ATP-dependent LonBA proteases of bacilli and clostridia

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

The Lon protease family belongs to the key peptide hydrolases of the protein quality control (PQC) system, which plays a leading role in maintaining the integrity of the cellular proteome in all natural kingdoms. Moreover, Lon proteases are the only family of ATP-dependent proteases of PQC which comprises a number of structurally distinct subfamilies. Recently, it has been suggested that the Lon family contains a previously unclassified LonBA subfamily, which includes enzymes from bacteria of the Bacilli and Clostridia classes. Using bioinformatics analysis, data were obtained on the structural features of enzymes of the putative new subfamily and on the existence of two different groups of Lon proteases in this subfamily.

Full Text

ВВЕДЕНИЕ

Семейство АТР-зависимых Lon-протеаз – один из наиболее значимых участников системы контроля качества (СКК) белков, играющей ведущую роль в поддержании сохранности клеточного протеома во всех доменах жизни (бактерии, археи, эукариоты). В недавно опубликованном обзоре [1] была дана развернутая характеристика Lon-протеаз и представлены сведения о строении и структурных особенностях представителей этого семейства. Практически одновременно нами были обнаружены бактериальные пептидгидролазы, относящиеся к семейству Lon, но имеющие значительные отличия от известных к тому времени Lon-протеаз. Результаты изучения ферментативных свойств и получение данных об уникальной кристаллической структуре протеазного домена Lon-протеазы из Bacillus subtilis, модельной для выявленного блока ферментов, позволили выдвинуть предположение о существовании ранее неидентифицированного подсемейства LonВА-протеаз [2].

Цель данной работы – общая характеристика строения представителей предполагаемого нового LonВА-подсемейства, а также выявление индивидуальных особенностей структуры ферментов бактерий и клостридий, составляющих это подсемейство, с помощью биоинформатического анализа.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Подсемейства в семействе Lon-протеаз. В совокупности бифункциональных энергозависимых ААА+-протеаз, являющихся членами СКК, Lon-протеазы – это единственное семейство, которое состоит из ряда значительно различающихся подсемейств. Принятая в настоящее время классификация ферментов семейства Lon включает три основных подсемейства: LonА, LonВ и LonC (рис. 1а) [1, 3–5]. В базе данных пептидгидролаз MEROPS (https://www.ebi.ac.uk/merops/) [6] Lon-протеазы формируют семейство S16 клана SJ, разделенное на 25 идентификационных групп (ID). Каждое Lon-подсемейство объединяет представителей одной или нескольких ID-групп. При этом принадлежность той или иной Lon-протеазы к определенному подсемейству отражает не только различия их общей архитектуры, но и различия некоторых консенсусных элементов, а также природы источников ферментов. Так, Lon-протеазы, функционирующие в бактериях и эукариотах, образуют превалирующее подсемейство А (представители ID-групп S16.001, 002 и др.), ферменты подсемейства В (ID S16.005) – характеристические для архей, а немногочисленные LonС-протеазы (ID S16.007) обнаруживаются только в некоторых термофильных бактериях [1, 3–10].

 

Рис. 1. Доменная организация и консенсусные элементы активных центров Lon-протеаз различных подсемейств. (а) – Lon-протеазы подсемейств А, В и С; (б) – Lon-протеазы подсемейства ВА. Субдомены NSD, NTD5H и NTD3H формируют N-концевую область LonA-протеаз. NB, NC, Nsh и NlgN-концевые фрагменты ферментов подсемейств В, С и ВА. Нуклеотид-связывающий (NB) и α-спирализованный (H) cубдомены светло-голубого и синего цвета характеризуют ААА+-модули типов A и В соответственно. Мотивы Уолкера представляют АТРазный активный центр. I (МА, Membrane Anchoring) и I* (ННЕ, Helical Harpin Extension) – вставочные домены. Протеазные домены (Р) кораллового цвета содержат активные центры А-типа, а бирюзового цвета – центры В-типа. Ф – остатки гидрофобных аминокислот, Х – остатки любых аминокислот. Каталитические остатки серина (S) и лизина (K) выделены красным цветом.

 

Общей характеристикой для Lon-протеаз всех подсемейств служит локализация в центральной части их аминокислотных последовательностей АТРазного компонента (А-домен), а в С-концевой – пептидазного (серин-лизиновая пептидгидролаза, Р-домен). Основные различия между членами подсемейств заключены в их N-концевых областях и во “вставочных” фрагментах (рис. 1а).

В Р-доменах ферментов семейства Lon выявлены два типа активных центров (А и В), которые различаются окружением остатков серина и лизина каталитической диады [11, 12]. При этом LonA-протеазы содержат центр типа А, а протеазы LonB и LonC – центры типа В (рис. 1а). Несмотря на отмеченные различия, кристаллические структуры Р-доменов ферментов разных подсемейств демонстрируют высокую степень топологического сходства [3, 13].

АТРазные А-домены Lon-протеаз состоят из характерных для белков ААА+-суперсемейства ААА+-модулей, сформированных нуклеотид-связывающими (NB или α/β) и α-спирализованными (H или α) субдоменами и дополнительными негомологичными фрагментами (рис. 1а) [14–16]. Последние либо локализованы в N-концевой части А-домена (NTD3H-субдомен у LonA-протеаз [3]), либо внедрены как вставочные домены в NB-субдомены ферментов (домены I (МА) и I* (ННЕ) у LonB- и LonC-протеаз соответственно [17]) (рис. 1а). LonA-протеазы включают также протяженный N-концевой домен (N), состоящий из двух субдоменов: NSD и NTD5H (рис. 1а) [3]. Следует заметить, что субдомены NTD5H и NTD3H в целом составляют фрагмент со вставочным coiled-coil-участком, который в работах [1, 18] рассматривается как индивидуальный α-спирализованный домен (HI(CC)).

В последнее время в ID-группе S16.005 произошли значительные изменения, обусловленные включением в эту группу блока бактериальных ферментов неархейного происхождения. Источники вновь включенных ферментов – исключительно бактерии классов Bacilli и Clostridia, относящихся к отделу Firmicutes. При этом общее количество бактериальных ферментов (168) намного превосходит количество “классических” архейных LonB-протеаз (22) группы S16.005 [6].

Анализ первичных структур бациллярных ферментов группы S16.005 показал, что их протеазные активные центры однозначно представляют тип A, а не В (рис. 1б), что противоречит первоначально принятой классификации Lon-протеаз. Вместе с тем у этих ферментов отсутствует характерная для LonA-протеаз пролонгированная N-концевая область, а их ААА+-модули содержат олигопептидные вставки, локализованные, как и у LonB-протеаз, между консенсусными мотивами Уолкера A и B. Однако размеры этих вставок (суммарно 22–23 а.о.) значительно отличаются от размеров крупных вставочных трансмембранных доменов истинных архейных LonB-протеаз (рис. 1б). Сочетание в бациллярных ферментах ID-группы S16.005 отдельных признаков LonA- и LonB-протеаз послужило основанием для предложения о выведении их в индивидуальное “гибридное” подсемейство Lon с наименованием “LonBA-протеазы” [2].

Новое “гибридное” подсемейство LonBA-протеаз. Изучение первого модельного фермента предполагаемого нового подсемейства – LonBA-протеазы из Bacillus subtilis (BsLonBA, MER0002228) – показало, что его базовые ферментативные свойства значительно отличаются от свойств как LonA-, так и LonB-протеаз. Более того, кристаллическая структура протеазного домена BsLonBA оказалась уникальной для семейства Lon-протеаз [2]. Тем самым была подтверждена корректность выделения бактериальных ферментов группы S16.005 в отдельное подсемейство.

При анализе членов ID-группы S16.005, представленных в бактериях класса Clostridia, выяснилось, что наряду с ферментами, подобными LonBA-протеазам, обнаруженным в бациллах, клостридии содержат ферменты LonBA-типа, N-концевая область которых более чем в 2 раза превышает N-концевой фрагмент LonBA-протеаз бацилл. Это означает, что вновь выявленное подсемейство LonBA сформировано двумя группами ферментов, различающихся размерами N-концевых фрагментов. К одной группе (LonBA-sh) относятся ферменты с “короткими” (short) N-фрагментами (N-sh, 70–80 а.о.), а к другой (LonBA-lg) – с “длинными” (long) N-фрагментами (N-lg, 170–190 а.о.) (рис. 1б). При этом следует подчеркнуть, что ферменты группы LonBA-sh представлены и в бациллах, и в клостридиях, а группы LonBA-lg – только в клостридиях. Исследованная нами [2] первая модельная BsLonBA-протеаза – член группы LonBA-sh.

Для выявления содержания Lon-протеаз различных подсемейств в бактериальных источниках был проведен скрининг ферментов семейства Lon у 58 бацилл и 110 клостридий, представленных в ID-группе S16.005. Установлено, что для большинства бацилл характерно наличие одной LonA- и одной LonBA-sh-протеазы (исключение составляет Bacillus cereus, у которой обнаружены две LonA- и три LonBA-sh-протеазы). У клостридий набор Lon-протеаз значительно шире. Все они содержат LonBA-протеазы (LonBA-sh либо LonBA-lg или одновременно оба варианта), а также (в большинстве случаев) протеазы подсемейства LonA. Кроме того, более чем у половины клостридий обнаружены еще и LonC-подобные протеазы. Наибольшее количество различных Lon-протеаз (24) было выявлено у хорошо изученного организма Clostridium botulinum [6].

В противоположность фирмикутам практически все архейные источники ферментов ID-группы S16.005 содержат исключительно “классические” LonB-протеазы, и только у трех организмов из двадцати двух обнаружены также протеазы LonA. Нужно заметить, что в E. coli единственный Lon-фермент – EcLonA-протеаза – основная модель для всего семейства. Представленность Lon-протеаз различных подсемейств в бактериях отдела Firmicutes в сравнении с протеобактериями и археями отражена в табл. 1 на примере четырех организмов: B. subtilis, C. botulinum, E. coli и Archaeoglobus fulgidus.

 

Таблица 1. Содержание Lon-протеаз различных подсемейств в бактериях B. subtilis, C. botulinum, E. coli и A. fulgidus по данным базы MEROPS

Семейство Lon S16

Бактерии

Археи

тип протеолитического центра

подсемейство

Proteobacteria

Firmicutes

Euryarchaeota

Bacilli

Clostridia

ID

E. coli

ID

B. subtilis

ID

C. botulinum

ID

A. fulgidus

А

LonA

001

0000485*

001

UPW

0000487

1037043

001

0078975

0113785

0245086

0360567

0476087

LonBA

short

005

UPW

0002228*

1030684

1037433

005

UPW

0078974*

0245087*

0361555

0475702

0475680*

1032601

long

005

0078953*

0114077*

0245321*

0475665

0475690

0475693

В

LonB

005

0003868

LonC-

подобные

UPW

0079343

0114123

0245245

0472512

0472843

1030320

1035981

Примечание: приведены номера ID-групп и индивидуальных ферментов (MERXXXXXXX). Прочерк – отсутствие ферментов указанной группы.

* Последовательности, сопоставленные на рис. 2.

 

Для оценки консервативности структурных фрагментов, формирующих LonBA-протеазы, было проведено выравнивание трех наборов последовательностей (по шесть представителей LonBA-протеаз бацилл, коротких и длинных LonBA-протеаз клостридий), результаты которого суммированы в табл. 2. Установлено, что наивысшую степень подобия (>80%) проявляют нуклеотид-связывающие (NB) субдомены всех групп ферментов (строки 1, 2 и 4 в табл. 2). Высокая степень подобия сохраняется и при “перекрестном” сопоставлении NB-субдоменов всех коротких ферментов независимо от класса бактерий (строка 3). Однако подобие между NB-субдоменами коротких и длинных LonBA-протеаз клостридий заметно ниже (<70%) (строка 5).

 

Таблица 2. Степени подобия фрагментов последовательностей “коротких” и “длинных” LonBA-протеаз бацилл и клостридий

Источники ферментов

Фрагменты ферментов

организмы

количество ферментов

N-концевой фрагмент

NB-субдомен

H-субдомен

P-домен

размер, а.о.

подобие, %

размер, а.о.

подобие, %

размер, а.о.

подобие, %

размер, а.о.

подобие, %

LonBAs-short

1

Bacilli

6

73

67.1

190

89.5

92

51.1

185

66.5

2

Clostridia

6

80

46.3

190

86.3

90

55.6

184

63.0

3

Bacilli/Clostridia

12

80

35.0

190

81.6

92

38.0

185

53.0

LonBAs-long

4

Clostridia

6

183

41.6

190

83.8

97

56.7

169

72.8

LonBAs-(short/long)

5

Clostridia

12

80

17.5

191

67.5

97

28.9

185

42.2

EcLonA*/LonBAs (bac-clos)

6

LonA/bac-LonBA

7

н.о.**

н.о.

201

41.8

118

21.2

195

41.5

7

LonA/clos-LonBA-sh

7

н.о.

н.о.

192

39.6

149

20.8

194

46.4

8

LonA/clos-LonBA-lg

7

н.о.

н.о.

203

42.4

123

23.6

180

52.2

Примечание: источники ферментов – класс Bacilli (LonBAs-short): B. subtilis (MER0002228), Alicyclobacillus acidocaldarius (MER0127779), B. cereus (MER0029009), Brevibacillus brevis (MER0166780), Paenibacillus lactis (MER0361527), Sporolactobacillus inulinus (MER0361592); класс Clostridia (LonBAs-short/long): C. botulinum (MER0078974/MER0078953), C. cellulovorans (MER0222493/MER0361471), C. saccharoperbutylacetonicum (MER0357376/MER0356900), Desulfosporosinus acidiphilus (MER0361501/MER0361560), Syntrophomonas wolfei (MER0080698/MER0051945), Thermosinus carboxydivorans (MER0088465/MER0088447).

* EcLonA – LonA-протеаза из E. coli (MER0000485).

** н.о. – не определяли.

 

Неожиданно оказалось, что у α-спирализованных субдоменов (Н) степени подобия невысоки (~50%), и они еще больше снижаются в перекрестных группах (до 38 и 29%) (строки 1–5). Можно предположить, что значительная разница между субдоменами NB и Н по консервативности может негативно отразиться на функциональной активности ААА+-модулей, которые они формируют. Относительно невысокое подобие демонстрируют также группы N-концевых фрагментов (особенно в своих перекрестных вариантах) (табл. 2).

Кардинальное различие между Р-доменами коротких и длинных LonBA-протеаз было выявлено при выравнивании полноразмерных последовательностей этих групп ферментов. Оказалось, что в длинных LonBA-протеазах отсутствует фрагмент, соответствующий 14-членной β-структурированной вставке, обнаруженной в бациллярных LonBA-протеазах, наличие которой определяет уникальность укладки их Р-доменов [2]. Видимо, это служит основной причиной невысокого подобия (~40%) доменов коротких и длинных LonBA-протеаз клостридий (табл. 2, строка 5).

На рис. 2 представлено сопоставление последовательностей BsLonBA, а также трех коротких и трех длинных LonBA-протеаз C. botulinum с последовательностью модельной EcLonA-протеазы, выполненное с учетом известных данных по 3D-структурам EcLonA и BsLonBA. При этом в отношении BsLonBA были использованы экспериментально определенная кристаллическая структура Р-домена и предсказанная структура А-фрагмента этого фермента [2]. Вторичная структура CbLonBA-lg1 – одной из длинных LonBA-протеаз C. botulinum – предсказана с помощью программы PSSpred (https://zhanggroup.org/PSSpred/).

 

Рис. 2. Сопоставление последовательностей LonВA-протеаз из Bacillus subtilis и Clostridium botulinum с последовательностью модельной LonA-протеазы из Escherichia coli с учетом структурных данных, полученных для EcLonA и BsLonBA [2]. Источники Lon-протеаз: E. coliEcLonA (MER0000485, PDB: 1RRE, 1RR9, 6U5Z); B. subtilis BsLonBA (MER0002228, PDB: 8DVH); C. botulinum CbBA-sh1 (MER0078974), CbBA-sh2 (MER0245087), CbBA-sh3 (MER0475680), CbBA-lg1 (MER0078953), CbBA-lg2 (MER0245321), CbBA-lg3 (MER0114077). Пометки “sh” и “lg” означают “короткие” и “длинные” LonBA-протеазы соответственно. Указана нумерация аминокислотных остатков для последовательностей EcLonA, BsLonBA и CbLonBA-lg1. Выравнивание первичных структур проведено с помощью программы https://www.ebi.ac.uk/jdispatcher/msa/clustalo. Для EcLonA и BsLonBA элементы вторичных структур представлены согласно данным работы Gustchina et al. [2], а для CbLonBA-lg1 – согласно предсказанию (https://zhanggroup.org/PSSpred/). Красным цветом показаны α-спирали, розовым – 310-спирали, синим – β-тяжи, черным – фрагменты, не включенные в элементы вторичной структуры. Подчеркнуты консенсусные элементы: мотивы Уолкера (Walker A и Walker B), ключевые остатки Y и LH/D петель Pore loop-1 и Pore loop-2 соответственно, остатки сенсор-1 и сенсор-2 (s1 и s2), “аргининовый палец” (RF), окружение каталитических остатков серина (S*) и лизина (K*). В последовательностях всех LonBA-протеаз подчеркнуты вставочные 14-членные фрагменты NB-субдоменов, а в коротких LonBA-протеазах – 14-членные фрагменты, соответствующие участку (Е392–K405) BsLonBA, формирующему уникальный вставочный β-бочонок в структуре Р-домена.

 

Как следует из рис. 2, вторичная структура CbLonBA-lg1 в целом соответствует структуре BsLonBA. При этом N-концевой фрагмент CbLonBA-lg1, предшествующий ААА+-модулю фермента, как и в случае BsLonBA и EcLonA, состоит из ряда крупных α-спиралей. Однако значительного подобия между этими фрагментами не обнаружено. Кроме того, в N-концевой последовательности CbLonBA-lg1 не выявлено ни coiled-coil-участка (как М173–М280 у EcLonA), ни трансмембранного сегмента (как S2–L26 у BsLonBA). Наиболее выраженное сходство обнаруживают протяженные α-спирали, локализованные в фрагментах D188–D245 EcLonA-протеазы и D24–G81 CbLonBA-lg1, где степень подобия составляет 53.8%, а консервативность аминокислотных остатков – 18.5%.

Нуклеотид-связывающие и α-спирализованные субдомены LonBA-протеаз и бацилл, и клостридий, формирующие ААА+-модули ферментов, демонстрируют заметное и примерно равное подобие с соответствующими фрагментами EcLonA-протеазы (~40% для NB-субдоменов и 20% для Н-субдоменов) (табл. 2, строки 6–8). Надо полагать, что низкое сходство ААА+-модулей EcLonA и LonBA-протеаз в большой степени обусловлено разницей размеров сопоставляемых субдоменов. Так, NB-субдомены LonBA-протеаз значительно крупнее NB-субдомена EcLonA, поскольку кроме вставочных фрагментов, заключенных между мотивами Уолкера (суммарно 22 или 23 а.о.), они имеют также вставки по 14 а.о. в своих С-концевых областях (рис. 2). Н-Субдомены LonBA-протеаз, напротив, короче Н-субдомена EcLonA на 16–23 а.о. (рис. 2). Отмеченные различия могут отразиться на пространственных структурах ферментов вновь выявленного LonBA-подсемейства.

Подобие Р-доменов EcLonA и LonBA-протеаз тоже невелико (табл. 2, строки 6–8). Но надо подчеркнуть, что в этом случае, как и следовало ожидать, большее сходство обнаружено между Р-доменами EcLonA и длинных LonBAs, не имеющих уникальной β-структурированной вставки, характерной для коротких LonBA-протеаз (рис. 2).

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

Аминокислотные последовательности анализируемых протеаз получали из баз данных MEROPS (https://www.ebi.ac.uk/merops/) и UniProt Knowledgebase (https://www.uniprot.org/).

Для предсказания вторичных структур белков использовали серверы PSSpred (https://zhanggroup.org/PSSpred/), Jpred 4 (https://www.compbio.dundee.ac.uk/jpred4/index.html) и Porter 5.0 (https://distilldeep.ucd.ie/porter/).

Поиск трансмембранных фрагментов проводили с помощью серверов SMART (https://smart.embl-heidelberg.de/smart/set_mode.cgi?NORMAL=1), TMHMM-2.0 (https://services.healthtech.dtu.dk/services/TMHMM-2.0/) и HMMTOP (https://www.enzim.hu/hmmtop/html/submit.html).

Наличие coiled-coil-областей в белках выявляли с использованием серверов CoCoPRED (https://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/CoCoPRED/), Prabi coiled-coil prediction (https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=/NPSA/npsa_lupas.html) и Waggawagga coiled-coil prediction (https://waggawagga.motorprotein.de/).

Для выравнивания последовательностей использовали сервер https://www.ebi.ac.uk/jdispatcher/msa/clustalo.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Проведено биоинформатическое исследование недавно выявленной в семействе Lon-протеаз группы ферментов из бацилл и клостридий, которые в базе данных MEROPS оказались отнесенными к подсемейству LonВ. Охарактеризовано как общее строение вновь выявленных ферментов, так и индивидуальные особенности их структуры. Установлено, что существенные структурные отличия этих протеаз от ранее изученных ферментов Lon-семейства не позволяют в полной мере отнести их ни к одному из трех известных классических подсемейств, а скорее свидетельствуют об обнаружении отдельного четвертого подсемейства “гибридных” LonBA-протеаз.

Показано, что новое подсемейство LonBA состоит из двух сообществ ферментов, различающихся строением своих N-концевых фрагментов и протеазных доменов. Обнаружение в различных организмах бактерий отдела Firmicutes, к которому принадлежат бациллы и клостридии, большого разнообразия АТР-зависимых Lon-протеаз, не относящихся к “классическим” LonA-ферментам, позволяет предположить наличие у представителей во многом все еще загадочного семейства Lon новых невыявленных функций, которые требуют дальнейшего глубокого исследования.

ФОНДОВАЯ ПОДДЕРЖКА

Работа выполнена при поддержке Российского научного фонда (проект № 21-74-20154).

СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ СТАНДАРТОВ

Настоящая статья не содержит описания каких-либо исследований с участием людей и использованием животных в качестве объектов.

КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

×

About the authors

A. G. Andrianova

Shemyakin–Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry, Russian Academy of Sciences

Email: tatyana.rotanova@ibch.ru
Russian Federation, ul. Mikluho-Maklaya 16/10, Moscow, 117997

A. M. Kudzhaev

Shemyakin–Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry, Russian Academy of Sciences

Email: tatyana.rotanova@ibch.ru
Russian Federation, ul. Mikluho-Maklaya 16/10, Moscow, 117997

I. V. Smirnov

Shemyakin–Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry, Russian Academy of Sciences

Email: tatyana.rotanova@ibch.ru
Russian Federation, ul. Mikluho-Maklaya 16/10, Moscow, 117997

T. V. Rotanova

Shemyakin–Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry, Russian Academy of Sciences

Author for correspondence.
Email: tatyana.rotanova@ibch.ru
Russian Federation, ul. Mikluho-Maklaya 16/10, Moscow, 117997

References

  1. Kudzhaev A.M., Andrianova A.G., Gustchina A.E., Smirnov I.V., Rotanova T.V. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2022. V. 48. P. 678–709. https://doi.org/10.1134/s1068162022040136
  2. Gustchina A., Li M., Andrianova A.G., Kudzhaev A.M., Lountos G.T., Sekula B., Cherry S., Tropea J.E., Smirnov I.V., Wlodawer A., Rotanova T.V. // Int. J. Mol. Sci. 2022. V. 23. P. 11425. https://doi.org/10.3390/ijms231911425
  3. Wlodawer A., Sekula B., Gustchina A., Rotanova T.V. // J. Mol. Biol. 2022. V. 434. P. 167504. https://doi.org/10.1016/j.jmb.2022.167504
  4. Liao J.H., Kuo C.I., Huang Y.Y., Lin Y.C., Lin Y.C., Yang C.Y., Wu W.L., Chang W.H., Liaw Y.C., Lin L.H., Chang C.I., Wu S.H. // PLoS One. 2012. V. 7. P. e40226. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0040226
  5. Sauer R.T., Baker T.A. // Ann. Rev. Biochem. 2011. V. 80. P. 587–612. https://doi.org/10.1146/annurev-biochem-060408-172623
  6. Rawlings N.D., Barrett A.J., Thomas P.D., Huang X., Bateman A., Finn R.D. // Nucleic Acids Res. 2018. V. 46. P. 624–632. https://doi.org/10.1093/nar/gkx1134
  7. Gottesman S. // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 2003. V. 19. P. 565–587. https://doi.org/10.1146/annurev.cellbio.19.110701.153228
  8. Pei J., Yan J., Jiang Y. // Hindawi Publishing Corporation. Archaea. 2016. Article ID 5759765. https://doi.org/10.1155/2016/5759765
  9. Cerletti M., Paggi R.A., Guevara C.R., Poetsch A., De Castro R.E. // J. Proteomics. 2015. V. 121. P. 1–14. https://doi.org/10.1016/j.jprot.2015.03.016
  10. Maehara T., Hoshino T., Nakamura A. // Extremophiles. 2008. V. 12. P. 285–296. https://doi.org/10.1007/s00792-007-0129-3
  11. Rotanova T.V., Melnikov E.E., Tsirulnikov K.B. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2003. V. 29. P. 85–87.
  12. Rotanova T.V., Melnikov E.E., Khalatova A.G., Makhovskaya O.V., Botos I., Wlodawer A., Gustchina A. // Eur. J. Biochem. 2004. V. 271. P. 4865–4871. https://doi.org/10.1111/j.1432-1033.2004.04452.x
  13. Rotanova T.V., Botos I., Melnikov E.E., Rasulova F., Gustchina A., Maurizi M.R., Wlodawer A. // Protein Sci. 2006. V. 15. P. 1815–1828. https://doi.org/10.1110/ps.052069306
  14. Iyer L.M., Leipe D.D., Koonin E.V., Aravind L. // J. Struct. Biol. 2004. V. 146. P. 11–31. https://doi.org/10.1016/j.jsb.2003.10.010
  15. Lupas A.N., Martin J. // Curr. Opin. Struct. Biol. 2002. V. 12. P. 746–753. https://doi.org/10.1016/s0959-440x(02)00388-3
  16. Bittner L.M., Arends J., Narberhaus F. // Biopolymers. 2016. V. 105. P. 505–517. https://doi.org/10.1002/bip.22831
  17. Liao J.H., Ihara K., Kuo C.I., Huang K.F., Wakatsuki S., Wu S.H., Chang C.I. // Acta Cryst. 2013. V. 69. P. 1395–1402. https://doi.org/10.1107/S0907444913008214
  18. Rotanova T.V., Andrianova A.G., Kudzhaev A.M., Li M., Botos I., Wlodawer A., Gustchina A. // FEBS Open Bio. 2019. V. 9. P. 1536–1551. https://doi.org/10.1002/2211-5463.12691

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
2. Fig. 1. Domain organization and consensus elements of the active centers of Lon proteases of different subfamilies. (a) – Lon proteases of subfamilies A, B and C; (b) – Lon proteases of subfamily BA. Subdomains NSD, NTD5H and NTD3H form the N-terminal region of LonA proteases. NB, NC, Nsh and Nlg are N-terminal fragments of enzymes of subfamilies B, C and BA. The nucleotide-binding (NB) and α-helical (H) subdomains in light blue and blue color characterize AAA+ modules of types A and B, respectively. Walker motifs represent the ATPase active center. I (MA, Membrane Anchoring) and I* (HHE, Helical Harpin Extension) are insertion domains. The coral-colored protease domains (P) contain A-type active centers, while the turquoise-colored ones contain B-type centers. F are the residues of hydrophobic amino acids, X are the residues of any amino acids. The catalytic residues of serine (S) and lysine (K) are highlighted in red.

Download (177KB)
3. Fig. 2. Comparison of the sequences of LonBA proteases from Bacillus subtilis and Clostridium botulinum with the sequence of the model LonA protease from Escherichia coli, taking into account the structural data obtained for EcLonA and BsLonBA [2]. Sources of Lon proteases: E. coli – EcLonA (MER0000485, PDB: 1RRE, 1RR9, 6U5Z); B. subtilis – BsLonBA (MER0002228, PDB: 8DVH); C. botulinum – CbBA-sh1 (MER0078974), CbBA-sh2 (MER0245087), CbBA-sh3 (MER0475680), CbBA-lg1 (MER0078953), CbBA-lg2 (MER0245321), CbBA-lg3 (MER0114077). The notations “sh” and “lg” mean “short” and “long” LonBA proteases, respectively. The amino acid residue numbers are given for the sequences of EcLonA, BsLonBA and CbLonBA-lg1. The alignment of the primary structures was performed using the program https://www.ebi.ac.uk/jdispatcher/msa/clustalo. For EcLonA and BsLonBA, the secondary structure elements are presented according to the work of Gustchina et al. [2], and for CbLonBA-lg1 – as predicted (https://zhanggroup.org/PSSpred/). α-helices are shown in red, 310-helices in pink, β-strands in blue, and fragments not included in the secondary structure elements in black. Consensus elements are underlined: Walker motifs (Walker A and Walker B), key residues Y and LH/D of Pore loop-1 and Pore loop-2, respectively, residues sensor-1 and sensor-2 (s1 and s2), “arginine finger” (RF), the environment of the catalytic serine (S*) and lysine (K*) residues. In the sequences of all LonBA proteases, the inserted 14-member fragments of the NB subdomains are underlined, and in short LonBA proteases, the 14-member fragments corresponding to the region (E392–K405) of BsLonBA, which forms a unique inserted β-barrel in the P-domain structure, are underlined.

Download (925KB)

Copyright (c) 2024 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».