Молекулярные аспекты регуляции экспрессии гомеологичных генов глутаматдегидрогеназы в листьях пшеницы при гипоксии
- Авторы: Федорин Д.Н.1, Епринцев А.Т.1
-
Учреждения:
- ФГБОУ ВО Воронежский государственный университет
- Выпуск: № 5 (2024)
- Страницы: 596–604
- Раздел: ФИЗИОЛОГИЯ РАСТЕНИЙ
- URL: https://journals.rcsi.science/1026-3470/article/view/274167
- DOI: https://doi.org/10.31857/S1026347024050048
- EDN: https://elibrary.ru/ulrckh
- ID: 274167
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Установлено увеличение активности ГДГ при воздействии на растения гипоксических условий в первые 6 часов, что обеспечивает формирование адаптивной реакции клеточного метаболизма к недостатку кислорода в клетке. Показано различие в транскрипционной активности гомеологичных генов GDH-1 в листьях пшеницы в стрессовых условиях. Увеличение содержания мРНК гена GDH-1(5A) в листьях пшеницы при воздействии на растения гипоксических условий наблюдается в первые часы эксперимента, что соотносится с изменением каталитической активности глутаматдегидрогеназы. Регуляция данного гена осуществляется транскрипционным фактором HIF, специфический сайт посадки которого обнаружен в зоне инициации транскрипции промотора данного гена.
Ключевые слова
Полный текст

Об авторах
Д. Н. Федорин
ФГБОУ ВО Воронежский государственный университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: bc366@bio.vsu.ru
Россия, Университетская пл., 1, г. Воронеж, 394018
А. Т. Епринцев
ФГБОУ ВО Воронежский государственный университет
Email: bc366@bio.vsu.ru
Россия, Университетская пл., 1, г. Воронеж, 394018
Список литературы
- Войцековская С. А., Сотникова Н. В., Верхотурова Г. С., Зайцева Т. А., Боровикова Г. В., Астафурова Т. П. Особенности метаболической адаптации у растений амаранта в условиях гипобарической гипоксии // Сельскохозяйственная биология. 2010. № 5. С. 106–111.
- Епринцев А. Т., Бондарева И. Р., Селиванова Н. В. Уровни экспрессии и активность изоферментов лактатдегидрогеназы печени крыс при аллоксановом диабете // Биомедицинская химия. 2022. Т. 68. С. 32–38. doi: 10.18097/PBMC20226801032
- Bailey-Serres J., Fukao T., Gibbs D. J., Holdsworth M. J., Lee S. C., Licausi F., Perata P., Voesenek L. A.C.J., van Dongen J. T. Making sense of low oxygen sensing // Trends Plant Sci. 2012. V. 17. P. 129–138. doi: 10.1016/j.tplants.2011.12.004.
- Bird K. A., VanBuren R., Puzey J. R., Edger P. P. The causes and consequences of subgenome dominance in hybrids and recent polyploids // New Phytologist. 2018. V. 220. P. 87–93. doi: 10.1111/nph.15256.
- Bown A. W., Shelp B. J. The metabolism and functions of g-aminobutyric acid // Plant Physiol. 1997. V. 115. P. 1–5. doi: 10.1016/s1360-1385(99)01486-7.
- Chomczynski P., Sacchi N. Singlestep-method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction // Anal. Biochem. 1987. V. 162. P. 156–159. doi: 10.1006/abio.1987.9999.
- Dubois F., Terce-Laforgue T., Begona G-M. M., Estavillo J-M. Glutamate dehydrogenase in plants; is there a new story for an old enzyme? // Plant Physiol. Biochem. 2003. V. 41. P. 565–576. doi: 10.1016/S0981-9428(03)00075-5
- Fait A., Fromm H., Walter D., Galili G., Fernie A. R. High way or by way: the metabolic role of the GABA shunt in plants // Trends Plant Sci. 2008. V. 13. P. 14–19. doi: 10.1016/j.tplants.2007.10.005.
- Feldman M., Levy A. A., Fahima T., Korol A. Genomic asymmetry in allopolyploid plants: wheat as a model // Journal of experimental botany. 2012. V. 63. P. 5045–5059. doi: 10.1093/jxb/ers192.
- Forde B., Lea P. Glutamate in plants: metabolism, regulation, and signaling // Journal of Experimental Botany. 2007. V. 58. P. 2339–2358. doi: 10.1093/jxb/erm121.
- Grabowska A., Kwinta J., Bielawski W. Glutamine synthetase and glutamate dehydrogenase in triticale seeds: molecular cloning and genes expression // Acta Physiologiae Plantarum. 2012. V. 34. P. 2393–2406. doi: 10.1007/s11738-012-1085-9
- Greenway H., Gibbs J. Mecahnisms of anoxia tolerance in plants. II. Energy requirements for maintainance and energy distribution to essential processes // Funct. Plant Biol. 2003. V. 30. P. 999-1036. doi: 10.1071/PP98096.
- Igamberdiev A. U., Hill R. D. Plant mitochondrial function during anaerobiosis // Annals of Botany. 2008. V. 103. P. 259–268. doi: 10.1093/aob/mcn100
- Klok E. J., Wilson I. W., Wilson D., Chapman S. C., Ewing R. M., Somerville S. C., Peacock W. J., Dolferus R., Dennis E. S. Expression profile analysis of the low-oxygen response in Arabidopsis root cultures // Plant Cell. 2002. V. 14. P. 2481–2494. doi: 10.1105/tpc.004747
- Limami A. M., Diab H., Lothier J. Nitrogen metabolism in plants under low oxygen stress // Planta. 2014. V. 239. P. 531–541. doi: 10.3390/plants5020025
- Masclaux-Daubresse C., Reisdorf-Cren M., Pageau K., Lelandais M., Grandjean O., Kronenberger J., Valadier M-H., Feraud M., Jouglet T., Suzuki A. Glutamine synthetase–glutamate synthase pathway and glutamate dehydrogenase play distinct roles in the sink-source nitrogen cycle in tobacco // Plant Physiol. 2006. V. 140. P. 444–456. doi: 10.1104/pp.105.071910
- Miyashita Y., Good A. NAD(H)-dependent glutamate dehydrogenase is essential for the survival of Arabidopsis thaliana during dark-induced carbon starvation // Journal of Experimental Botany. 2008. V. 59. P. 667–680. doi: 10.1093/jxb/erm340
- Nicot N., Hausman J-F., Hoffmann L., Evers D. Housekeeping gene selection for real-time RT-PCR normalization in potato during biotic and abiotic stress // J. of Exp. Bot. 2005. V. 56. P. 2907–2914. doi: 10.1093/jxb/eri285
- Ramirez-Gonzalez R.H., Borrill P., Lang D., Harrington S. A., Brinton J., Venturini L., Davey M., Jacobs J., van Ex F., Pasha A., Khedikar Y., Robinson S. J., Cory A. T., Florio T., Concia L., Juery C., Schoonbeek H., Steuernagel B., Xiang D., Ridout C. J., Chalhoub B., Mayer K. F.X., Benhamed M., Latrasse D., Bendahmane A., Wulff B. B.H., Appels R., Tiwari V., Datla R., Choulet F., Pozniak C. J., Provart N. J., Sharpe A. G., Paux E., Spannagl M., Bräutigam A., Uauy C. The transcriptional landscape of polyploid wheat // Science. 2018. V. 361: eaar6089. doi: 10.1126/science.aar6089
- Sarasketa A., Gonzalez-Moro M.B., Gonzalez-Murua C., Marino D. Nitrogen source and external medium pH interaction differentially affects root and shoot metabolism in Arabidopsis // Front. Plant Sci. 2016. V. 7:29. doi: 10.3389/fpls.2016.00029
- Seok H-Y., Tran H. T., Lee S-Y., Moon Y-H. AtERF71/HRE2, an Arabidopsis AP2/ERF transcription factor gene, contains both positive and negative cis-regulatory elements in its promoter region involved in hypoxia and salt stress responses // Int J Mol Sci. 2022. V. 23: 5310. doi: 10.3390/ijms23105310
- Shelp B. J., Mullen R. T., Waller J. C. Compartmentation of GABA metabolism raises intriguing questions // Trends Plant Sci. 2012. V. 17. P. 57–59. doi: 10.1016/j.tplants.2011.12.006
- Sievers F., Higgins D. G. Clustal Omega, accurate alignment of very large numbers of sequences // Methods Mol Biol. 2014. V. 1079. P. 105–116. doi: 10.1007/978-1-62703-646-7_6
- Terce-Laforgue T., Mack G., Hirel B. New insights towards the function of glutamate dehydrogenase revealed during source-sink transition of tobacco (Nicotiana tabacum L.) plants grown under different nitrogen regimes // Physiol. Plant. 2004. V. 120. P. 220–228. doi: 10.1111/j.0031-9317.2004.0241.x.
- Turchi L., Baima S., Morelli G., Ruberti I. Interplay of HD-Zip II and III transcription factors in auxin-regulated plant development // J. Exp. Bot. 2015. V. 66. P. 5043–5053. doi: 10.1093/jxb/erv174
- Van Dongen J. T., Licausi F. Oxygen sensing and signaling // Annu. Rev. Plant Biol. 2015. V. 66. P. 345–367. doi: 10.1146/annurev-arplant-043014-114813
- Vartapetian B., Jackson M. Plant adaptations to anaerobic stress // Annals of Botany. 1997. V. 79. P. 3–20. doi: 10.1093/oxfordjournals.aob.a010303
- Wenger R. H., Stiehl D. P., Camenisch G. Integration of oxygen signaling at the consensus HRE // Sci. STKE. 2005. V. 306: re12. doi: 10.1126/stke.3062005re12
- Xia X., Kungr A. L. Preferential binding of HIF-1 to transcriptionally active loci determines cell-type specific response to hypoxia // Genome Biol. 2009. V. 10: R113. doi: 10.1186/gb-2009-10-10-r113
- Yang C. Y., Hsu F-C., Li J-P., Wang N-N., Shih M-C. The AP2/ERF transcription factor AtERF73/HRE1 modulates ethylene responses during hypoxia in Arabidopsis // Plant Physiol. 2011. V. 156. P. 202–212. doi: 10.1104/pp.111.172486
Дополнительные файлы
