МикроРНК как диагностический маркер при Т-клеточных лимфомах кожи

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. В последние годы благодаря развитию методов молекулярно-генетического анализа одним из перспективных маркеров для диагностики многих заболеваний человека становится микроРНК.

Цель ― изучение микроРНК в плазме крови для ранней диагностики грибовидного микоза.

Материал и методы. В исследование были включены 30 пациентов с гистологически подтверждённым диагнозом Т-клеточной лимфомы кожи, у 25 был диагностирован грибовидный микоз, у 5 ― синдром Сезари. Группу контроля составили 10 пациентов с доброкачественными лимфопролиферативными дерматозами. Пациентам проводилось определение микроРНК 223, 16, 326, 663, 423, 711 в плазме крови. Проведено также определение микроРНК в плазме у пациентов с Т-клеточными лимфомами кожи на ранних и поздних стадиях.

Результаты. Выявлена статистически значимая разница микроРНК 223, 16, 326, 711 в плазме крови у пациентов с грибовидным микозом в сравнении с пациентами с доброкачественными лимфопролиферативными дерматозами, микроРНК 663 у пациентов с Т-клеточными лимфомами кожи на ранней и поздней стадиях, а также микроРНК 223, 711 у пациентов с грибовидным микозом на ранней стадии в сравнении с пациентами с доброкачественными лимфопролиферативными дерматозами.

Заключение. Определение микроРНК 223, 16, 326, 711 в плазме крови может быть использовано для ранней диагностики Т-клеточной лимфомы кожи.

Об авторах

Ольга Юрьевна Олисова

Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)

Email: olisovaolga@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2482-1754
SPIN-код: 2500-7989

д.м.н., профессор

Россия, Москва

Владимир Витальевич Демкин

Институт молекулярной генетики

Email: vdemkin@img.ras.ru
ORCID iD: 0000-0002-3408-6100
SPIN-код: 5130-8270

к.м.н.

Россия, Москва

Наталья Геннадьевна Чернова

Городская клиническая больница № 40

Email: ngchernova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0827-4052
SPIN-код: 2683-1517

к.м.н.

Россия, Москва

Джессика Рафаэлевна Амшинская

Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)

Автор, ответственный за переписку.
Email: dr.jessika@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3907-2189
SPIN-код: 6770-5019

аспирант

Россия, Москва

Андрей Аркадьевич Казаков

Институт молекулярной генетики

Email: andrey20079@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5559-6003
Россия, Москва

Список литературы

  1. Riou-Gotta M.O., Fournier E., Mermet I., et al. Primary cutaneous lymphomas: a population-based descriptive study of 71 consecutive cases diagnosed between 1980 and 2003 // Leuk Lymphoma. 2008. Vol. 49, N 8. Р. 1537–1544. doi: 10.1080/10428190802136368
  2. Kohnken R., Mishra A. MicroRNAs in cutaneous T-cell lymphoma: the future of therapy // J Investigative Dermatol. 2019. Vol. 139, N 3. Р. 528–534. doi: 10.1016/j.jid.2018.10.035
  3. Jawed S.I., Myskowski P.L., Horwitz S., et al. Primary cutaneous T-cell lymphoma (mycosis fungoides and Sézary syndrome): part I. Diagnosis: clinical and histopathologic features and new molecular and biologic markers // J Am Acad Dermatol. 2014. Vol. 70, N 2. Р. 205–222. doi: 10.1016/j.jaad.2013.07.049
  4. Hristov A.C., Tejasvi T., Wilcox R.A. Mycosis fungoides and Sézary syndrome: 2019 update on diagnosis, risk-stratification, and management // Am J Hematol. 2019. Vol. 94, N 9. Р. 1027–1041. doi: 10.1002/ajh.25577
  5. Ralfkiaer U., Lindahl L.M., Litman T., et al. MicroRNA expression in early mycosis fungoides is distinctly different from atopic dermatitis and advanced cutaneous T-cell lymphoma // Anticancer Res. 2014. Vol. 34, N 12. Р. 7207–7217.
  6. Shen X., Wang B., Li K., et al. MicroRNA signatures in diagnosis and prognosis of cutaneous T-cell lymphoma // J Invest Dermatol. 2018. Vol. 138, N 9. Р. 2024–2032. doi: 10.1016/j.jid.2018.03.1500
  7. Горенкова Л.Г., Рыжикова Н.В., Моисеева Т.Н., и др. Т-клеточные лимфомы кожи (грибовидный микоз) в практике гематолога // Гематология и трансфузиология. 2020. Т. 65, № 1. C. 133.
  8. Da Silva Almeida A.C., Abate F., Khiabanian H., et al. The mutational landscape of cutaneous T-cell lymphoma and Sézary syndrome // Nat Genet. 2015. Vol. 47, N 12. Р. 1465–1470. doi: 10.1038/ng.3442
  9. Spicknall K.E. Sézary syndrome-clinical and histopathologic features, differential diagnosis, and treatment // Semin Cutan Med Surg. 2018. Vol. 37, N 1. Р. 18–23. doi: 10.12788/j.sder.2018.005
  10. Dummer R., Heald P.W., Nestle F.O., et al. Sézary syndrome T-cell clones display T-helper 2 cytokines and express the accessory factor-1 (interferon-gamma receptor beta-chain) // Blood. 1996. Vol. 88, N 4. Р. 1383–1389.
  11. Rodriguez A., Griffiths-Jones S., Ashurst J.L., Bradley A. Identification of mammalian microRNA host genes and transcription units // Genome Res. 2004. Vol. 14, N 10. Р. 1902–1910. doi: 10.1101/gr.2722704
  12. Kozomara A., Griffiths-Jones S. miRBase: integrating microRNA annotation and deep-sequencing data // Nucleic Acids Res. 2011. Vol. 39. Р. 152–157. doi: 10.1093/nar/gkq1027
  13. Peterson S.M., Thompson J.A., Ufkin M.L., et al. Common features of microRNA target prediction tools // Frontiers Genetics. 2014. Vol. 5. Р. 23. doi: 10.3389/fgene.2014.00023
  14. Di Leva G., Garofalo M., Croce C.M. MicroRNAs in cancer // Annu Rev Pathol. 2014. Vol. 9. Р. 287–314. doi: 10.1146/annurev-pathol-012513-104715
  15. Sadakierska-Chudy A. MicroRNAs: diverse mechanisms of action and their potential applications as cancer epi-therapeutics // Biomolecules. 2020. Vol. 10, N 9. Р. 1285. doi: 10.3390/biom10091285
  16. Ma L., Teruya-Feldstein J., Weinberg R.A. Tumour invasion and metastasis initiated by microRNA-10b in breast cancer // Nature. 2007. Vol. 449, N 7163. Р. 682–688. doi: 10.1038/nature06174
  17. Androvic P., Valihrach L., Elling J., et al. Two-tailed RT-qPCR: a novel method for highly accurate miRNA quantification // Nucleic Acids Res. 2017. Vol. 45, N 15. Р. 144. doi: 10.1093/nar/gkx588
  18. Leti F., DiStefano J.K. miRNA quantification method using quantitative polymerase chain reaction in conjunction with cq method // Methods Mol Biol. 2018. Vol. 1706. Р. 257–265. doi: 10.1007/978-1-4939-7471-9_14
  19. Pistol Tanase C., Albulescu R., Neagu M. Application of 3D hydrogel microarrays in molecular diagnostics: advantages and limitations // Expert Rev Mol Diagn. 2011. Vol. 11, N 5. Р. 461–464. doi: 10.1586/erm.11.30
  20. Kappel A., Backes C., Huang Y., et al. MicroRNA in vitro diagnostics using immunoassay analyzers // Clin Chem. 2015. Vol. 61, N 4. Р. 600–607. doi: 10.1373/clinchem.2014.232165
  21. Ballabio E., Mitchell T., van Kester M.S., et al. MicroRNA expression in Sezary syndrome: identification, function, and diagnostic potential // Blood. 2010. Vol. 116, N 7. Р. 1105–1113. doi: 10.1182/blood-2009-12-256719
  22. Ralfkiaer U., Hagedorn P.H., Bangsgaard N., et al. Diagnostic microRNA profiling in cutaneous T-cell lymphoma (CTCL) // Blood. 2011. Vol. 118, N 22. Р. 5891–5900. doi: 10.1182/blood-2011-06-358382
  23. Van Kester M.S., Ballabio E., Benner M.F., et al. miRNA expression profiling of mycosis fungoides // Mol Oncol. 2011. Vol. 5, N 9. Р. 273–280. doi: 10.1016/j.molonc.2011.02.003
  24. Narducci M.G., Arcelli D., Picchio M.C., et al. MicroRNA profiling reveals that miR-21, miR486 and miR-214 are upregulated and involved in cell survival in Sézary syndrome // Cell Death Dis. 2011. Vol. 2, N 4. Р. 151. doi: 10.1038/cddis.2011.32
  25. Benner A., Zucknick M., Hielscher T., et al. High-dimensional Cox models: the choice of penalty as part of the model building process // Biom J. 2010. Vol. 52, N 1. Р. 50–69. doi: 10.1002/bimj.200900064
  26. Flores-Sandoval E., Eklund D.M., Bowman J.L. A Simple auxin transcriptional response system regulates multiple morphogenetic processes in the liverwort marchantia polymorpha // PLoS Genetics. 2015. Vol. 11, N 5. Р. e1005207. doi: 10.1371/journal.pgen.1005207
  27. Qin J., Li Y., Cai Z., et al. A metagenome-wide association study of gut microbiota in type 2 diabete // Nature. 2012. Vol. 490, N 7418. Р. 55–60. doi: 10.1038/nature11450
  28. Marstrand T., Ahler C.B., Ralfkiaer U., et al. Validation of a diagnostic microRNA classifier in cutaneous T-cell lymphomas // Leuk Lymphoma. 2014. Vol. 55, N 4. Р. 957–958. doi: 10.3109/10428194.2013.815352
  29. Hagag N.A., Ali Y.B., Elsharawy A.A., Talaat R.M. Clinical impact of circulated miR-1291 in plasma of patients with liver cirrhosis (LC) and hepatocellular carcinoma (HCC): implication on glypican-3 expression // J Gastrointest Cancer. 2020. Vol. 51, N 1. Р. 234–241. doi: 10.1007/s12029-019-00234-9
  30. Dusílková N., Bašová P., Polívka J., et al. Plasma miR-155, miR-203, and miR-205 are biomarkers for monitoring of primary cutaneous T-cell lymphomas // Int J Mol Sci. 2017. Vol. 18, N 10. Р. 2136. doi: 10.3390/ijms18102136
  31. Hassan H., Salami A., Ghssein G., et al. Seroprevalence of Brucella abortus in cattle in Southern Lebanon using different diagnostic tests // Veterinary World. 2020. Vol. 13, N 10. Р. 2234–2242. doi: 10.1080/20008686.2018.1555445

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Анализ чувствительности и специфичности микроРНК 223.

Скачать (62KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Анализ чувствительности и специфичности микроРНК 16.

Скачать (59KB)
Метаданные

© Олисова О.Ю., Демкин В.В., Чернова Н.Г., Амшинская Д.Р., Казаков А.А., 2022

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах