Влияние приема фосфолипидов на формирование поведенческих характеристик у лабораторных мышей C57BL/6J

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Препараты на основе фосфолипидов широко используются в качестве гепатопротекторных, нейропротекторных и антистрессовых лекарств, а также в составе биологически активных добавок. Кроме этого, лецитин, содержащий в своем составе до 70% смеси фосфолипидов – фосфатидилхолина, фосфатидилэтаноламина, фосфатидилинозитола и фосфатидной кислоты, повсеместно применяется в пищевом производстве в качестве эмульгатора. Дозы этих биологически активных веществ в диете современного человека могут быть очень высоки. Ранее мы показали, что хроническое воспаление кишки у мышей с мутацией в гене Muc2 приводит к нарушению поведения одновременно с существенным повышением содержания ряда форм фосфолипидов в клетках эпителия кишечника: фосфатидилхолина, фосфатидилсерина и фосфатидной кислоты. В данной работе мы исследовали эффекты длительного приема смеси этих фосфолипидов, а также эффекты длительного приема соевого лецитина на формирование поведенческих паттернов у мышей. Животные, длительно принимавшие смесь фосфолипидов, не демонстрировали естественного предпочтения по отношению к самке в тесте с двумя интрудерами (самкой и самцом). В тесте на социальные запахи они также не различали запахи самки и самца, в то время как дискриминация несоциальных запахов сохранилась. Кроме того, мы выявили снижение признаков компульсивности и тревожности при этом и отдельные черты шизофреноподобного поведения у таких животных. Прием соевого лецитина оказал схожее влияние на социальное поведение и компульсивные черты и вызвал повышение агрессии у самцов. Таким образом, долговременный перинатальный прием как смеси фосфолипидов (фосфатидилхолина, фосфатидилсерина и фосфатидной кислоты), так и соевого лецитина способен оказывать влияние на различные аспекты поведения у мышей.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Л. В. Болдырева

Научно-исследовательский институт нейронаук и медицины

Автор, ответственный за переписку.
Email: kozhevnikovaen@neuronm.ru
Россия, Новосибирск

М. В. Морозова

Научно-исследовательский институт нейронаук и медицины

Email: kozhevnikovaen@neuronm.ru
Россия, Новосибирск

К. С. Павлов

Научно-исследовательский институт нейронаук и медицины

Email: kozhevnikovaen@neuronm.ru
Россия, Новосибирск

Е. Н. Кожевникова

Научно-исследовательский институт нейронаук и медицины

Email: kozhevnikovaen@neuronm.ru
Россия, Новосибирск

Список литературы

  1. Maggini S, Pierre A, Calder PC (2018) Immune Function and Micronutrient Requirements Change over the Life Course. Nutrients 10(10). https://doi.org/10.3390/nu10101531
  2. Zhao M, Tuo H, Wang S, Zhao L (2020) The Effects of Dietary Nutrition on Sleep and Sleep Disorders. Mediat Inflamm 2020: 3142874. https://doi.org/10.1155/2020/3142874
  3. Adamovich Y, Aviram R, Asher G (2015) The emerging roles of lipids in circadian control. Biochim Biophys Acta 1851(8): 1017–1025. https://doi.org/10.1016/j.bbalip.2014.11.013
  4. Ko CW, Qu J, Black DD, Tso P (2020) Regulation of intestinal lipid metabolism: current concepts and relevance to disease. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 17(3): 169–183. https://doi.org/10.1038/s41575-019-0250-7
  5. Shi J, Fan J, Su Q, Yang Z (2019) Cytokines and Abnormal Glucose and Lipid Metabolism. Front Endocrinol (Lausanne) 10: 703. https://doi.org/10.3389/fendo.2019.00703
  6. Hachem M, Ahmmed MK, Nacir-Delord H (2023) Phospholipidomics in Clinical Trials for Brain Disorders: Advancing our Understanding and Therapeutic Potentials. Mol Neurobiol. https://doi.org/10.1007/s12035-023-03793-y
  7. Ma X, Li X, Wang W, Zhang M, Yang B, Miao Z (2022) Phosphatidylserine, inflammation, and central nervous system diseases. Front Aging Neurosci 14: 975176. https://doi.org/10.3389/fnagi.2022.975176
  8. Simons K, Toomre D (2000) Lipid rafts and signal transduction. Nat Rev Mol Cell Biol 1(1): 31–39. https://doi.org/10.1038/35036052
  9. Chakraborty M, Jiang XC (2013) Sphingomyelin and its role in cellular signaling. Adv Exp Med Biol 991: 1–14. https://doi.org/10.1007/978-94-007-6331-9_1
  10. Ruysschaert JM, Lonez C (2015) Role of lipid microdomains in TLR-mediated signalling. Biochim Biophys Acta 1848(9): 1860–1867. https://doi.org/10.1016/j.bbamem.2015.03.014
  11. Estes RE, Lin B, Khera A, Davis MY (2021) Lipid Metabolism Influence on Neurodegenerative Disease Progression: Is the Vehicle as Important as the Cargo? Front Mol Neurosci 14: 788695. https://doi.org/10.3389/fnmol.2021.788695
  12. Hamilton LK, Fernandes KJL (2018) Neural stem cells and adult brain fatty acid metabolism: Lessons from the 3xTg model of Alzheimer’s disease. Biol Cell 110(1): 6–25. https://doi.org/10.1111/boc.201700037
  13. Tamura Y, Yamato M, Kataoka Y (2022) Animal Models for Neuroinflammation and Potential Treatment Methods. Front Neurol 13: 890217. https://doi.org/10.3389/fneur.2022.890217
  14. Falabella M, Vernon HJ, Hanna MG, Claypool SM, Pitceathly RDS (2021) Cardiolipin, Mitochondria, and Neurological Disease. Trends Endocrinol Metab 32(4): 224–237. https://doi.org/10.1016/j.tem.2021.01.006
  15. Aufschnaiter A, Kohler V, Diessl J, Peselj C, Carmona-Gutierrez D, Keller W, Buttner S (2017) Mitochondrial lipids in neurodegeneration. Cell Tissue Res 367(1): 125–140. https://doi.org/10.1007/s00441-016-2463-1
  16. Boldyreva LV, Morozova MV, Saydakova SS, Kozhevnikova EN (2021) Fat of the Gut: Epithelial Phospholipids in Inflammatory Bowel Diseases. Int J Mol Sci 22(21). https://doi.org/10.3390/ijms222111682
  17. Petan T, Mancek-Keber M (2022) Half is enough: Oxidized lysophospholipids as novel bioactive molecules. Free Radic Biol Med 188: 351–362. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2022.06.228
  18. Borisova MA, Snytnikova OA, Litvinova EA, Achasova KM, Babochkina TI, Pindyurin AV, Tsentalovich YP, Kozhevnikova EN (2020) Fucose Ameliorates Tryptophan Metabolism and Behavioral Abnormalities in a Mouse Model of Chronic Colitis. Nutrients 12(2). https://doi.org/10.3390/nu12020445
  19. Morozova MV, Borisova MA, Snytnikova OA, Achasova KM, Litvinova EA, Tsentalovich YP, Kozhevnikova EN (2022) Colitis-associated intestinal microbiota regulates brain glycine and host behavior in mice. Sci Rep 12(1): 16345. https://doi.org/10.1038/s41598-022-19219-z
  20. Borisova MA, Achasova KM, Morozova KN, Andreyeva EN, Litvinova EA, Ogienko AA, Morozova MV, Berkaeva MB, Kiseleva E, Kozhevnikova EN (2020) Mucin-2 knockout is a model of intercellular junction defects, mitochondrial damage and ATP depletion in the intestinal epithelium. Sci Rep 10(1): 21135. https://doi.org/10.1038/s41598-020-78141-4
  21. Roy R, Paul R, Bhattacharya P, Borah A (2023) Combating Dopaminergic Neurodegeneration in Parkinson’s Disease through Nanovesicle Technology. ACS Chem Neurosci 14(16): 2830–2848. https://doi.org/10.1021/acschemneuro.3c00070
  22. Graham DB, Xavier RJ (2020) Pathway paradigms revealed from the genetics of inflammatory bowel disease. Nature 578(7796): 527–539. https://doi.org/10.1038/s41586-020-2025-2
  23. Geyer MA, Dulawa SC (2003) Assessment of murine startle reactivity, prepulse inhibition, and habituation. Curr Protoc Neurosci Chapter 8: Unit 8 17. https://doi.org/10.1002/0471142301.ns0817s24
  24. Cadenhead KS, Geyer MA, Braff DL (1993) Impaired startle prepulse inhibition and habituation in patients with schizotypal personality disorder. Am J Psychiatry 150(12): 1862–1867. https://doi.org/10.1176/ajp.150.12.1862
  25. Wolff AR, Bilkey DK (2010) The maternal immune activation (MIA) model of schizophrenia produces pre-pulse inhibition (PPI) deficits in both juvenile and adult rats but these effects are not associated with maternal weight loss. Behav Brain Res 213(2): 323–327. https://doi.org/10.1016/j.bbr.2010.05.008
  26. Braff DL, Geyer MA (1990) Sensorimotor gating and schizophrenia. Human and animal model studies. Arch Gen Psychiatry 47(2): 181–188. https://doi.org/10.1001/archpsyc.1990.01810140081011
  27. Белоусова ИИ, Гладких ДВ, Железова АИ, Стефанова НА, Колосова НГ, Амстиславская ТГ (2009) Возрастные аспекты репродуктивной функции самцов крыс с обычным и ускоренным темпом старения. Рос физиол журн им ИМ Сеченова 95(11): 1258–1267. [Belousova II, Gladkich DV, Ghelezova AI, Stephanova NA, Kolosova NG, Amstislavskaya TG (2009) Age Aspeccts of Neurohormonal and Neurochemical Regulation of Sexual Behavior in Male Rats. Russ J Physiol 95(11): 1258–1267. (In Russ)].
  28. Michalikova S, van Rensburg R, Chazot PL, Ennaceur A (2010) Anxiety responses in Balb/c, c57 and CD-1 mice exposed to a novel open space test. Behav Brain Res 207(2): 402–417. https://doi.org/10.1016/j.bbr.2009.10.028
  29. Новиков СН (1988) Феромоны и размножение млекопитающих: физиол. аспекты. Наука. Ленингр отд-ние. [Novikov SN (1988) Pheromones and reproduction in mammals. Nauka. (LO). 1988. (In Russ)].
  30. Amstislavskaya TG, Bulygina VV, Tikhonova MA, Maslova LN (2013) Social isolation during peri-adolescence or adulthood: effects on sexual motivation, testosterone and corticosterone response under conditions of sexual arousal in male rats. Chin J Physiol 56(1): 36–43. https://doi.org/10.4077/CJP.2013.BAA074
  31. Zolotykh MA, Kozhevnikova EN (2017) The effect of social experience on olfactory preference in male mice. Appl Animal Behav Sci 189: 85–90. https://doi.org/10.1016/j.applanim.2017.01.013
  32. Joel D (2006) Current animal models of obsessive compulsive disorder: a critical review. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry 30(3): 374–388. https://doi.org/10.1016/j.pnpbp.2005.11.006
  33. Takahashi H, Komatsu S, Nakahachi T, Ogino K, Kamio Y (2016) Relationship of the Acoustic Startle Response and Its Modulation to Emotional and Behavioral Problems in Typical Development Children and Those with Autism Spectrum Disorders. J Autism Dev Disord 46(2): 534–543. https://doi.org/10.1007/s10803-015-2593-4
  34. Berding K, Vlckova K, Marx W, Schellekens H, Stanton C, Clarke G, Jacka F, Dinan TG, Cryan JF (2021) Diet and the Microbiota-Gut-Brain Axis: Sowing the Seeds of Good Mental Health. Adv Nutr 12(4): 1239–1285. https://doi.org/10.1093/advances/nmaa181
  35. Hamamah S, Amin A, Al-Kassir AL, Chuang J, Covasa M (2023) Dietary Fat Modulation of Gut Microbiota and Impact on Regulatory Pathways Controlling Food Intake. Nutrients 15(15). https://doi.org/10.3390/nu15153365
  36. Agagunduz D, Icer MA, Yesildemir O, Kocak T, Kocyigit E, Capasso R (2023) The roles of dietary lipids and lipidomics in gut-brain axis in type 2 diabetes mellitus. J Transl Med 21(1): 240. https://doi.org/10.1186/s12967-023-04088-5
  37. Pifferi F, Laurent B, Plourde M (2021) Lipid Transport and Metabolism at the Blood-Brain Interface: Implications in Health and Disease. Front Physiol 12: 645646. https://doi.org/10.3389/fphys.2021.645646
  38. Santos AL, Preta G (2018) Lipids in the cell: organisation regulates function. Cell Mol Life Sci 75(11): 1909–1927. https://doi.org/10.1007/s00018-018-2765-4
  39. Lowry TW, Kusi-Appiah AE, Fadool DA, Lenhert S (2023) Odor Discrimination by Lipid Membranes. Membranes (Basel) 13(2). https://doi.org/10.3390/membranes13020151
  40. Van der Veen JN, Kennelly JP, Wan S, Vance JE, Vance DE, Jacobs RL (2017) The critical role of phosphatidylcholine and phosphatidylethanolamine metabolism in health and disease. Biochim Biophys Acta Biomembr 1859(9 Pt B): 1558–1572. https://doi.org/10.1016/j.bbamem.2017.04.006
  41. Dennis EA (2015) Introduction to Thematic Review Series: Phospholipases: Central Role in Lipid Signaling and Disease. J Lipid Res 56(7): 1245–1247. https://doi.org/10.1194/jlr.E061101
  42. Johnson AA, Stolzing A (2019) The role of lipid metabolism in aging, lifespan regulation, and age-related disease. Aging Cell 18(6): e13048. https://doi.org/10.1111/acel.13048
  43. Farooqui AA, Horrocks LA (2005) Signaling and interplay mediated by phospholipases A2, C, and D in LA-N-1 cell nuclei. Reprod Nutr Dev 45(5): 613–631. https://doi.org/10.1051/rnd:2005049
  44. Nelson RK, Frohman MA (2015) Physiological and pathophysiological roles for phospholipase D. J Lipid Res 56(12): 2229–2237. https://doi.org/10.1194/jlr.R059220
  45. Salvi F, Gadda G (2013) Human choline dehydrogenase: medical promises and biochemical challenges. Arch Biochem Biophys 537(2): 243–252. https://doi.org/10.1016/j.abb.2013.07.018
  46. Leventis PA, Grinstein S (2010) The distribution and function of phosphatidylserine in cellular membranes. Annu Rev Biophys 39: 407–427. https://doi.org/10.1146/annurev.biophys.093008.131234
  47. Das P, Estephan R, Banerjee P (2003) Apoptosis is associated with an inhibition of aminophospholipid translocase (APTL) in CNS-derived HN2-5 and HOG cells and phosphatidylserine is a recognition molecule in microglial uptake of the apoptotic HN2-5 cells. Life Sci 72(23): 2617–2627. https://doi.org/10.1016/s0024-3205(03)00163-2
  48. Kay JG, Fairn GD (2019) Distribution, dynamics and functional roles of phosphatidylserine within the cell. Cell Commun Signal 17(1): 126. https://doi.org/10.1186/s12964-019-0438-z
  49. Lenoir G, D’Ambrosio JM, Dieudonne T, Copic A (2021) Transport Pathways That Contribute to the Cellular Distribution of Phosphatidylserine. Front Cell Dev Biol 9: 737907. https://doi.org/10.3389/fcell.2021.737907
  50. Kim HY, Akbar M, Kim YS (2010) Phosphatidylserine-dependent neuroprotective signaling promoted by docosahexaenoic acid. Prostagland Leukot Essent Fatty Acids 82(4-6): 165–172. https://doi.org/10.1016/j.plefa.2010.02.025
  51. More MI, Freitas U, Rutenberg D (2014) Positive effects of soy lecithin-derived phosphatidylserine plus phosphatidic acid on memory, cognition, daily functioning, and mood in elderly patients with Alzheimer’s disease and dementia. Adv Ther 31(12): 1247–1262. https://doi.org/10.1007/s12325-014-0165-1
  52. Bond P (2017) Phosphatidic acid: biosynthesis, pharmacokinetics, mechanisms of action and effect on strength and body composition in resistance-trained individuals. Nutr Metab (Lond) 14: 12. https://doi.org/10.1186/s12986-017-0166-6
  53. Zegarlinska J, Piascik M, Sikorski AF, Czogalla A (2018) Phosphatidic acid - a simple phospholipid with multiple faces. Acta Biochim Pol 65(2): 163–171. https://doi.org/10.18388/abp.2018_2592
  54. Pages C, Simon MF, Valet P, Saulnier-Blache JS (2001) Lysophosphatidic acid synthesis and release. Prostagland Other Lipid Mediat 64(1–4): 1–10. https://doi.org/10.1016/s0090-6980(01)00110-1
  55. Moolenaar WH (1995) Lysophosphatidic acid, a multifunctional phospholipid messenger. J Biol Chem 270(22): 12949–12952. https://doi.org/10.1074/jbc.270.22.12949
  56. Hines OJ, Ryder N, Chu J, McFadden D (2000) Lysophosphatidic acid stimulates intestinal restitution via cytoskeletal activation and remodeling. J Surg Res 92(1): 23–28. https://doi.org/10.1006/jsre.2000.5941
  57. Jedrzejewska-Szmek J, Dorman DB, Blackwell KT (2023) Making time and space for calcium control of neuron activity. Curr Opin Neurobiol 83: 102804. https://doi.org/10.1016/j.conb.2023.102804
  58. Parato J, Bartolini F (2021) The microtubule cytoskeleton at the synapse. Neurosci Lett 753: 135850. https://doi.org/10.1016/j.neulet.2021.135850
  59. Rojas-Charry L, Nardi L, Methner A, Schmeisser MJ (2021) Abnormalities of synaptic mitochondria in autism spectrum disorder and related neurodevelopmental disorders. J Mol Med (Berl) 99(2): 161–178. https://doi.org/10.1007/s00109-020-02018-2
  60. Pozo Devoto VM, Onyango IG, Stokin GB (2022) Mitochondrial behavior when things go wrong in the axon. Front Cell Neurosci 16: 959598. https://doi.org/10.3389/fncel.2022.959598
  61. Licht-Mayer S, Campbell GR, Canizares M, Mehta AR, Gane AB, McGill K, Ghosh A, Fullerton A, Menezes N, Dean J, Dunham J, Al-Azki S, Pryce G, Zandee S, Zhao C, Kipp M, Smith KJ, Baker D, Altmann D, Anderton SM, Kap YS, Laman JD, Hart BA, Rodriguez M, Watzlawick R, Schwab JM, Carter R, Morton N, Zagnoni M, Franklin RJM, Mitchell R, Fleetwood-Walker S, Lyons DA, Chandran S, Lassmann H, Trapp BD, Mahad DJ (2020) Enhanced axonal response of mitochondria to demyelination offers neuroprotection: implications for multiple sclerosis. Acta Neuropathol 140(2): 143–167. https://doi.org/10.1007/s00401-020-02179-x
  62. Khan MM, Paez HG, Pitzer CR, Alway SE (2023) The Therapeutic Potential of Mitochondria Transplantation Therapy in Neurodegenerative and Neurovascular Disorders. Curr Neuropharmacol 21(5): 1100–1116. https://doi.org/10.2174/1570159X05666220908100545
  63. Saydakova S, Morozova K, Snytnikova O, Morozova M, Boldyreva L, Kiseleva E, Tsentalovich Y, Kozhevnikova E (2023) The Effect of Dietary Phospholipids on the Ultrastructure and Function of Intestinal Epithelial Cells. Int J Mol Sci 24(2). https://doi.org/10.3390/ijms24021788
  64. Mayr JA (2015) Lipid metabolism in mitochondrial membranes. J Inherit Metab Dis 38(1): 137–144. https://doi.org/10.1007/s10545-014-9748-x
  65. Funai K, Summers SA, Rutter J (2020) Reign in the membrane: How common lipids govern mitochondrial function. Curr Opin Cell Biol 63: 162–173. https://doi.org/10.1016/j.ceb.2020.01.006
  66. Bathina S, Das UN (2023) Role of Mitochondrial Dysfunction in Cellular Lipid Homeostasis and Disease. Discov Med 35(178): 653–663. https://doi.org/10.24976/Discov.Med.202335178.64

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Поведенческие характеристики животных, длительно принимавших смесь ФЛ (фосфатидилсерина, фосфатиднокислоты и фосфатидилхолина). (a) – Увеличение пути в светлом отсеке в тесте Темно-светлая камера; (b) – увеличение общего пройденного пути в открытом поле в тесте Открытое поле; (c) – снижение числа закопанных шариков в тесте закапывания шариков; (d) – снижение габитуации в тесте акустической стартл-реакции; (e) – нарушение предпочтения в тесте на предпочтение социальных запахов; (f) – нарушения социального и полового предпочтения в тесте с двумя интрудерами. CO – контрольные животные C57BL/6J, PL – животные, длительно принимавшие смесь ФЛ. Данные представлены как среднее значение ± стандартная ошибка среднего, n = 10 для каждой группы, * – p < 0.05, ** – p < 0.01, ***– p < 0.001.

Скачать (166KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Поведенческие характеристики мышей после длительного приема лецитина. (a) – общий пройденный путь в открытом поле в тесте Открытое поле; (b) – снижение числа закопанных шариков в тесте закапывания шариков; (c) – нарушение предпочтения в тесте на предпочтение социальных запахов; (d) – нарушения социального и полового предпочтения в тесте с двумя интрудерами; (e) – повышение агрессии по отношению к самцам-интрудерам. CO – контрольные животные C57BL/6J, Lecithin – животные, длительно принимавшие соевый лецитин. Данные представлены как среднее значение ± стандартная ошибка среднего, n = 10 для каждой группы, * – p < 0.05, ** – p < 0.01, *** – p < 0.001.

Скачать (155KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».