БИОВЫЩЕЛАЧИВАНИЕ НИКЕЛЬСОДЕРЖАЩЕГО МЕТАЛЛУРГИЧЕСКОГО ШЛАКА ХЕМОЛИТОТРОФНЫМИ МИКРООРГАНИЗМАМИ ПРИ РАЗЛИЧНОЙ ТЕМПЕРАТУРЕ

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Исследован процесс биовыщелачивания металлургического шлака, содержащего никель и медь, при 40, 45 и 50°C. В экспериментах использованы микробные сообщества, росшие при 40 и 45°С, которые включали бактерии Leptospirillum ferriphilum и Sulfobacillus thermosulfidooxidans. Микробное сообщество, которое культивировали при 50°С, включало представителей S. thermosulfidooxidans и Acidiplasma sp. Показано, что растворение твердой фазы, окисление двухвалентного железа микроорганизмами были наибольшими при 45°C. При этом основное количество меди (95.5–100%) и никеля (92.3–100%) переходило в раствор в первые сутки биовыщелачивания. Исследование кинетики химического выщелачивания цветных металлов за 4 ч показало, что в присутствии 5 г/л Fe3+ извлечение никеля и меди составило 93.0 и 94.3% соответственно, в то время как в отсутствие Fe3+ в раствор переходило 75.0% никеля и 77.8% меди.

Об авторах

Н. В. Фомченко

Институт микробиологии им. С.Н. Виноградского, Федеральный исследовательский центр “Фундаментальные основы биотехнологии” Российской академии наук

Москва, Россия

Г. В. Новиков

Институт микробиологии им. С.Н. Виноградского, Федеральный исследовательский центр “Фундаментальные основы биотехнологии” Российской академии наук

Москва, Россия

В. С. Меламуд

Институт микробиологии им. С.Н. Виноградского, Федеральный исследовательский центр “Фундаментальные основы биотехнологии” Российской академии наук

Москва, Россия

М. И. Муравьёв

Институт микробиологии им. С.Н. Виноградского, Федеральный исследовательский центр “Фундаментальные основы биотехнологии” Российской академии наук

Email: maxmuravyov@inmi.ru
Москва, Россия

Список литературы

  1. Schodde R., Guj P. // Geosyst. Geoenviron. 2025. V. 4. P. 100356. https://doi.org/10.1016/j.geogeo.2025.100356
  2. Zhang Z., Zhang W., Zhang Z., Chen X. // China Geol. 2025. V. 8. P. 187–213. 3. https://doi.org/10.31035/cg2024124
  3. Kalungi P., Yao Z., Huang H. // Materials. 2024. V. 17. P. 4389. https://doi.org/10.3390/ma17174389
  4. Đorđević T., Tasev G., Aicher C., Potysz A., Nagl P., Lengauer C.L. et al. // Appl. Geochem. 2024. V. 170. https://doi.org/10.1016/j.apgeochem.2024.106068
  5. Kupczak K., Warchulski R., Ettler V., Mihaljevič M. // J. Geochem. Explor. 2025. V. 273. P. 107743. https://doi.org/10.1016/j.gexplo.2025.107743
  6. Yanning S., Qiao H., Qiong F., Chao W., Jianghua Z. // J. Build. Eng. 2024. V. 96. P. 110632. https://doi.org/10.1016/j.jobe.2024.110632
  7. Afaque M., Roy S., Khan R.A. // Water and Energy Int. 2025. V. 67. P. 20–27.
  8. Gurieva V.A., Ilyina A.A. // 2024. V. 81. P. 34–38. https://doi.org/10.1007/s10717-024-00654-5
  9. Yan Y., Sun S., Yang K., Xiao F., Tu G., Sui C., Yu K. // Environ. Sci. Pollut. Res. 2025. V. 32. P. 4523–4538. https://doi.org/10.1007/s11356-025-35909-3
  10. Klaffenbach E., Montenegro V., Guo M., Blanpain B. // J. Sustainable Met. 2023. V. 9. P. 468–496. https://doi.org/10.1007/s40831-023-00683-4
  11. Sethurajan M., van Hullebusch E.D., Nanchariah Y.V. // J. Environ. Manage. 2018. V. 211. P. 138–153. https://doi.org/10.1016/J.JENVMAN.2018.01.035
  12. Potysz A., Pȩdziwiatr A., Hedwig S., Lenz M. // J. Environ. Chem. Eng. 2020. V. 8. P. 104450. https://doi.org/10.1016/J.JECE.2020.104450
  13. Muravyov M.I., Fomchenko N.V., Kondrat’eva T.F. // Appl. Biochem. Microbiol. 2011. V. 47. P. 607–614. https://doi.org/10.1134/S0003683811060093
  14. Fomchenko N.V., Muravyov M.I. // Appl. Biochem. Microbiol. 2017. V. 53. P. 73–77. https://doi.org/10.1134/S0003683817010197
  15. Karimi Darvanjooghi M.H., Magdouli S., Brar S.K. // World J. Microbiol. Biotechnol. 2024. V. 40. P. 67. https://doi.org/10.1007/s11274-024-03887-2
  16. Roberto F.F., Schippers A. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2022. V. 106. P. 5913–5928. https://doi.org/10.1007/s00253-022-12085-9
  17. Fomchenko N., Muravyov M. // Minerals. 2020. V. 10. P. 1097. https://doi.org/10.3390/min10121097
  18. Kaksonen A.H., Särkijärvi S., Puhakka J.A., Peuraniemi E., Junnikkala S., Tuovinen O.H. // Hydrometallurgy. 2016. V. 159. P. 46–53. https://doi.org/10.1016/J.HYDROMET.2015.10.032
  19. Potysz A., Lens P.N.L., van de Vossenberg J., Rene E.R., Grybos M., Guibaud G., et al. // Appl. Geochem. 2016. V. 68. P. 39–52. https://doi.org/10.1016/J.APGEOCHEM.2016.03.006
  20. Wang J., Huang Q., Li T., Xin B., Chen S., Guo X. et al. // J. Environ. Manage. 2015. V. 159. P. 11–17, https://doi.org/10.1016/J.JENVMAN.2015.05.013
  21. Fomchenko N.V., Murav’ev M.I. // Appl. Biochem. Microbiol. 2015. V. 51. P. 388–392. https://doi.org/10.1134/S0003683815040079
  22. Silverman M.P., Lundgren D.G. // J. Bacteriol. 1959. V. 77. P. 642–647. https://doi.org/10.1128/jb.77.5.642-647.1959
  23. Davis. D.G., Jacobsen W.R. // Anal. Chem. 1960. V. 32. P. 215–217. https://doi.org/10.1021/ac60158a024
  24. Филиппова Н.А. Фазовый анализ руд и продуктов их переработки / Ред. Абрамова В.Л. М.: Химия, 1975. 280 с.
  25. Brierley C.L., Brierley J.A. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2013. V. 97. P. 7543–7552. https://doi.org/10.1007/s00253-013-5095-3
  26. Olson G.J., Brierley J.A., Brierley C.L. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2003. V. 63. P. 249–257. https://doi.org/10.1007/s00253-003-1404-6

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).