Immunomodulatory effect of bifido- and lactobacilli complex on non-specific humoral immunity of sturgeon fish hybrids

Capa

Citar

Texto integral

Resumo

The effect of bifido- and lactobacilli complex on some indices of non-specific humoral immunity of sturgeon hybrid Acipenser gueldaenstaedti Brandt × A. baeri Brandt has been studied. The level of antimicrobial properties, C-reactive protein, lysozyme and the content of non-specific immune complexes in serum were studied. The study showed a high level of bacteriostatic activity and lysozyme, low content of nonspecific immune complexes in the experimental groups compared to the control, which indicates the immunostimulating effect of bifidobacteria and lactobacilli complex on nonspecific mechanisms of antibacterial defence of fish.

Texto integral

Acesso é fechado

Sobre autores

А. Zhandalgarova

Astrakhan State Technical University

Email: daniil@ibiw.ru
Rússia, Astrakhan

D. Mikryakov

Papanin Institute for Вiology of Inland Waters RAS

Autor responsável pela correspondência
Email: daniil@ibiw.ru
Rússia, st pos. Borok

Yu. Grozesku

Astrakhan State Technical University

Email: daniil@ibiw.ru
Rússia, Astrakhan

A. Bakhareva

Astrakhan State Technical University; Moscow State University of Technology and Management named after K.G. Razumovsky

Email: daniil@ibiw.ru
Rússia, Astrakhan; Moscow

Т. Suvorova

Papanin Institute for Вiology of Inland Waters RAS

Email: daniil@ibiw.ru
Rússia, st pos. Borok

T. Subbotkina

Papanin Institute for Вiology of Inland Waters RAS

Email: daniil@ibiw.ru
Rússia, st pos. Borok

M. Subbotkin

Papanin Institute for Вiology of Inland Waters RAS

Email: daniil@ibiw.ru
Rússia, st pos. Borok

S. Kuzmicheva

Papanin Institute for Вiology of Inland Waters RAS

Email: daniil@ibiw.ru
Rússia, st pos. Borok

Bibliografia

  1. Бухарин О.В., Васильев Н.В. Лизоцим и его роль в биологии и медицине. Томск: Изд-во Том. ун-та, 1974. 184 с.
  2. Гриневич Ю.А., Алферов А.Н. Определение иммунных комплексов в крови онкологических больных // Лабораторное дело. 1981. № 8. С.493–496.
  3. Жандалгарова А.Д., Бахарева А.А., Грозеску Ю.Н. Оценка влияния пробиотического препарата на энтеросорбенте «Флорин форте» на физиолого-иммунологическое состояние бестера // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. 2023. №. 4. С. 42–47. doi: 10.24143/2073-5529-2023-4-42-47
  4. Зуенко В.А., Лактионов К.С., Правдин И.В., Кравцова Л.З., Ушакова Н.А. Влияние кормового пробиотика на основе бактерий Bacillus subtilis на пищеварение рыб при садковом выращивании // Вопросы ихтиологии. 2017. Т. 57. № 1. С. 112–117. doi: 10.7868/S0042875217010179
  5. Койко Р., Саншайн Д., Бенджамини Э. Иммунология. М.: Изд. центр Академия, 2008. 368 с.
  6. Кузьмина В.В. Физиолого-биохимические основы экзотрофии рыб. М.: Наука, 2005. 300 с.
  7. Микряков В.Р. Закономерности формирования приобретенного иммунитета у рыб. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод РАН, 1991. 153 c.
  8. Назаров П.Г. Пентраксины в реакциях врожденного и приобретенного иммунитета, организации матрикса, фертильности // Медицинский академический журнал. 2010. Т. 10. № 4. С. 107–124.
  9. Пономарев С.В., Грозеску Ю.Н., Бахарева А.А. Индустриальное рыбоводство. СПб: Лань, 2013. 420 с.
  10. Ройт А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология. М.: Мир, 2000. 592 с.
  11. Сергина Ю. А., Жандалгарова А. Д., Сергеева Ю. В., Бахарева А. А., Грозеску Ю. Н., Лагуткина Л. Ю. Влияние пробиотика, иммобилизованного на энтеросорбенте, на интенсивность роста и физиологические показатели красной тиляпии (Oreochromis mossambicus × Oreochromis niloticus) // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. 2023. № 1. С. 64–71. doi: 10.24143/2073-5529-2023-1-64-71
  12. Субботкина Т. А., Субботкин М. Ф. Содержание лизоцима в органах и сыворотке крови у различных видов рыб р. Волги // Журн. эволюционной биохимии физиол. 2003. Т. 39. № 5. С. 430–437.
  13. Суворова Т. А., Силкина Н. И. Влияние антибактериального и пробиотического препаратов на специфический и неспецифический иммунитет и окислительные процессы в организме рыб // Труды Института биологии внутренних вод им. И. Д. Папанина РАН. 2019. № 87 (90). С. 62–70. doi: 10.24411/0320-3557-2019-10020
  14. Шульга Е. А. Пробиотики в кормлении осетровых рыб при товарном выращивании. Автореф. дисс. … канд. биол. наук. Астрахань. АГТУ, 2009. 24 с.
  15. Щербина М. А., Гамыгин Е. А. Кормление рыб в пресноводной аквакультуре. М.: ВНИРО, 2006. 360 с.
  16. Юхименко Л. Н., Бычкова Л. И., Гаврилин К. В. Испытания лечебного комбикорма с субалином в рыбхозах Московской области // Рыбное хозяйство. Сер. Болезни гидробионтов в аквакультуре: Аналит. и реф. инф. М.: ВНИЭРХ, 2002. Вып. 2. С. 18–27.
  17. Ai Q., Xu H., Mai K., Xu W., Wang J., Zhang W. Effects of dietary supplementation of Bacillus subtilis and fructooligosaccharide on growth performance, survival, non-specific immune response and disease resistance of juvenile large yellow croaker, Larimichthys crocea // Aquaculture. 2011. V. 317. P. 155–161. doi: 10.1016/j.aquaculture.2011.04.036
  18. Akhter N., Wu.B., Memon A. M., Mohsin M. Probiotics and prebiotics associated with aquaculture: a review // Fish Shellfish Immunol. 2015. V. 45. P. 733–741. doi: 10.1016/j.fsi.2015.05.038
  19. Akrami R., Nasri‐Tajan M., Jahedi A., Jahedi M., Mansour M. R., Jafarpour S. A. Effects of dietary synbiotic on growth, survival, lactobacillus bacterial count, blood indices and immunity of beluga (Huso huso Linnaeus, 1754) juvenile // Aquaculture Nutrition. 2015. V. 21. P. 952–959. https://doi.org/10.1111/anu.12219.
  20. Askarian F., Zhou Z., Olsen R. E., Sperstad S., Ringø E. Culturable autochthonous gut bacteria in Atlantic salmon (Salmo salar L.) fed diets with or without chitin. Characterization by 16S rRNA gene sequencing, ability to produce enzymes and in vitro growth inhibition of four fish pathogens // Aquaculture. 2012. V. 326. P. 1–8. doi: 10.1016/j.aquaculture.2011.10.016
  21. Bazari M. S., Pourjaafari M. The effects of four types of specific probiotic on growthperformance, liver enzymes and immune indices of juvenile Persian sturgeon (Acipenser persicus) // Iranian Journal of Fisheries Sciences. 2021. V. 20. №4. P. 1179-1191. doi: 10.22092/ijfs.2021.350966.0
  22. Beck B. R., Kim D., Jeon J., Lee S-M., Kim H. K., Kim O-J., Lee J. I., Suh B. S., Do H. K., Lee K. H., Holzapfel W. H., Hwang J. Y., Kwon M. G., Song S. K. The effects of combined dietary probiotics Lactococcus lactis BFE920 and Lactobacillus plantarum FGL0001 on innate immunity and disease resistance in olive flounder (Paralichthys olivaceus) // Fish Shellfish Immunol. 2015. V. 42. P. 177–183. doi: 10.1016/j.fsi.2014.10.035
  23. Campoverde C., Milne D. J., Estévez A., Duncan N., Secombes C. J., Andree K. B. Ontogeny and modulation after PAMPs stimulation of β-defensin, hepcidin, and piscidin antimicrobial peptides in meagre (Argyrosomus regius) // Fish Shellfish Immun. 2017. Vol. 69. P. 200–210. doi: 10.1016/j.fsi.2017.08.026
  24. Egerton S., Culloty S., Whooley J., Stanton C., Ross R. P. The gut microbiota of marine fish // Front Microbiol. 2018. V. 9. P. 873. doi: 0.3389/fmicb.2018.00873
  25. Frei R, Akdis M, O’Mahony L. Prebiotics, probiotics, synbiotics, and the immune system: experimental data and clinical evidence // Curr Opin Gastroenterol. 2015. V. 31. №2. P. 153–158. doi: 10.1097/MOG.0000000000000151
  26. Ghanbari M, Kneifel W, Domig K. J. A new view of the fish gut microbiome: advances from next-generation sequencing // Aquaculture. 2015. V. 448. P. 464–475. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2015.06.033
  27. Ghodrati M., Islami H. R., Shekarabi S. P.H., Masouleh A. S., Mehrgan M. S. Combined effects of enzymes and probiotics on hemato-biochemical parameters and immunological responses of juvenile Siberian sturgeon (Acipenser baerii) // Fish and Shellfish Immunology. 2021. V. 112. P. 116–124. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2021.03.003
  28. Gilbert J. A., Quinn R. A., Debelius J., Xu Z. Z., Morton J., Garg N., Jansson J. K., Dorrestein P. C., Knight R. Microbiome-wide association studies link dynamic microbial consortia to disease // Nature. 2016. V. 535. P. 94–103. doi: 10.1038/nature18850
  29. Hamilton-Miller J.M, Gibson G.R, Bruck W. Some insights into the derivation and early uses of the word ‘probiotic’ // Br. J. Nutr. 2003. V. 90.№ 4. P. 845. doi: 10.1079/bjn2003954
  30. Hassani M. H.S., Jourdehi A. Y., Zelti A. H., Masouleh A. S., Lakani F. B. Effects of commercial superzist probiotic on growth performance and hematological and immune indices in fingerlings Acipenser baerii // Aquaculture International. 2020. V. 28. P. 377–387. https://doi.org/10.1007/s10499-019-00468-1
  31. Jang W. J., Lee J. M., Hasan M. T., Lee B-J., Lim S. G., Kong I-S. Effects of probiotic supplementation of a plant-based protein diet on intestinal microbial diversity, digestive enzyme activity, intestinal structure, and immunity in olive flounder (Paralichthys olivaceus) // Fish Shellfish Immunol. 2019. V. 92. P. 719–727. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.02000
  32. Ou W., Yu G., Zhang, Y., Mai K. Recent progress in the understanding of the gut microbiota of marine fishes // Mar Life Sci Technol. 2021. V. 3. P. 434–448. https://doi.org/10.1007/s42995-021-00094-y
  33. Pamp S. J., Harrington E. D., Quake S. R., Relman D. A., Blainey P. C. Single-cell sequencing provides clues about the host interactions of segmented filamentous bacteria (SFB) // Genome Res. 2012. V. 22. P. 1107–1119. doi: 10.1101/гр.131482.111
  34. Pavlov D. S., Ushakova N. A., Pravdin V. G., Kravtsova L. Z., Liman S. A., Ponomarev S. V. The ProStor and Ferm KM-1 complex probiotic additives – innovation biotechnological preparations for enhancing the quality of domestic fish mixed feed // Nova Sci. Publ. 2014. V. 20. P. 239–244. doi: 10.1201/b17717-24
  35. Ray A., Ghosh K., Ringø E. Enzyme-producing bacteria isolated from fish gut: a review // Aquac. Nutr. 2012. V. 18. Is. 5. P. 465–492. doi: 10.1111/j.1365-2095.2012.00943.x
  36. Schäperclaus W. Fischkrankheiten, vols. 1 and 2. Akademie-Verlag, Berlin. 1979. 1089 p. 4th edition.
  37. Van der Marel M. C. Carp mucus and its role in mucosal defense: PhD Thesis, Wageningen University. The Netherlands. 2012. 189 p.
  38. Van Muiswinkel W., Vervoorn-Van Der Wal B. The immune system of fish // Fish Diseases Disorders. 2006. V. 1. P. 678–701. doi: 10.1079/9780851990156.0678
  39. Wang C, Liu Y, Sun G, Li X, Liu Z. Growth, immune response, antioxidant capability, and disease resistance of juvenile Atlantic salmon (Salmo salar L.) fed Bacillus velezensis V4 and Rhodotorula mucilaginosa compound // Aquaculture. 2019. V. 500. P. 65–74. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.09.052

Arquivos suplementares

Arquivos suplementares
Ação
1. JATS XML
Baixar

Declaração de direitos autorais © Russian Academy of Sciences, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».