Распространённость и молекулярно-генетическая характеристика вирусов парентеральных гепатитов B, C и D у ВИЧ-позитивных лиц в Новосибирской области
- Авторы: Карташов М.Ю.1,2, Свирин К.А.1, Кривошеина Е.И.1, Чуб Е.В.1, Терновой В.А.1, Кочнева Г.В.1
-
Учреждения:
- ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
- ФГБОУ ВО «Новосибирский национальный исследовательский государственный университет»
- Выпуск: Том 67, № 5 (2022)
- Страницы: 423-438
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://journals.rcsi.science/0507-4088/article/view/118241
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-133
- ID: 118241
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Введение. Вирусы парентеральных гепатитов B, C, D (ВГВ, ВГС, ВГD) и иммунодефицита человека (ВИЧ) характеризуются сходными путями передачи и группами риска, в которых повышена вероятность приобретения одновременно сразу двух и более из этих инфекций. Взаимное усугубление течения вирусных инфекций является важной проблемой, возникающей при коинфицировании ВИЧ-положительных пациентов парентеральными вирусными гепатитами.
Цель работы. Определение встречаемости и молекулярно-эпидемиологической характеристики генетических вариантов ВГВ, ВГС и ВГD, выявленных среди ВИЧ-положительных пациентов в Новосибирской области.
Материалы и методы. В 185 исследуемых пробах определяли наличие суммарных антител к ВГС, РНК ВГС, ДНК ВГВ и РНК ВГD. Положительные образцы генотипировали путём амплификации фрагмента гена NS5b для изолятов ВГС, гена pol для изолятов ВГВ и полногеномной последовательности для изолятов ВГD.
Результаты. Среди 185 исследуемых образцов суммарные антитела к ВГС были обнаружены в 51,9% (95% ДИ 44,7–58,9), РНК ВГС – в 32,9% (95% ДИ 26,6–39,5). Распределение генетического материала ВГС в различных половозрастных группах полностью повторяло распределение серологических маркеров. Инфицирование ВГС у ВИЧ-позитивных лиц имеет тенденцию к увеличению с возрастом. Распределение субгенотипов в изучаемой выборке изолятов ВГС имеет следующие особенности: 1b – 52,5%, 3а – 34,5%, 1а – 11,5%, 2а – 1,5%. 84,3% изолятов ВГС субгенотипа 1b имеют мутацию C316N, ассоциируемую с развитием резистентности к лечению софосбувиром и дацабувиром. Встречаемость ДНК ВГВ в исследуемых пробах составила 15,2% (95% ДИ 10,7–21,0). В одном изоляте ВГВ определена мутация M204I, связанная с устойчивостью к лечению ламивудином и телбивудином. Среди ВИЧ-/ВГВ-инфицированных пациентов обнаружено 2 изолята ВГD, относящихся к генотипу 1.
Заключение. Полученные данные подтверждают факт более широкого распространения инфицирования парентеральными вирусными гепатитами среди ВИЧ-позитивных лиц Новосибирской области по сравнению с условно здоровым населением. Генетическое разнообразие вариантов этих вирусов среди ВИЧ-инфицированных аналогично разнообразию, наблюдаемому в общей популяции.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Михаил Юрьевич Карташов
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор); ФГБОУ ВО «Новосибирский национальный исследовательский государственный университет»
Автор, ответственный за переписку.
Email: mikkartash@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-7857-6822
кандидат биологических наук, старший научный сотрудник отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, Кольцово; 630090, НовосибирскКирилл Андреевич Свирин
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: svirin_ka@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0001-9083-1649
стажер-исследователь отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, КольцовоЕкатерина Ильинична Кривошеина
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: katr962@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5181-0415
младший научный сотрудник отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, КольцовоЕлена Владимировна Чуб
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: chub_ev@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0003-1521-897X
кандидат биологических наук, заведующая отделом
Россия, 630559, Новосибирская область, КольцовоВладимир Александрович Терновой
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: tern@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0003-1275-171X
кандидат биологических наук, и.о. заведущего лаборатории отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, КольцовоГалина Вадимовна Кочнева
ФБУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Роспотребнадзор)
Email: kochneva@vector.nsc.ru
ORCID iD: 0000-0002-2420-0483
доктор биологических наук, заведущая лаборатории отдела молекулярной вирусологии флавивирусов и вирусных гепатитов
Россия, 630559, Новосибирская область, КольцовоСписок литературы
- Gonzalez V.D., Falconer K., Blom K.G., Reichard O., Mørn B., Laursen A.L., et al. High levels of chronic immune activation in the T-cell compartments of patients coinfected with hepatitis C virus and human immunodeficiency virus type 1 and on highly active antiretroviral therapy are reverted by alpha interferon and ribavirin treatment. J. Virol. 2009; 83(21): 11407–11. https://doi.org/10.1128/JVI.01211-09
- Kovacs A., Karim R., Mack W.J., Xu J., Chen Z., Operskalski E., et al. Activation of CD8 T cells predicts progression of HIV infection in women coinfected with hepatitis C virus. J. Infect. Dis. 2010; 201(6): 823–34. https://doi.org/10.1086/650997
- Rauch A., James I., Pfafferott K., Nolan D., Klenerman P., Cheng W., et al. Divergent adaptation of hepatitis C virus genotypes 1 and 3 to human leukocyte antigen-restricted immune pressure. Hepatology. 2009; 50(4): 1017–29. https://doi.org/10.1002/hep.23101
- Tengan F.M., Ibrahim K.Y., Dantas B.P., Manchiero C., Magri M.C, Bernando W.M. Seroprevalence of hepatitis C virus among people living with HIV/AIDS in Latin America and the Caribbean: a systematic review. BMC Infect. Dis. 2016; 16(1): 663. https://doi.org/10.1186/s12879-016-1988-y
- Zuckerman A.D., Douglas A., Whelchel K., Choi L., DeClercq J., Chastain C.A., et al. Pharmacologic management of HCV treatment in patients with HCV monoinfection vs. HIV/HCV coinfection: Does coinfection really matter? PLoS One. 2019; 14(11): e0225434. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0225434
- Cheng Z., Lin P., Cheng N. HBV/HIV coinfection: impact on the development and clinical treatment of liver diseases. Front. Med. (Lausanne). 2021; 8: 713981. https://doi.org/10.3389/fmed.2021.713981
- Babu C.K., Suwansrinon K., Bren G.D., Badley A.D., Rizza S.A. HIV induces TRAIL sensitivity in hepatocytes. PLoS One. 2009; 4(2): e4623. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0004623
- Herbeuval J.P., Boasso A., Grivel J.C., Hardy A.W., Anderson S.A., Dolan M.J., et al. TNF-related apoptosis-inducing ligand (TRAIL) in HIV-1-infected patients and its in vitro production by antigen-presenting cells. Blood. 2005; 105(6): 2458–64. https://doi.org/10.1182/blood-2004-08-3058
- Yu Y., Gong R., Mu Y., Chen Y., Zhu C., Sun Z., et al. Hepatitis B virus induces a novel inflammation network involving three inflammatory factors, IL-29, IL-8, and cyclooxygenase-2. J. Immunol. 2011; 187(9): 4844–60. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1100998
- Lara-Pezzi E., Gómez-Gaviro M.V., Gálvez B.G., Mira E., Iñiguez M.A., Fresno M., et al. The hepatitis B virus X protein promotes tumor cell invasion by inducing membrane-type matrix metalloproteinase-1 and cyclooxygenase2 expression. J. Clin. Investig. 2002; 110(12): 1831–8. https://doi.org/10.1172/JCI15887
- Mohammed N.A., Abd El-Aleem S.A., El-Hafiz H.A., McMahon R.F. Distribution of constitutive (COX-1) and inducible (COX-2) cyclooxygenase in postviral human liver cirrhosis: a possible role for COX-2 in the pathogenesis of liver cirrhosis. J. Clin. Pathol. 2004; 57(4): 350–4. https://doi.org/10.1136/jcp.2003.012120
- Singh K.P., Crane M., Audsley J., Avihingsanon A., Sasadeusz J., Lewin S.R. HIV-hepatitis B virus coinfection: epidemiology, pathogenesis, and treatment. AIDS. 2017; 31(15): 2035–52. https://doi.org/10.1097/QAD.0000000000001574
- Brenchley J.M., Price D.A., Schacker T.W., Asher T.E., Silvestri G., Rao S., et al. Microbial translocation is a cause of systemic immune activation in chronic HIV infection. Nat. Med. 2006; 12(12): 1365–71. https://doi.org/10.1038/nm1511
- Qadir M.I. Hepatitis in AIDS patients. Rev. Med. Virol. 2018; 28(1). https://doi.org/10.1002/rmv.1956
- Sulkowski M.S. Viral hepatitis and HIV coinfection. J. Hepatol. 2008; 48(2): 353–67. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2007.11.009
- Kumar S., Stecher G., Li M., Knyaz C., Tamura K. MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across computing platforms. Mol. Biol. Evol. 2018; 35(6): 1547–9. https://doi.org/10.1093/molbev/msy096
- Титаренко Р.В. Особенности наркоситуации и проблемы профилактики наркомании среди российских подростков. Гуманитарные, социально-экономические и общественные науки. 2015; (11-1): 191–4.
- Соболева Н.В., Карлсен А.А., Кожанова Т.В., Кичатова В.С., Клушкина В.В., Исаева О.В. и др. Распространенность вируса гепатита С среди условно здорового населения Российской Федерации. Журнал инфектологии. 2017; 9(2): 56–64. https://doi.org/10.22625/2072-6732-2017-9-2-56-64
- Guntipalli P., Pakala R., Kumari Gara S., Ahmed F., Bhatnagar A., Endaya Coronel M.K., et al. Worldwide prevalence, genotype distribution and management of hepatitis C. Acta Gastroenterol. Belg. 2021; 84(4): 637–56. https://doi.org/10.51821/84.4.015.
- Olinger C.M., Lazouskaya N.V., Eremin V.F., Muller C.P. Multiple genotypes and subtypes of hepatitis B and C viruses in Belarus: similarities with Russia and western European influences. Clin. Microbiol. Infect. 2008; 14(6): 575–81. https://doi.org/10.1111/j.1469-0691.2008.01988.x
- Isakov V., Tsyrkunov V., Nikityuk D. Is elimination of hepatitis C virus realistic by 2030: Eastern Europe. Liver Int. 2021; 41(Suppl. 1): 50–5. https://doi.org/10.1111/liv.14836
- Rhodes T., Platt L., Maximova S., Koshkina E., Latishevskaya N., Hickman M., et al. Prevalence of HIV, hepatitis C and syphilis among injecting drug users in Russia: a multi-city study. Addiction. 2006; 101(2): 252–66. https://doi.org/10.1111/j.1360-0443.2006.01317.x
- Tsui J.I., Ko S.C., Krupitsky E., Lioznov D., Chaisson C.E., Gnatienko N., et al. Insights on the Russian HCV care cascade: minimal HCV treatment for HIV/HCV co-infected PWID in St. Petersburg. Hepatol. Med. Policy. 2016; 1: 13. https://doi.org/10.1186/s41124-016-0020-x
- Rhodes T., Platt L., Judd A., Mikhailova L.A., Sarang A., Wallis N., et al. Hepatitis C virus infection, HIV co-infection, and associated risk among injecting drug users in Togliatti, Russia. Int. J. STD AIDS. 2005; 16(11): 749–54. https://doi.org/10.1258/095646205774763180
- Бобкова М.Р., Самохвалов Е.И., Буравцова Е.В., Деткова Н.В., Кравченко А.В., Саламов Г.Г. и др. Гепатит С среди ВИЧ-инфицированных потребителей внутривенных наркотиков в России. Мир вирусных гепатитов. 2002; (6): 6–9.
- Aceijas C., Rhodes T. Global estimates of prevalence of HCV infection among injecting drug users. Int. J. Drug Policy. 2007; 18(5): 352–8. https://doi.org/10.1016/j.drugpo.2007.04.004
- Munir S., Saleem S., Idrees M., Tariq A., Butt S., Rauff B., et al. Hepatitis C treatment: current and future perspectives. Virol. J. 2010; 7: 296. https://doi.org/10.1186/1743-422X-7-296
- Zein N.N. Clinical significance of hepatitis C virus genotypes. Clin. Microbiol. Rev. 2000; 13(2): 223–35. https://doi.org/10.1128/CMR.13.2.223
- Probst A., Dang T., Bochud M., Egger M., Negro F., Bochud P.Y. Role of hepatitis C virus genotype 3 in liver fibrosis progression--a systematic review and meta-analysis. J. Viral. Hepat. 2011; 18(11): 745–59. https://doi.org/10.1111/j.1365-2893.2011.01481.x
- Ramalho F. Hepatitis C virus infection and liver steatosis. Antiviral Res. 2003; 60(2): 125–7. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2003.08.007
- Esteban J.I., Sauleda S., Quer J. The changing epidemiology of hepatitis C virus infection in Europe. J. Hepatol. 2008; 48(1): 148–62. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2007.07.033
- Шустов А.В., Кочнева Г.В., Сиволобова Г.Ф., Гражданцева А.А., Гаврилова И.В., Акинфеева Л.А. Встречаемость маркеров, распределение генотипов и факторы риска вирусного гепатита С среди некоторых групп населения Новосибирской области. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2004; 71(5): 20–5.
- Schinazi R., Halfon P., Marcellin P., Asselah T. HCV direct-acting antiviral agents: the best interferon-free combinations. Liver Int. 2014; 34(Suppl. 1): 69–78. https://doi.org/10.1111/liv.12423
- D’Ambrosio R., Degasperi E., Colombo M., Aghemo A. Direct-acting antivirals: the endgame for hepatitis C? Curr. Opin. Virol. 2017; 24: 31–7. https://doi.org/10.1016/j.coviro.2017.03.017
- Feld J.J. Direct-acting antivirals for Hepatitis C Virus (HCV): The progress continues. Curr. Drug Targets. 2017; 18(7): 851–62. https://doi.org/10.2174/1389450116666150825111314
- Zhang Y., Cao Y., Zhang R., Zhang X., Lu H., Wu C., et al. Pre-existing HCV variants resistant to DAAs and their sensitivity to PegIFN/RBV in Chinese HCV genotype 1b patients. PLoS One. 2016; 11(11): e0165658. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0165658
- Palanisamy N., Kalaghatgi P., Akaberi D., Lundkvist Å., Chen Z.W., Hu P., et al. Worldwide prevalence of baseline resistance-associated polymorphisms and resistance mutations in HCV against current direct-acting antivirals. Antivir. Ther. 2018; 23(6): 485–93. https://doi.org/10.3851/IMP3237
- Ikeda H., Watanabe T., Shimizu H., Hiraishi T., Kaneko R., Baba T., et al. Efficacy of ledipasvir/sofosbuvir with or without ribavirin for 12 weeks in genotype 1b HCV patients previously treated with a nonstructural protein 5A inhibitor-containing regimen. Hepatol. Res. 2018; 48(10): 802–9. https://doi.org/10.1111/hepr.13074
- Wang G.P., Terrault N., Reeves J.D., Liu L., Li E., Zhao L., et al. Prevalence and impact of baseline resistance-associated substitutions on the efficacy of ledipasvir/sofosbuvir or simeprevir/sofosbuvir against GT1 HCV infection. Sci. Rep. 2018; 8(1): 3199. https://doi.org/10.1038/s41598-018-21303-2
- Kati W., Koev G., Irvin M., Beyer J., Liu Y., Krishnan P., et al. In vitro activity and resistance profile of dasabuvir, a nonnucleoside hepatitis C virus polymerase inhibitor. Antimicrob. Agents Chemother. 2015; 59(3): 1505–11. https://doi.org/10.1128/AAC.04619-14
- Di Maio V.C., Cento V., Lenci I., Aragri M., Rossi P., Barbaliscia S., et al. Multiclass HCV resistance to direct-acting antiviral failure in real-life patients advocates for tailored second-line therapies. Liver Int. 2017; 37(4): 514–28. https://doi.org/10.1111/liv.13327
- European Association for the Study of the Liver. EASL Recommendations on Treatment of Hepatitis C 2018. J. Hepatol. 2018; 69(2): 461–511. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2018.03.026
- Popping S., Cento V., Seguin-Devaux C., Boucher C.A.B., de Salazar A., Heger E., et al. The European prevalence of resistance associated substitutions among direct acting antiviral failures. Viruses. 2022; 14(1): 16. https://doi.org/10.3390/v14010016
- Barth R.E., Huijgen Q., Tempelman H.A., Mudrikova T., Wensing A.M., Hoepelman A.I. Presence of occult HBV, but near absence of active HBV and HCV infections in people infected with HIV in rural South Africa. J. Med. Virol. 2011; 83(6): 929–34. https://doi.org/10.1002/jmv.22026
- Tramuto F., Maida C.M., Colomba G.M., Di Carlo P., Vitale F. Prevalence of occult hepatitis B virus infection in a cohort of HIV-positive patients resident in Sicily, Italy. Biomed. Res. Int. 2013; 2013: 859583. https://doi.org/10.1155/2013/859583
- Laguno M., Larrousse M., Blanco J.L., Leon A., Milinkovic A., Martínez-Rebozler M., et al. Prevalence and clinical relevance of occult hepatitis B in the fibrosis progression and antiviral response to INF therapy in HIV-HCV-coinfected patients. AIDS Res. Hum. Retroviruses. 2008; 24(4): 547–53. https://doi.org/10.1089/aid.2007.9994
- Panigrahi R., Majumder S., Gooptu M., Biswas A., Datta S., Chandra P.K., et al. Occult HBV infection among anti-HBc positive HIV-infected patients in apex referral centre, Eastern India. Ann. Hepatol. 2012; 11(6): 870–5.
- Hann HW., Gregory V.L., Dixon J.S., Barker R.F. A review of the one-year incidence of resistance to lamivudine in the treatment of chronic hepatitis B. Hepatol. Int. 2008; 2(4): 440–56. https://doi.org/10.1007/s12072-008-9105-y
- Елпаева Е.А., Писарева М.М., Никитина О.Е., Кижло С.Н., Грудинин М.П., Дуданова О.П. Роль мутантных форм вируса гепатита B в прогрессирующем течении хронического гепатита B. Ученые записки Петрозаводского государственного университета. 2014; (6): 41–6.
- Кожанова Т.В., Ильченко Л.Ю., Исаева О.В., Алексеева М.Н., Сарыглар А.А., Миронова Н.И. и др. Циркуляция вариантов вируса гепатита в, несущих мутации в гене полимеразы, среди ВГВ-инфицированных и ВГВ/ВИЧ-коинфицированных пациентов. Современные технологии в медицине. 2013; 5(2): 60–4.
- Исаева О.В., Кюрегян К.К. Вирусный гепатит дельта: недооцененная угроза. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2019; 8(2): 72–9. https://doi.org/10.24411/2305-3496-2019-12010
Дополнительные файлы
