Адаптация вируса оспы овец (Poxviridae: Capripoxvirus: Sheeppox virus) к линии клеток почки африканской зелёной мартышки и оценка его иммунобиологических свойств
- Авторы: Аманова Ж.Т.1, Саметова Ж.Ж.1, Булатов Е.А.1
-
Учреждения:
- РГП «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности» Министерства здравоохранения Республики Казахстан
- Выпуск: Том 67, № 5 (2022)
- Страницы: 450-458
- Раздел: В ПОМОЩЬ ВИРУСОЛОГУ
- URL: https://journals.rcsi.science/0507-4088/article/view/118244
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-137
- ID: 118244
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Введение. Вспышки инфекционных заболеваний серьёзно препятствуют сохранению и увеличению поголовья мелкого рогатого скота. К числу таких инфекций относится оспа овец. По данным Всемирной организации здравоохранения животных, в 2021 г. вспышки были зарегистрированы в таких странах, как Турция, Израиль, Китай, Мальдивы, Монголия, Таиланд, Россия, Алжир, Кения, а в 2019 г. в Мангистауской и Атырауской областях Казахстана. С целью предотвращения проникновения инфекции из соседних стран в республике ежегодно проводится плановая иммунизация овец группы риска живой аттенуированной вакциной производства Научно-исследовательского института проблем биологической безопасности.
Материалы и методы. Объектами исследования являлись вакцинный штамм НИСХИ и вирулентный штамм А вируса оспы овец. Система культивирования вируса – культура клеток Vero. Для определения безвредности и иммуногенности использовали овец казахской тонкорунной породы в возрасте от 6 до 12 мес. При исследовании применяли вирусологические, серологические и иммунобиологические методы.
Результаты. Приведены результаты исследования по адаптации штамма НИСХИ вируса оспы овец к перевиваемой линии клеток Vero. Пятикратное пассирование на перевиваемой линии клеток Vero привело к адаптации штамма НИСХИ с проявлением цитопатогенного эффекта, специфичного для вируса оспы овец, с титром 6,50 lg ТЦД50/мл. При тестировании на овцах адаптированный к перевиваемой линии клеток Vero испытуемый штамм оказался для них безвредным и на 7-е сутки после иммунизации стимулировал формирование иммунитета против оспы овец у животных со средним значением защитного титра 1,8 log2, которое увеличилось на 21-е сутки до 4,33 log2.
Заключение. Установлено, что штамм НИСХИ вируса оспы овец сохраняет свои вирусологические и иммунобиологические свойства при репродукции в перевиваемой линии клеток Vero.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Жанат Темирбаевна Аманова
РГП «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности» Министерства здравоохранения Республики Казахстан
Email: amanova-janka@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3987-6814
магистр биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории Технологии культивирования микроорганизмов
Казахстан, 080409, Жамбылская область, Кордайский район, пгт. ГвардейскийЖанна Жумабековна Саметова
РГП «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности» Министерства здравоохранения Республики Казахстан
Email: sametova_zh.zh@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2332-2841
научный сотрудник лаборатории Технологии культивирования микроорганизмов
Казахстан, 080409, Жамбылская область, Кордайский район, пгт. ГвардейскийЕрбол Акенович Булатов
РГП «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности» Министерства здравоохранения Республики Казахстан
Автор, ответственный за переписку.
Email: erbol_km@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8543-4219
кандидат биологических наук, зав. лабораторией Технологии культивирования микроорганизмов
Россия, 080409, Жамбылская область, Кордайский район, пгт. ГвардейскийСписок литературы
- Boumart Z., Daouam S., Belkourati I., Rafi L., Tuppurainen E., Tadlaoui K.O., et al. Comparative innocuity and efficacy of live and inactivated sheeppox vaccines. BMC Vet. Res. 2016; 12(1): 133. https://doi.org/10.1186/s12917-016-0754-0
- Yogisharadhya R., Bhanuprakash V., Hosamani M., Venkatesan G., Balamurugan V., Bora D.P., et al. Comparative efficacy of live replicating sheeppox vaccine strains in Ovines. Biologicals. 2011; 39(6): 417–23. https://doi.org/10.1016/j.biologicals.2011.09.010
- Yeruham I., Yadin H., Van Ham M., Bumbarov V., Soham A., Perl S. Economic and epidemiological aspects of an outbreak of sheeppox in a dairy sheep flock. Vet. Rec. 2007; 160(7): 236–7. https://doi.org/10.1136/vr.160.7.236
- Yune N., Abdela N. Epidemiology and economic importance of sheep and goat pox: a review on past and current aspects. J Vet. Sci. Technol. 2017; 8(2): 430. https://doi.org/10.4262/2157-7579.1000430
- Bhanuprakash V., Indrani B.K., Hosamani M., Singh R.K. The current status of sheep pox disease. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 2006; 29(1): 27–60. https://doi.org/10.1016/j.cimid.2005.12.001
- Парилов С.В., Книзе А.В., Балышев В.М. Анализ и прогноз мировой эпизоотической ситуации по оспе овец и коз и чуме мелких жвачных животных в 2011–2015 гг.: научное издание. Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2011; (69): 423–32.
- Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному надзору (Россельхознадзор). Эпизоотическая ситуация в мире по данным МЭБ. Available at: https://www.fsvps.ru/fsvps/iac/foreign.html
- OIE. World Organization for Animal Health. Information received on 04/05/2019 from Committee for Veterinary Control and Supervision. Nur-Sultan, Kazakhstan: Ministry of Agriculture; 2019.
- Tuppurainen E., Babiuk S., Klement E. Lumpy Skin Disease. Berlin/Heidelberg: Springer International Publishing AG; 2018.
- Awad M., Michael A., Soliman S.M., Samir S.S., Daoud A.M. Trials for preparation of inactivated sheep pox vaccine using binary ethyleneimine. Egypt. J. Immunol. 2003; 10(2): 67–72.
- Hamdi J., Munyanduki H., Omari Tadlaoui K., El Harrak M., Fassi Fihri O. Capripoxvirus infections in ruminants: a review. Microorganisms. 2021; 9(5): 902. https://doi.org/10.3390/microorganisms9050902
- Балышев В.М., Калантаенко Ю.Ф., Горшкова Т.Ф., Парилов С.В. Ассоциированная вакцина против оспы овец и чумы мелких жвачных животных. Патент РФ 2406535 С1; 2010.
- Barrett P.N., Mundt W., Kistner O., Howard M.K. Vero cell platform in vaccine production: moving towards cell culture-based viral vaccines. Expert Rev. Vaccines. 2009; 8(5): 607–18. https://doi.org/10.1586/erv.09.19
- Trabelsi K., Majoul S., Rourou S., Kallel H. Process intensification for an enhanced replication of a newly adapted RM-65 sheep pox virus strain in Vero cells grown in stirred bioreactor. Biochem. Eng. J. 2014; 90: 131–9. https://doi.org/10.1016/j.bej.2014.06.001
- Montagnon B., Vincent-Falquet J.C., Fanget B. Thousand litre scale microcarrier culture of Vero cells for killed polio virus vaccine. Dev. Biol. Stand. 1984; 55: 37–42.
- Trabelsi K., Rourou S., Loukil H., Majoul S., Kallel H. Optimization of virus yield as a strategy to improve rabies vaccine production by Vero cells in a bioreactor. J. Biotechnol. 2006; 121(2): 261–71. https://doi.org/10.1016/j.jbiotec.2005.07.018
- Rourou S., van der Ark A., Majoul S., Trabelsi K., van der Velden T.T., Kallel H. A novel animal-component-free medium for rabies virus production in Vero cells grown on Cytodex 1 microcarriers in a stirred bioreactor. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2009; 85(1): 53–63. https://doi.org/10.1007/s00253-009-2064-y
- Srivastava A.K., Putnak J.R., Lee S.H., Hong S.P., Moon S.B., Barvir D.A., et al. A purified inactivated Japanese encephalitis virus vaccine made in Vero cells. Vaccine. 2001; 19(31): 4557–65. https://doi.org/10.1016/s0264-410x(01)00208-0
- Testerial Manual. Chapter 3.7.12. Sheep Pox and Goat Pox. OIE; 2018: 1513–24.
- Аманова Ж.Т., Таранов Д.С., Ершебулов З.Д., Жугунисов К.Д., Баракбаев К.Б., Булатов Е.А. и др. Оценка эффективности ассоциированной вакцины против чумы мелких жвачных животных и оспы овец. Ветеринария. 2016; (9): 21–4.
- Reed L.J., Muench H. A simple method of estimating fifty per cent endpoints. Am. J. Hyg. 1938; 27(3): 493–7.
- ГОСТ 28085-2013. Средства лекарственные биологические для ветеринарного применения. Методы контроля стерильности; 2014.
- Зайцев В.Л., Сандыбаев Н.Т., Султанкулова К.Т., Белоусов В.Ю., Червякова О.В., Строчков В.М. Вирус оспы овец: молекулярно-биологические свойства и структура генома. Алматы; 2011.
- Аманова Ж.Т., Жугунисов К.Д., Булатов Е.А., Жунушов А.Т., Саметова Ж.Ж., Шаяхметов Е.А. и др. Оценка эффективности стабилизирующих сред при лиофилизации и хранении ассоциированной вакцины против чумы мелких жвачных животных и оспы овец. Известия Национальной академии наук Кыргызской Республики. 2020; (2): 25–34.
Дополнительные файлы
