45.
  8. Белокрылов Г. А., Деревнина О. Н., Попова О. Я. Различия в иммунном ответе, фагоцитозе и детоксицирующих свойствах под влиянием пептидных и аминокислотных препаратов. Бюл. эксперимент. биол. 1995; 118 (2): 509-12.
  9. Arai T., Hiromatsu K., Nishimura H., Kimura Y., Kobayashi N., Ishida H., Nimura Y., Yoshikai Y. Endogenous interleukin 10 prevents apoptosis in macrophages during Salmonella infection. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1995; 213 (2): 600-7.
  10. Booth P. J., Humpherson P. G., Watson T. J. Leese H. J. Amino acid depletion and appearance during porcine preimplantation embryo development in vitro. Reproduction. 2005; 130 (5): 655-68.
  11. Fratelli M., Gagliardini V., Galli G., Gnocchi P., Ghiara P., Ghezzi P. Autocrine interleukin-1 beta regulates both proliferation and apoptosis in EL4-6.1 thymoma cells. Blood. 1995; 85 (12): 3532-7.
  12. Fu Y. M., Yu Z. X., Li Y. Q., Ge X., Sanchez P. J., Fu X., Meadows G. G. Specific amino acid dependency regulates invasiveness and viability of androgen-independent prostate cancer cells. Nutr. Cancer. 2003; 4 (1): 60-73.
  13. Oehler R., Roth E. Regulative capacity of glutamine. Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 2003; 6 (3): 277-82.
  14. Cid C., Alvarez-Cermeno J. C., Regidor I., Plaza J., Salinas M., Alcázar A. Low concentrations of glutamate induce apoptosis in cultured neurons: implications for amyotrophic lateral sclerosis. J. Neurol. Sci. 2003; 206 (1): 91-5.
  15. Chen R. W., Qin Z. H., Ren M., Li M. Regulation of c-Jun N-terminal kinase, p38 kinase and AP-1 DNA binding in cultured brain neurons: roles in glutamate excitotoxicity and lithium neuroprotection. J. Neurochem. 2003; 84 (3): 566-75.
  16. Philip R., Campbell E., Wheatley D. N. Arginine deprivation, growth inhibition and tumour cell death: 2. Enzymatic degradation of arginine in normal and malignant cell cultures. Br. J. Cancer. 2003; 8 (4): 613-23.
  17. Kim K. Y., Moon J. I., Lee E. J., Kim I. B., Park C. K., Oh S. J., Chun M. H. The effect of L-arginine, a nitric oxide synthase substrate, on retinal cell proliferation in the postnatal rat. Dev. Neurosci. 2002; 24 (4): 313-21.
  18. Bruhat A., Cherasse Y., Chaveroux C., Maurin A. C., Jousse C., Fafournoux P. Amino acids as regulators of gene expression in mammals: molecular mechanisms. Biofactors. 2009; 35 (1): 249-57.
  19. Suschek C. V., Schnorr O., Hemmrich K., Aust O., Klotz L. O., Sies H., Kolb-Bachofen V. Critical role of L-arginine in endothelial cell survival during oxidative stress. Circulation. 2003; 107 (20): 2607-14.
  20. Trulsson L., Sandström P., Sundqvist T., Smeds S., Gasslander T., Svanvik J. The Influence of a load of L-arginine on serum amino acids and pancreatic apoptosis/proliferation and ATP levels in the rat. Pancreas. 2004; 29 (4): 113-20.
  21. Kimura M., Ogihara M. Effects of branched-chain amino acids on DNA synthesis and proliferation in primary cultures of adult rat hepatocytes. Eur. J. Pharmacol. 2005; 510 (3): 167-180.
  22. Suryawan A., O'Connor P. M., Bush J. A., Nguyen H. V., Davis T. A. Differential regulation of protein synthesis by amino acids and insulin in peripheral and visceral tissues of neonatal pigs. Amino Acids. 2009; 37 (1): 97-104.
  23. Vary T. Oral leucine enhances myocardial protein synthesis in rats acutely administered ethanol. J. Nutr. 2009; 139 (8): 1439-44.
  24. Proud C. G. Amino acids and mTOR signalling in anabolic function. Biochem. Soc. Trans. 2005; 35 (5): 1187-90.
  25. Вахитов Т. Я., Чалисова Н. И., Салль Т. С., Концевая Е. А., Козина Л. С., Полевая Е. А., Заломаева Е. С. Влияние генетически кодируемых аминокислот и их предшественников карбоновых кислот на клеточную пролиферацию в органотипической культуре селезенки у молодых и старых крыс. Успехи геронтологии. 2017; 30 (1): 39-42.
  26. Чалисова Н. И., Закуцкий А. Н., Анискина А. В., Ноздрачев А. Д. Влияние аргинина и его метаболитов на миокард крыс в органотипической культуре ткани. Доклады РАН. 2007; 415 (2): 273-6.
  27. Чалисова Н. И., Пеннияйнен В. А., Ноздрачев А. Д. Регулирующее действие аминокислот в органотипической культуре лимфоидных тканей с различной степенью зрелости. Доклады РАН. 2003; 389 (2): 117-9.
  28. Хавинсон В. Х., Линькова Н. С., Дудков А. В., Полякова В. О., Кветной И. М. Пептидергическая регуляция экспрессии генов, кодирующих антиоксидантные и противовоспалительные белки. Бюл. эксп. биол. мед. 2011; 152 (11): 548-51.

Copyright (c) 2017 Chalisova N.I., Korovin A.E.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies