Гибридные органоминеральные носители для терапевтических белков

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Системы доставки лекарственных средств разрабатываются для обеспечения необходимой концентрации и пролонгированного эффекта действующего вещества в организме. Перорально применяемые белковые препараты требуют защиты от протеолиза в желудочно-кишечном тракте. Биосовместимые гидрофильные полисахариды в составе матрицы особенно перспективны, поскольку не раздражают кишечник и постепенно расщепляются специфическими гликозидазами, высвобождая терапевтический агент. Введение в состав носителя нерастворимой пористой минеральной матрицы дает возможность повысить концентрацию терапевтического средства в матрице без значительного увеличения объема таблетированной формы препарата. В данной работе создан новый оригинальный органоминеральный носитель на основе термообработанного измельченного цеолита клиноптилолита в сочетании с природными полисахаридами красных морских водорослей – агар-агара, агарозы и каррагинана. Гранулярный и мелкодисперсный клиноптилолиты в составе матрикса загружены перспективным терапевтическим агентом – рибонуклеазой Bacillus pumilus (биназой), проявляющей селективную цитотоксичность к опухолевым клеткам. Установлено, что как гранулярный, так и мелкодисперсный цеолиты в комплексе с полисахаридами лучше удерживают белок по сравнению с чистыми цеолитами и обеспечивают постепенный полный выход фермента за 18 ч, при этом биназа сохраняет каталитическую активность и вызывает апоптоз до 23.8% популяции клеток аденокарциномы двенадцатиперстной кишки человека HuTu80. Полученные данные обосновывают перспективность конструирования лекарственных форм на основе исследованных органоминеральных носителей.

Об авторах

П. В. Зеленихин

Казанский (Приволжский) федеральный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: pasha_mic@mail.ru
Россия, 420008, Казань, Кремлевская, 18

А. Г. Галеева

Казанский (Приволжский) федеральный университет; ФГБНУ “Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности”
(“ФЦТРБ-ВНИВИ”)

Email: pasha_mic@mail.ru
Россия, 420008, Казань, Кремлевская, 18; Россия, 420075, Казань, Научный городок-2

Р. Р. Исламова

Казанский (Приволжский) федеральный университет

Email: pasha_mic@mail.ru
Россия, 420008, Казань, Кремлевская, 18

О. Н. Лопатин

Казанский (Приволжский) федеральный университет

Email: pasha_mic@mail.ru
Россия, 420008, Казань, Кремлевская, 18

Р. С. Яруллин

ОАО “Татнефтехиминвест-холдинг”

Email: pasha_mic@mail.ru
Россия, 420061, Казань, ул. Николая Ершова, 29А

О. Н. Ильинская

Казанский (Приволжский) федеральный университет

Email: pasha_mic@mail.ru
Россия, 420008, Казань, Кремлевская, 18

Список литературы

  1. Бондарев А.В., Жилякова Е.Т. // Фармация и фармакология. 2019. Т. 7. С. 4–12. https://doi.org/10.19163/2307-9266-2019-7-1-4-12
  2. Бондарев А.В., Жилякова Е.Т., Демина Н.Б., Размахнин К.К. // Разработка и регистрация лекарственных средств. 2021. Т. 10. С. 65–71. https://doi.org/10.33380/2305-2066-2021-10-4-65-71
  3. Chirani N., Yahia L’H., Gritsch L., Motta F.L., Chirani S., Fare S. // J. Biomed. Sci. 2015. V. 4. P. 1–23. https://doi.org/10.4172/2254-609X.100013
  4. Kouser R., Vashist A., Zafaryab M., Rizvi M.A., Ahmad S. // ACS Appl. Bio Mater. 2018. V. 1. P. 1810–1822. https://doi.org/10.1021/acsabm.8b00260
  5. Liu X., Steiger C., Lin S., Parada G.A., Liu J., Chan H.F., Yuk H., Phan N.V., Collins J., Tamang S., Traverso G., Zhao X. // Nat. Commun. 2019. V. 1. P. 493. https://doi.org/10.1038/s41467-019-08355-2
  6. Norouzi M., Nazari B., Miller D.W. // Drug Discov. Today. 2016. V. 21. P. 1835–1849. https://doi.org/10.1016/j.drudis.2016.07.006
  7. Gao W., Zhang Y., Zhang Q., Zhang L. // Ann. Biomed. Eng. 2016. V. 44. P. 2049–2061. https://doi.org/10.1007/s10439-016-1583-9
  8. Ivanova I.I., Knyazeva E.E. // Chem. Soc. Rev. 2013. V. 42. P. 3671–3688. https://doi.org/10.1039/c2cs35341e
  9. Attanoos R.L., Churg A., Galateau-Salle F., Gibbs A.R., Roggli V.L. // Arch. Path. Lab. 2018. V. 142. P. 753–760. https://doi.org/10.5858/arpa.2017-0365-RA
  10. Khojaewa V., Lopatin O., Zelenikhin P., Ilinskaya O. // Front. Pharmacol. 2019. V. 10. P. 442. https://doi.org/10.3389/fphar.2019.00442
  11. Mastinu A., Kumar A., Maccarinelli G., Bonini S.A., Premoli M., Aria F., Gianoncelli A., Memo M. // Molecules. 2019. V. 24. P. 1517. https://doi.org/10.3390/molecules24081517
  12. Kraljević Pavelić S., Simović Medica J., Gumbarević D., Filošević A., Pržulj N., Pavelić K. // Front. Pharmacol. 2018. V. 9. P. 1350. https://doi.org/10.3389/fphar.2018.01350
  13. Исламова Р.Р., Яковлева Г.Ю., Ильинская О.Н., Лопатин О.Н. // Матер. международ. науч. конфер. “Проблемы геологии и расширение минерально-сырьевой базы стран Евразии”, Алматы. 2019. С. 317–322. ISBN 978-601-332-416-6.
  14. Исламова Р.Р., Яковлева Г.И., Тюрин А.Н., Ильинская О.Н., Лопатин О.Н. // Записки российского минералогического общества. 2022. Т. 151. С. 105–113.
  15. Makarov A.A., Kolchinsky A., Ilinskaya O.N. // BioEssays. 2008. V. 30. P. 781–790. https://doi.org/10.1002/bies.20789
  16. Garipov A.R., Nesmelov A.A., Cabrera-Fuentes H.A., Ilinskaya O.N. // Toxicon. 2014. V. 92. P. 54–59. https://doi.org/10.1016/j.toxicon.2014.09.014
  17. Mohamed I.S.E., Sen’kova A.V., Nadyrova A.I., Savin I.A., Markov A.V., Mitkevich V.A., Makarov A.A., Ilinskaya O.N., Mironova N.L., Zenkova M.A. // Biomolecules. 2020. V. 10. P. 1509. https://doi.org/10.3390/biom10111
  18. Bogdanova L.R., Zelenikhin P.V., Makarova A.O., Zueva O.S., Salnikov V.V., Zuev Y.F., Ilinskaya O.N. // Polymers (Basel). 2022. V. 14. P. 2461. https://doi.org/10.3390/polym14122461
  19. Khodzhaeva V., Makeeva A., Ulyanova V., Zelenikhin P., Evtugyn V., Hardt M., Rozhina E., Lvov Y., Fakhrullin R., Ilinskaya O. // Front. Pharmacol. 2017. V. 8. P. 631. https://doi.org/10.3389/fphar.2017.00631
  20. Ilinskaya O., Ulyanova V., Lisevich I., Dudkina E., Zakharchenko N., Kusova A., Faizullin D., Zuev Y. // Biomed. Res. Int. 2018. P. 4837623. https://doi.org/10.1155/2018/4837623
  21. Cui S., Arosio D., Doherty K.M., Brosh R.M., Jr., Falaschi A., Vindigni A. // Nucleic Acids Res. 2004. V. 32. P. 2158–2170. https://doi.org/10.1093/nar/gkh540
  22. Wasilewska M., Adamczyk Z., Jachimska B. // Langmuir. 2009. V. 25. P. 3698–3704. https://doi.org/10.1021/la803662a
  23. Dudkina E., Ulyanova V., Shah Mahmud R., Khodzhaeva V., Dao L., Vershinina V., Kolpakov A., Ilinskaya O. // FEBS Open Biol. 2016. V. 6. P. 24‒32. https://doi.org/10.1002/feb4.12023
  24. Foglar L., Sipos L., Bolf N. // World J. Microbiol. Biotechnol. 2007. V. 23. P. 1595–1603. https://doi.org/10.1007/s11274-007-9405-8
  25. Колпаков А.И., Ильинская О.Н. // Клиническая и лабораторная диагностика. 1999. № 5. С. 14‒16.
  26. Пирузян А.В., Боковикова Т.Н., Найденов Ю.В. // Электронный научно-технический журнал “Физико-химический анализ свойств многокомпонентных систем”. 2008. № 6. https://fh.kubstu.ru/fams/issues/issue06/st0630.pdf

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2.

3.

Скачать (218KB)
4.

Скачать (347KB)
5.

Скачать (301KB)

© П.В. Зеленихин, А.Г. Галеева, Р.Р. Исламова, О.Н. Лопатин, Р.С. Яруллин, О.Н. Ильинская, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах