Preference and performance of different Kalanchoe species for oviposition by females of a predatory bug Orius laevigatus (Fieber) (Heteroptera, Anthocoridae)

Cover Page

Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription Access

Abstract

Preference for, and suitability of three plant species: Kalanchoe blossfeldiana, K. daigremontiana, and K. laciniata for oviposition by females of a predatory bug Orius laevigatus were investigated under laboratory conditions. The study was aimed at the improvement of the methods for laboratory and mass rearing of this entomophage widely used for biological control of greenhouse pests. The evaluated parameters were the number of eggs laid per leaf by O. laevigatus females within 24 h and the proportion of hatched larvae. The experiments showed that all three Kalanchoe species are more or less equally suitable as substrates for egg-laying by O. laevigatus females, although when possible it is preferable to use K. blossfeldiana.

Full Text

Restricted Access

About the authors

I. M. Pazyuk

Всероссийский институт защиты растений РАН

Email: ipazyuk@gmail.com
Russian Federation, Санкт-Петербург

S. Ya. Reznik

Всероссийский институт защиты растений РАН; Зоологический институт РАН

Email: reznik1952@mail.ru
Russian Federation, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

A. A. Razmyshlyaeva

Всероссийский институт защиты растений РАН

Email: aaraz2912@gmail.com
Russian Federation, Санкт-Петербург

N. A. Belyakova

Всероссийский институт защиты растений РАН

Author for correspondence.
Email: belyakovana@yandex.ru
Russian Federation, Санкт-Петербург

References

  1. Белякова Н. А., Павлюшин В. А. 2023. Скрининг биоресурсов насекомых и клещей для биологического контроля вредителей в защищенном грунте. Вестник защиты растений 1 (106): 49–70. https://doi.org/10.31993/2308-6459-2023-106-1-15533
  2. ИНАППЕН. Научно-производственное предприятие. Институт прикладной энтомологии. Продукция [Электронный ресурс]. URL: https://inappen.com/products (дата обращения: 20.12.2023).
  3. Козлова Е. Г., Трапезникова О. В. 2010. Биологические особенности клопов рода Orius (Hemiptera) при разведении на растениях — суккулентах. Известия Санкт-Петербургского государственного аграрного университета 19: 54–60.
  4. Компания БИОзащита. Продажа и производство энтомофагов [Электронный ресурс]. URL: https://bio-group.net/entomophag/ (дата обращения: 20.12.2023).
  5. Красавина Л. П., Трапезникова О. В., Орлова Г. С. 2013. Разведение и применение Orius laevigatus против трипсов. Защита и карантин растений 2: 47–50.
  6. Миронова М. К., Ижевский С. С., Ахатов А. К. 1998. Перспективы использования Orius laevigatus (Fieb.) (Heteroptera, Anthocoridae) против трипса Frankliniella occidentalis (Perg.) (Thysanoptra, Thripidae). В кн.: Г. С. Медведев (ред.). Проблемы энтомологии в России. Т. 2. СПб.: Зоологический институт РАН, с. 34–35.
  7. Мокроусова Е. П. 2001. Возможность использования в борьбе с оранжерейной белокрылкой Trialeurodes vaporariorum Westw. хищного клопа Orius laevigatus Fieb. Вестник защиты растений 1: 76.
  8. Пазюк И. М. 2024. Поиск растений, пригодных для массового разведения клопа Nesidiocoris tenuis. Защита и карантин растений 3: 26–29.
  9. Перова Т. Д., Козлова Е. Г. 2022. Влияние вида табака на репродуктивный потенциал хищного клопа Macrolophus pygmaeus (Rambur) (Heteroptera: Miridae). Труды Русского энтомологического общества, т. 93, с. 145–150. https://doi.org/10.47640/1605-7678_2022_93_145
  10. Резник С. Я. 1993. Обучение в пищевой избирательности насекомых. Труды Зоологического института РАН, т. 193, с. 5–72.
  11. Трапезникова О. В. 2010. Селекция хищного клопа Orius laevigatus Fieb. на повышение плодовитости при разведении на растении-суккуленте Kalanchoe daigremontiana Hamet & H. Perrier. Вестник защиты растений 1: 52–56.
  12. Трапезникова О. В. 2012. Биологическое обоснование массового разведения клопа Orius laevigatus Fieb. (Heteroptera, Anthocoridae). Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук. СПб.: Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений Россельхозакадемии, 19 с.
  13. Чалков А. А. 1986. Биологическая борьба с вредителями овощных культур защищенного грунта. М.: Россельхозиздат, 95 с.
  14. Alloway T. M. 1972. Learning and memory in insects. Annual Review of Entomology 17 (1): 43–56. https://doi.org/10.1146/annurev.en.17.010172.000355
  15. Biondi A., Zappalà L., Di Mauro A., Tropea Garzia G., Russo A., Desneux N., Siscaro G. 2016. Can alternative host plant and prey affect phytophagy and biological control by the zoophytophagous mirid Nesidiocoris tenuis? BioControl 61 (1): 79–90. https://doi.org/10.1007/s10526-015-9700-5
  16. Bittencourt-Rodrigues R. S., Zucoloto F. S. 2005. Effect of host age on the oviposition and performance of Ascia monuste Godart (Lepidoptera: Pieridae). Neotropical Entomology 34 (2): 169–175.
  17. Bonebrake T. C., Boggs C. L., McNally J. M., Ranganathan J., Ehrlich P. R. 2010. Oviposition behavior and offspring performance in herbivorous insects: consequences of climatic and habitat heterogeneity. Oikos 119 (6): 927–934. https://doi.org/10.1111/j.1600-0706.2009.17759.x
  18. Bush G. L. 1969. Sympatric host race formation and speciation in frugivorus flies of the genus Rhagoletis (Diptera, Tephritidae). Evolution 23 (2): 237–251. https://doi.org/10.2307/2406788
  19. Cardoza Y. J., Mcauslane H. J., Webb S. E. 2000. Effect of leaf age and silverleaf symptoms on oviposition site selection and development of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) on zucchini. Environmental Entomology 29 (2): 220–225. https://doi.org/10.1093/ee/29.2.220
  20. Carrasco D., Larsson M. C., Anderson P. 2015. Insect host plant selection in complex environments. Current Opinion in Insect Science 8: 1–7. https://doi.org/10.1016/j.cois.2015.01.014
  21. Guo J. Y., Wan F. H. 2001. Use Kalanchoe bolssfeldiana as oviposition plant for mass-rearing Orius sauteri (Hemiptera: Anthocoridae). Chinese Journal of Biological Control 17 (2): 53. http://www.zgswfz.com.cn/EN/Y2001/V17/I2/53
  22. Hoffman G. D., Rao S. 2011. Oviposition site selection on oats: the effect of plant architecture, plant and leaf age, tissue toughness, and hardness on cereal leaf beetle, Oulema melanopus. Entomologia Experimentalis et Applicata 141 (3): 232–244. https://doi.org/10.1111/j.1570-7458.2011.01194.x
  23. Howlett B. G., Clarke A. R., Madden J. L. 2001. The influence of leaf age on the oviposition preference of Chrysophtharta bimaculata (Olivier) and the establishment of neonates. Agricultural and Forest Entomology 3 (2): 121–127. https://doi.org/10.1046/j.1461-9563.2001.00096.x
  24. Huettel M. D., Bush G. L. 1972. The genetics of host selection and its bearing on sympatric speciation in Procecidochares (Diptera, Tephritidae). Entomologia Experimentalis et Applicata 15 (4): 465–480. https://doi.org/10.1111/j.1570-7458.1972.tb00234.x
  25. Knolhoff L. M., Heckel D. G. 2014. Behavioral assays for studies of host plant choice and adaptation in herbivorous insects. Annual Review of Entomology 59: 263–278. https://doi.org/10.1146/annurev-ento-011613-161945
  26. Martínez-Garcia H., Soler R., Dicke M. 2013. Behavioral ecology of oviposition site selection in herbivorous true bugs. Advances in the Study of Behavior 45: 175–207. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-407186-5.00004-5
  27. Martínez-García H., Román-Fernández L. R., Sáenz-Romo M. G., Pérez-Moreno I., Marco-Mancebón V. S. 2016. Optimizing Nesidiocoris tenuis (Hemiptera: Miridae) as a biological control agent: mathematical models for predicting its development as a function of temperature. Bulletin of Entomological Research 106 (2): 215–224. https://doi.org/10.1017/S0007485315000978
  28. Morales-Ramos J. A., Rojas M. G., Shapiro-Ilan D. I. (eds). 2022. Mass Production of Beneficial Organisms: Invertebrates and Entomopathogens. London: Academic Press, 620 p.
  29. Papaj D. R., Prokopy R. J. 1986. Phytochemical basis of learning in Rhagoletis pomonella and other herbivorous insects. Journal of Chemical Ecology 12 (5): 1125–1143. https://doi.org/10.1007/BF01639000
  30. Papaj D. R., Prokopy R. J. 1988. The effect of prior adult experience on components of habitat preference in the apple maggot fly. Oecologia 76 (4): 538–543. https://doi.org//10.1007/bf00397866
  31. Papaj D. R., Prokopy R. J. 1989. Ecological and evolutionary aspects of learning in phytophagous insects. Annual Review of Entomology, 34 (1): 315–350. https://doi.org/10.1146/annurev.en.34.010189.001531
  32. Papaj D. R., Rausher M. D. 1987. Genetic differences and phenotypic plasticity as causes of variation in oviposition preference in Battus philenor. Oecologia 74 (1): 24–30. https://doi.org/10.1007/BF00377341
  33. Pazyuk I. M., Binitskaya N. V. 2020. Laboratory assessment of the suitability of predatory bugs Orius laevigatus and Orius majusculus as natural enemies of seed potato pests in greenhouses. Plant Protection News 103 (4): 274–276. https://doi.org/10.31993/2308-6459-2020-103-4-13984
  34. Rausher M. D. 1978. Search image for leaf shape in a butterfly. Science 200 (4345): 1071–1073. https://doi.org/10.1126/science.200.4345.1071
  35. Rausher M. D. 1983. Conditioning and genetic variation as causes of individual variation in the oviposition behaviour of the tortoise beetle, Deloyala guttata. Animal Behaviour 31 (3): 743–747.
  36. https://doi.org/10.1016/S0003-3472(83)80231-0
  37. Renwick J. A. A., Chew F. S. 1994. Oviposition behavior in Lepidoptera. Annual Review of Entomology 39: 377–400. https://doi.org/10.1146/annurev.en.39.010194.002113
  38. Rim H., Uefune M., Ozawa R., Yoneya K., Takabayashi J. 2017. Experience of plant infestation by the omnivorous arthropod Nesidiocoris tenuis affects its subsequent responses to prey-infested plant volatiles. BioControl 62: 233–242. https://doi.org/10.1007/s10526-017-9791-2
  39. Sahayaraj K., Hassan E. 2023. Worldwide Predatory Insects in Agroecosystems. Singapore: Springer, 858 p.
  40. Sanchez J. A., Lacasa A., Arnó J., Castañé C., Alomar O. 2009. Life history parameters for Nesidiocoris tenuis (Reuter) (Het., Miridae) under different temperature regimes. Journal of Applied Entomology 133 (2): 125–132. doi: 10.1111/j.1439-0418.2008.01342.x
  41. Thorpe W. H. 1929. Biological races in Hyponomeuta padella L. Zoological Journal of the Linnean Society 36 (249): 621–634. https://doi.org/10.1111/j.1096-3642.1929.tb02210a.x
  42. Thorpe W. H. 1931. Biological races in insects and their significance in evolution. Annals of Applied Biology 18 (3): 406–414. https://doi.org/10.1111/j.1744-7348.1931.tb02311.x
  43. Urbaneja-Bernat P., Alonso M., Tena A., Bolckmans K., Urbaneja A. 2013. Sugar as nutritional supplement for the zoophytophagous predator Nesidiocoris tenuis. BioControl 58 (1): 57–64. https://doi.org/10.1007/s10526-012-9466-y
  44. Van Lenteren J. C. [Интернет-документ]. 2012. IOBC internet book of biological control [URL: https://www.iobc-global.org/publications_iobc_internet_book_of_biological_control.html].
  45. Van Lenteren J. C., Alomar O., Ravensberg W. J., Urbaneja A. 2020. Biological control agents for control of pests in greenhouses. In: M. L. Gullino, R. Albajes, P. C. Nicot (eds). Integrated Pest and Disease Management in Greenhouse Crops. Cham, Switzerland: Springer, p. 409–439.
  46. Van Lenteren J. C., Bueno V. H., Klapwijk J. N. 2021. Augmentative biological control. In: P. G. Mason (ed.). Biological Control: Global Impacts, Challenges and Future Directions of Pest Management. Clayton, Australia: CSIRO Publishing, p. 90–109.
  47. Vandekerkhove B., De Puysseleyr V., Bonte M., De Clercq P. 2011. Fitness and predation potential of Macrolophus pygmaeus reared under artificial conditions. Insect Science 18 (6): 682–688. https://doi.org/10.1111/j.1744-7917.2011.01414.x
  48. Venzon M., Janssen A., Sabelis M. W. 2002. Prey preference and reproductive success of the generalist predator Orius laevigatus. Oikos 97 (1): 116–24. https://doi.org/10.1034/j.1600-0706.2002.970112.x
  49. Weintraub P. G., Pivonia S., Steinberg S. 2011. How many Orius laevigatus are needed for effective western flower thrips, Frankliniella occidentalis, management in sweet pepper? Crop Protection 30 (11): 1443–1448. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2011.07.015
  50. Zuma M., Njekete C., Konan K. A. J., Bearez P., Amiens-Desneux E., Desneux N., Lavoir A.-V. 2023. Companion plants and alternative prey improve biological control by Orius laevigatus on strawberry. Journal of Pest Science 96 (2):711–721. https://doi.org/10.1007/s10340-022-01570-9

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2024 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».