Водные субмикронные дисперсии поверхностно-активных веществ как смачиватели и усилители проницаемости листьев картофеля

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Для водных растворов и субмикронных дисперсий немицеллообразующих ПАВ (Tween 85, Brij L4 и Silwet L-77) получены кинетические тензиометрические зависимости и изотермы смачивания листьев картофеля сорта Прайм. Разработана методика определения скорости впитывания исследуемых жидкостей в листья картофеля. Скорость проникновения в лист увеличивается с ростом концентрации ПАВ. Возрастание проницаемости и эффективности смачивания наблюдается для следующего ряда: Tween 85 < Brij L4 < Silwet L-77. Полученные данные позволяют оценить перспективы применения исследованных водных дисперсий ПАВ в качестве платформ доставки целевых компонентов в листья растений картофеля для ингибирования размножения патогенов.

Об авторах

Н. М. Задымова

Московский государственный университет имени М. В. Ломоносова

Email: nzadymova@gmail.com

Ю. Д. Александров

Московский государственный университет имени М. В. Ломоносова;Институт биоорганической химии имени академиков М. М. Шемякина и Ю. А. Овчинникова Российской академии наук

Н. О. Калинина

Институт биоорганической химии имени академиков М. М. Шемякина и Ю. А. Овчинникова Российской академии наук;Институт физико-химической биологии имени А. Н. Белозерского Московского государственного университета имени М. В. Ломоносова

М. Э. Тальянский

Институт биоорганической химии имени академиков М. М. Шемякина и Ю. А. Овчинникова Российской академии наук

З. Н. Скворцова

Московский государственный университет имени М. В. Ломоносова;Институт биоорганической химии имени академиков М. М. Шемякина и Ю. А. Овчинникова Российской академии наук

Список литературы

  1. Игнатов А.Н., Панычева Ю.С., Воронина М.В., Васильев Д.М., Джалилов Ф.С. // Картофель и овощи. 2019. Т. 9. C. 8. doi: 10.25630/PAV.2019.57.62.003
  2. Cillo F., Palukaitis P. // Adv. Virus Res. 2014. Vol. 90. P. 35. doi: 10.1016/B978-0-12-801246-8.00002-0
  3. Morozov S.Y., Solovyev A.G., Kalinina N.O., Taliansky M.E. // Acta Nat. 2019. Vol. 11. P. 13. doi: 10.32607/20758251-2019-11-4-13-21
  4. Zhu F., Cao Ch., Cao L., Li F., Du F, Huang Q. // Molecules. 2019. Vol. 24. P. 2094. doi: 10.3390/molecules24112094
  5. He Y., Xiao S., Wu J., Fang H. // Applied Sciences. 2019. Vol. 9. P. 593. doi: 10.3390/app9030593
  6. Taylor P. // Curr. Opin. Colloid Interface Sci. 2011. Vol. 16. P. 326. doi: 10.1016/j.cocis.2010.12.003
  7. Massinon M., Lebeau F. // Biotechnol. Agron. Soc. Environ. 2013. Vol. 17. N 3. P. 494.
  8. Puente D.W., Baur P. // Pest Manag Sci. 2011. Vol. 67. N 7. P. 798. doi: 10.1002/ps.2116
  9. Holloway P.J. // Pestic. Sci. 1970. Vol. 1. N 4. P. 156. doi: 10.1002/ps.2780010411
  10. Fernández V., Gil-Pelegrín E., Eichert T. // Plant J. 2021. Vol. 105. N 4. P. 870. doi: 10.1111/tpj.15090
  11. Gaskin R.E., Steele K.D., Forster W.A. // New Zealand Plant Protection. 2005. Vol. 58. P. 179. doi: 10.30843/nzpp.2005.58.4244
  12. De Ruiter H., Uffing A.J.M., Meinen E., Prins A. // Weed Sci. 1990. Vol. 38. N 6. P. 567. doi: 10.1017/s004317450005150x
  13. Price C.E., Anderson N.H. // Pestic. Sci. 1985. Vol. 16. P. 369. doi: 10.1002/ps.2780160411
  14. Schreiber L., Schönherr J. // Pestic. Sci. 1992. Vol. 36. P. 213. doi: 10.1002/ps.2780360307
  15. Dybing C.D., Currier H.B. // Plant Physiol. 1961. Vol. 36. N 2. P. 169. doi: 10.1104/pp.36.2.169
  16. Barlas N.T., Bahamonde H.A., Pimentel C., Domínguez-Huidobro P., Pina C.M., Fernández V. // Plants J. 2023. Vol. 12. N 12. P. 2357. doi: 10.3390/plants12122357
  17. Schreel J.D., Leroux O., Goossens W., Brodersen C., Rubinstein A., Steppe K. // Plant. 2020. Vol. 103. N 2. P. 769. https://doi.org/10.1111/tpj.14770
  18. Задымова Н.М., Кармашева Н.В., Потешнова М.В., Цикурина Н.Н. // Коллоид. ж. 2002. Т. 64. № 4. С. 449
  19. Zadymova N.M., Karmasheva N.V., Poteshnova M.V., Tsikurina N.N. // Colloid J. 2002. Vol. 64. N 11. P. 400. doi: 10.1023/A:1016803616982
  20. Задымова Н.М., Куруленко В.В. // Коллоид. ж. 2022. Т. 84. № 1. С. 23
  21. Zadymova N.M., Kurulenko V.V. // Colloid J. 2022. Vol. 84. N 1. P. 20. doi: 10.1134/S1061933X22010148
  22. Задымова Н.М., Малашихина А.А. // Коллоид. ж. 2023. Т. 85. № 3. С. 296
  23. Zadymova N.M., Malashihina A.A. // Colloid J. 2023. V. 85. N 3. P. 366. doi: 10.1134/S1061933X23600173
  24. Berg J.C. An Introduction to Interfaces and Colloids: The Bridge to Nanoscience. New Jersey: World Scientific, 2009. P. 251, 223. doi: 10.1142/7579
  25. Silwet™ L-77 Silicone Surfactant/Technical Data Sheet. https://www.momentive.com/docs/default-source/tds/silwet/silwet-l-77-tds.pdf
  26. Sankaran A., Karakashev S.I., Sett S., Grozev N., Yarin A.L. // Adv. Colloid Interface Sci. 2019. Vol. 263. P. 1. doi: 10.1016/j.cis.2018.10.006
  27. Zadymova N.M., Poteshnova M.V. // Colloid Polym. Sci. 2019. Vol. 297. P. 453. doi: 10.1007/s00396-018-4447-z

© Российская академия наук, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах