Миграция через узкие поры приводит к повышенной клоногенной активности и химиорезистентности контрольных и радиорезистентных клеток немелкоклеточного рака легкого человека
- Авторы: Малахов Ф.А.1, Пустовалова М.В.1, Александрова А.В.1, Контарева Е.Г.1, Смирнова А.В.1, Нофал З.1, Осипов А.Н.1,2, Леонов С.В.1
-
Учреждения:
- Московский физико-технический институт (Национальный исследовательский университет)
- Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России
- Выпуск: Том 70, № 2 (2025)
- Страницы: 9-15
- Раздел: Радиационная биология
- URL: https://journals.rcsi.science/1024-6177/article/view/361486
- DOI: https://doi.org/10.33266/1024-6177-2025-70-2-9-15
- ID: 361486
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Цель: Лучевая терапия является одним из методов лечения немелкоклеточного рака легкого (НМРЛ), однако ее успешность ограничена в связи с возникновением и развитием опухолевой радиорезистентности. Ранее in vitro и in vivo исследования показали, что в зависимости от исследуемых клеточных линий и вида радиационного воздействия, облучение может изменить агрессивность опухоли, уменьшая или повышая инвазивность раковых клеток, оставшихся после облучения. Однако то, как меняются фенотипические признаки самих выживших после облучения опухолевых клеток в результате их миграции, происходящей в ограниченном пористом пространстве опухолевой ткани, изучено не достаточно. Целью настоящего исследования было изучение последствий влияния биофизического воздействия (миграции в ограниченном пространстве) на фенотипические признаки двух изогенных клеточных линий НМРЛ, имеющих различные исходные показатели радиорезистентности и склонности к инвазивности и репопуляции.
Материал и методы: Биофизические исследования на клеточной линии A549 и ее изогенной радиорезистентной сублинии A549IR проводились путем их последовательной трехкратной миграции в ограниченном пространстве мембранных пор с диаметром 8 мкм в камерах Бойдена под влиянием градиента концентрации фетальной бычьей сыворотки. Способность к репопуляции промигрировавших через мембраны популяций клеток была охарактеризована с помощью клоногенного анализа. Экспрессия маркеров − Ki67 (активность в клеточном цикле и реорганизации хроматина), виментина (структурный белок цитоскелета, связанный с миграцией и метастазированием) и степени поглощения флуоресцентных наносенсоров (склонность к метастазированию) − были оценены методом количественного многопараметрического анализа цифровых изображений индивидуальных клеток, полученных с помощью микроскопии высокого разрешения (High Content Imaging and Analysis). Стандартный метод определения клеточной массы с помощью красителя сульфородамина Б после воздействия различных концентраций цисплатина использовался для оценки химиочувствительности опухолевых клеток до и после миграции.
Результаты и заключение: Полученные результаты свидетельствуют о том, что повторяющаяся миграция через ограниченное порами 8 мкм пространство, имитирующее условия внеклеточного матрикса опухолевого микроокружения, скорее всего вызывает деформацию ядер клеток НМРЛ, снижая Ki67- связанную реорганизацию хроматина и ремодулируя экспрессию генов, включая виментин, что увеличивало химиорезистентность и способность к репопуляции и метастазированию таких клеток вне зависимости от их исходной миграционной способности, а так же химио- и радиочувствительности.
Об авторах
Ф. А. Малахов
Московский физико-технический институт (Национальный исследовательский университет)
Email: pu.margo@mail.ru
Долгопрудный
М. В. Пустовалова
Московский физико-технический институт (Национальный исследовательский университет)
Email: pu.margo@mail.ru
Долгопрудный
А. В. Александрова
Московский физико-технический институт (Национальный исследовательский университет)
Email: pu.margo@mail.ru
Долгопрудный
Е. Г. Контарева
Московский физико-технический институт (Национальный исследовательский университет)
Email: pu.margo@mail.ru
Долгопрудный
А. В. Смирнова
Московский физико-технический институт (Национальный исследовательский университет)
Email: pu.margo@mail.ru
Долгопрудный
З. Нофал
Московский физико-технический институт (Национальный исследовательский университет)
Email: pu.margo@mail.ru
Долгопрудный
А. Н. Осипов
Московский физико-технический институт (Национальный исследовательский университет); Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России
Email: pu.margo@mail.ru
Долгопрудный; Москва
С. В. Леонов
Московский физико-технический институт (Национальный исследовательский университет)
Email: pu.margo@mail.ru
Долгопрудный
Список литературы
- Aupérin A., Le Péchoux C., Rolland E., et al. Meta-Analysis of Concomitant Versus Sequential Radiochemotherapy in Locally Advanced Non-Small-Cell Lung Cancer. J Clin On col. 2010;28;13:2181-2190. doi: 10.1200/JCO.2009.26.2543. PMID: 20351327.
- Friedl P., Wolf K. Tumour-Cell Invasion and Migration: Diversity and Escape Mechanisms. Nat Rev Cancer. 2003;3;5:362 374. doi: 10.1038/nrc1075. PMID: 12724734.
- Fanfone D., Wu Z., Mammi J., et al. Confined Migration Promotes Cancer Metastasis Through Resistance to Anoikis and Increased Invasiveness. Elife. 2022;11:e73150. doi:10.7554/ eLife.73150. PMID: 35256052.
- Fujita, M., Yamada, S., & Imai, T. (2015). Irradiation induces diverse changes in invasive potential in cancer cell lines. Seminars in cancer biology, 35, 45–52. https:// doi.org/10.1016/j.semcancer.2015.09.003
- Shieh A.C. Biomechanical Forces Shape the Tumor Microenvironment. Ann Biomed Eng. 2011;39;5:1379-1389. doi:10.1007/ s10439-011-0252-2. PMID: 21253819.
- Pustovalova M., Alhaddad L., Smetanina N., et al. The p53 53BP1-Related Survival of A549 and H1299 Human Lung Cancer Cells after Multifractionated Radiotherapy Demonstrated Different Response to Additional Acute X-ray Exposure. Int J Mol Sci. 2020;21;9:3342. doi: 10.3390/ijms21093342. PMID: 32397297.
- Merkher Y., Kontareva E., Bogdan E., et al. Encapsulation and Adhesion of Nanoparticles as a Potential Biomarker for TNBC Cells Metastatic Propensity. Sci Rep. 2023;13;1:12289. doi: 10.1038/s41598-023-33540-1. PMID: 37516753.
- Wang M., Yi J., Gao H., et al. Radiation-Induced YAP/TEAD4 Binding Confers Non-Small Cell Lung Cancer Radioresistance Via Promoting NRP1 Transcription. Cell Death Dis. 2024;15;8:619. doi: 10.1038/s41419-024-07017-6. PMID: 39187525.
- Alhaddad L., Pustovalova M., Blokhina T., Chuprov-Netochin R., Osipov A.N., Leonov S. IR-Surviving NSCLC Cells Exhibit Different Patterns of Molecular and Cellular Reactions Relating to the Multifraction Irradiation Regimen and p53-Family Proteins Expression. Cancers (Basel). 2021;13;11:2669. doi: 10.3390/cancers13112669. PMID: 34071477.
- Gan, Z., Ding, L., Burckhardt, C. J., Lowery, J., Zaritsky, A., Sitterley, K., Mota, A., Costigliola, N., Starker, C.G., Voytas, D.F., Tytell, J., Goldman, R.D., & Danuser, G. (2016). Vimentin Intermediate Filaments Template Microtubule Networks to Enhance Persistence in Cell Polarity and Directed Migration. Cell systems, 3(3), 252–263.e8.
- Mendez, M. G., Restle, D., & Janmey, P. A. (2014). Vimentin enhances cell elastic behavior and protects against compressive stress. Biophysical journal, 107(2), 314–323. https://doi. org/10.1016/j.bpj.2014.04.050/
- Hu, J., Li, Y., Hao, Y., Zheng, T., Gupta, S. K., Parada, G. A., Wu, H., Lin, S., Wang, S., Zhao, X., Goldman, R. D., Cai, S., & Guo, M. (2019). High stretchability, strength, and toughness of living cells enabled by hyperelastic vimentin intermediate filaments. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 116(35), 17175–17180. https:// doi.org/10.1073/pnas.1903890116.
- Xuan, B., Ghosh, D., Cheney, E. M., Clifton, E. M., & Dawson, M. R. (2018). Dysregulation in Actin Cytoskeletal Organization Drives Increased Stiffness and Migratory Persistence in Polyploidal Giant Cancer Cells. Scientific reports, 8(1), 11935. https://doi.org/10.1038/s41598-018-29817-5.
- Esue O., Carson A.A., Tseng Y., Wirtz D. A Direct Interaction between Actin and Vimentin Filaments Mediated by the Tail Domain of Vimentin. J Biol Chem. 2006;281;41:30393-30399. doi: 10.1074/jbc.M605452200. PMID: 16901892.
- Shen Q, Hill T, Cai X, Bui L, Barakat R, Hills E, Almugaiteeb T, Babu A, Mckernan PH, Zalles M, Battiste JD, Kim YT. Physical confinement during cancer stem cell-like behavior. Cancer Lett. 2021 May 28;506:142-151. doi: 10.1016/j.canlet.2021.01.020
- Bunn P.A. Jr. The Expanding Role of Cisplatin in the Treatment of Non-Small-Cell Lung Cancer. Semin Oncol. 1989;16;4;6:10 21. PMID: 2548280.
- Cho K., Choi E.S., Kim J.H., Son J.W., Kim E. Numerical Learning of Deep Features from Drug-Exposed Cell Images to Calculate IC50 without Staining. Sci Rep. 2022;12;1:6610. Published 2022 Apr 22. doi: 10.1038/s41598-022-10643-9. PMID: 35459284.
- Xuan, B., Ghosh, D., Jiang, J., Shao, R., & Dawson, 19. M.R. (2020). Vimentin filaments drive migratory persistence in polyploidal cancer cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 117(43), 26756–26765. https://doi. org/10.1073/pnas.2011912117
- Valeriote, F. and L. van Putten, Proliferation-dependent cytotoxicity of anticancer agents: a review. Cancer research, 1975. 35(10): p. 2619-2630;
- Stover, D.G., et al, The Role of Proliferation in Determining Response to Neoadjuvant Chemotherapy in Breast Cancer: A Gene Expression–Based Meta-Analysis. Clinical Cancer Research, 2016. 22(24): p. 6039-6050.
- Tubiana, M. et al, The long-term prognostic significance of the thymidine labelling index in breast cancer. International journal of cancer, 1984. 33(4): p. 441−445
- Miller, I. et al, Ki67 is a graded rather than a binary marker of proliferation versus quiescence. Cell reports, 2018. 24(5): p. 1105−1112. e5
- Sobecki, M., et al, The cell proliferation antigen Ki-67 organises heterochromatin. elife, 2016. 5: p. e13722;
- Mrouj, K., et al, Ki 67 regulates global gene expression and promotes sequential stages of carcinogenesis. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2021. 118(10): p. e2026507118.
Дополнительные файлы

