Glucocorticoid receptor expression in the different cell types of the neonatal rat hippocampus and cortex

Capa

Citar

Texto integral

Acesso aberto Acesso aberto
Acesso é fechado Acesso está concedido
Acesso é fechado Somente assinantes

Resumo

Glucocorticoids (GC) are crucial regulator of organism homeostasis and function. Despite severe outcome glucocorticoid therapy in neonates is widely used antenataly for accelerating fetal lung maturation in cases of preterm birth. GC action mediated via glucocorticoid receptors – ligand activated transcription factors. Despite broad range of information concerning GR expression in the brain, not so much known about GR expression in the neonatal brain in aspects of cell specificity and identity. In this work we perform comparative study of GR expression together with panel of main neuronal and astrocytic cell markers in the neonatal rat brain. We immunohistochemically studied GR expression in the hippocampal CA1 field and enthorinal cortex together with cortical projection neuron markers – SATB2, NURR1; Calretenin – interneurons marker, and GFAP – astrocytic marker. The highest calocalization coefficients observed for GR with Calrtetenin. With projection neuron markers that are also transcription factors calocalization coefficients increased to the same values as for GR-Calretenin 6h after dexamethasone injection and GR were translocated to the nucleus. Our analysis showed that in the neonatal rat brain GR are more localized in neurons than in astocytes.

Texto integral

Acesso é fechado

Sobre autores

D. Lanshakov

The Institute of Cytology and Genetics SB RAS; Novosibirsk State University

Autor responsável pela correspondência
Email: lanshakov@bionet.nsc.ru

Postgenomics Neurobiology Sector

Rússia, Novosibirsk; Novosibirsk

U. Drozd

The Institute of Cytology and Genetics SB RAS; Novosibirsk State University

Email: lanshakov@bionet.nsc.ru

Postgenomics Neurobiology Sector

Rússia, Novosibirsk; Novosibirsk

N. Dygalo

Novosibirsk State University; The Institute of Cytology and Genetics SB RAS

Email: lanshakov@bionet.nsc.ru

Functional Neurogenomics Laboratory

Rússia, Novosibirsk; Novosibirsk

Bibliografia

  1. Yudt M.R. and Cidlowski J.A. // Mol. Endocrin. 2002. V. 16. P. 1719–1726.
  2. Tronche F., Kellendonk C., Kretz O., Gass P., Anlag K., Orban P.C., Bock R., Klein R., and Schütz G. // Nat Genet. 1999. V. 23. P. 99–103.
  3. Kellendonk C., Tronche F., Reichardt H.M., and Schütz G. // J. Ster. Biochem. Mol. Biol. 1999. V. 69. P. 253–259.
  4. Kellendonk C., Gass P., Kretz O., Schütz G., and Tronche F. // Brain Res Bull. 2002. V. 57. P. 73–83.
  5. Doyle L.W., Ehrenkranz R.A., and Halliday H.L. // The Coch. Collab., ed., (Chichester, UK: John Wiley & Sons, Ltd, 2014), p. CD001145.pub3.
  6. Halliday H.L., Ehrenkranz R.A., and Doyle L.W. // The Coch. Collab., ed., (Chichester, UK: John Wiley & Sons, Ltd, 2009), p. CD001146.pub2.
  7. Nguon. K., Baxter M.G., and Sajdel‐Sulkowska E.M. // The Cerebell. 2005. V. 4. P. 112–122.
  8. Bhatt A.J., Feng Y., Wang J., Famuyide M., and Hersey K. // J. of Neurosci. Res. 2013. V. 91. P. 1191–1202.
  9. Holson R.R., Gough B., Sullivan P., Badger T., and Sheehan D.M. // Neurotoxicology and Teratology. 1995. V. 17. P. 393–401.
  10. Hossain A., Hajman K., Charitidi K., Erhardt S., Zimmermann U., Knipper M., and Canlon B. // Endocrin. 2008. V. 149. P. 6356–6365.
  11. Nagano M., Ozawa H., and Suzuki H. // Neurosc. Res. 2008. V. 60. P. 364–371.
  12. Aronsson M., Fuxe K., Dong Y., Agnati L.F., Okret S., and Gustafsson J.A. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. V. 85. P. 9331–9335.
  13. Ábrahám I., Juhász G., Kékesi K.A., and Kovács K.J. // Brain Res. 1996. V. 733. P. 56–63.
  14. Takeda A., Suzuki M., Tamano H., Takada S., Ide K., and Oku N. // Neuroch. Intl. 2012. V. 60. P. 394–399.
  15. Zinchuk V. and Grossenbacher‐Zinchuk O. // CP Cell Biol. 2014. V. 62.
  16. Zinchuk V. and Grossenbacher‐Zinchuk O. // CP Cell Biol. 2011. V. 52.
  17. Adler J. and Parmryd I. // PLoS ONE. 2014. V. 9. P. e111983.
  18. Adler J. and Parmryd I. // Cyt. Pt A. 2010. V. 77A. P. 733–742.
  19. Dunn K.W., Kamocka M.M., and McDonald J.H. // Am. J. of Phys.-Cell Phys. 2011. V. 300. P. C723–C742.
  20. Varga J., Ferenczi S., Kovács K.J., Garafova A., Jezova D., and Zelena D. // PLoS ONE. 2013. V. 8. P. e72313.
  21. Bohn M.C., Dean D., Hussain S., and Giuliano R. // Dev. Brain Res. 1994. V. 77. P. 157–162.
  22. Tsiarli M.A., Paula Monaghan A., and DeFranco D.B. // Brain Res. 2013. V. 1523. P. 10–27.
  23. Vernocchi S., Battello N., Schmitz S., Revets D., Billing A.M., Turner J.D., and Muller C.P. // Mol. & Cell. Prot. 2013. V. 12. P. 1764–1779.
  24. Gutièrrez-Mecinas M., Trollope A.F., Collins A., Morfett H., Hesketh S.A., Kersanté F., and Reul J.M.H.M. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011. V. 108. P. 13806–13811.
  25. Papadopoulos A., Chandramohan Y., Collins A., Droste S.K., Nutt D.J., and Reul J.M.H.M. // Eur. Neuropsych. 2011. V. 21. P. 316–324.
  26. Trollope A.F., Gutièrrez-Mecinas M., Mifsud K.R., Collins A., Saunderson E.A., and Reul J.M.H.M. // Exp. Neurol. 2012. V. 233. P. 3–11.
  27. Ben-Ari Y. // Nat Rev Neurosci. 2002. V. 3. P. 728–739.
  28. Lanshakov D.A., Sukhareva E.V., Kalinina T.S., and Dygalo N.N. // Neur. of Dis. 2016. V. 91. P. 1–9.
  29. Britanova O., Akopov S., Lukyanov S., Gruss P., and Tarabykin V. // Eur J of Neurosc. 2005. V. 21. P. 658–668.
  30. Baranek C., Dittrich M., Parthasarathy S., Bonnon C.G., Britanova O., Lanshakov D., Boukhtouche F., Sommer J.E., Colmenares C., Tarabykin V., and Atanasoski S. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2012. V. 109. P. 3546–3551.
  31. Alcamo E.A., Chirivella L., Dautzenberg M., Dobreva G., Farinas I., Grosschedl R., and McConnell S.K. // Neur. 2008. V. 57. P. 364–377.
  32. Britanova O., De Juan Romero C., Cheung A., Kwan K.Y., Schwark M., Gyorgy A., Vogel T., Akopov S., Mitkovski M., Agoston D., Šestan N., Molnár Z., and Tarabykin V. // Neur. 2008. V. 57. P. 378–392.
  33. Bae E.-J., Lee H.-S., Park C.-H., and Lee S.-H. // FEBS Let. 2009. V. 583. P. 1505–1510.
  34. Perlmann T. and Wallén-Mackenzie Å. // Cell Tissue Res. 2004. V. 318. P. 45–52.
  35. Hoerder-Suabedissen A., Oeschger F.M., Krishnan M.L., Belgard T.G., Wang W.Z., Lee S., Webber C., Petretto E., Edwards A.D., and Molnár Z. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2013. V. 110. P. 3555–3560.
  36. Hoerder-Suabedissen A. and Molnár Z. // Cereb. Cort. 2013. V. 23. P. 1473–1483.
  37. Oeschger F.M., Wang W.-Z., Lee S., García-Moreno F., Goffinet A.M., Arbonés M.L., Rakic S., and Molnár Z. // Cereb. Cort. 2012. V. 22. P. 1343–1359.
  38. Tolner E.A., Sheikh A., Yukin A.Y., Kaila K., and Kanold P.O. // J. Neurosci. 2012. V. 32. P. 692–702.
  39. Viswanathan S., Bandyopadhyay S., Kao J.P.Y., and Kanold P.O. // J. Neurosci. 2012. V. 32. P. 1589–1601.
  40. Friauf E., McConnell S., and Shatz C. // J. Neurosci. 1990. V. 10. P. 2601–2613.
  41. McConnell S., Ghosh A., and Shatz C. // J. Neurosci. 1994. V. 14. P. 1892–1907.
  42. McConnell S.K., Ghosh A., and Shatz C J. // Sci. 1989. V. 245. P. 978–982.
  43. Wang Z., Benoit G., Liu J., Prasad S., Aarnisalo P., Liu X., Xu H., Walker N.P.C., and Perlmann T. // Nat. 2003. V. 423. P. 555–560.
  44. Yu S., Yang S., Holsboer F., Sousa N., and Almeida O.F.X. // PLoS ONE. 2011. V. 6. P. e22419.
  45. Wyrwoll C.S., Holmes M.C., and Seckl J.R. // Front in Neuroendo. 2011. V. 32. P. 265–286.
  46. Rosewicz S., McDonald A.R., Maddux B.A., Goldfine I.D., Miesfeld R.L., and Logsdon C.D. // J. of Biol. Chem. 1988. V. 263. P. 2581–2584.

Arquivos suplementares

Arquivos suplementares
Ação
1. JATS XML
Baixar
2. Fig. 1. Experimental scheme. The arrow indicates the material sampling.

Baixar (58KB)
Metadados
3. Fig. 2. GR expression in the brain of neonatal rats on day 3 of life. GR – green, Alexa 488. In panoramic images of GR staining (1A), the CA1 region of the hippocampus and the entorhinal cortex are marked with white frames. Scale bar is 500 μm.

Baixar (544KB)
Metadados
4. Fig. 3. High-NA objective images of double immunofluorescence staining of GR (green, Alexa 488) and cell type markers (red, Alexa 568) at 40x magnification in the CA1 region of the hippocampus (a) and the entorhinal cortex (b). Colocalization sites are marked with white triangles. Scale bar, 50 μm.

Baixar (656KB)
Metadados
5. Fig. 4. Images of double immunofluorescence staining of GR (green, Alexa 488) and cell type markers (red, Alexa 568) taken with a high numerical aperture objective at 40x magnification in the entorhinal cortex before (a) and after (b) DEX administration. GR was translocated into the cell nucleus 6 h after DEX administration in the entorhinal cortex. Scale bar, 50 μm.

Baixar (779KB)
Metadados

Declaração de direitos autorais © Russian Academy of Sciences, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».