Виментин в клетках Колмера у крыс линии SHR

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Клетки Колмера — это особая популяция фагоцитирующих клеток сосудистого сплетения, участвующих в поддержании гематоликворного барьера головного мозга. В нашей работе была изучена структурная организация этих клеток у крыс Wistar, Wistar-Kyoto и спонтанно-гипертензивных крыс линии SHR. Проведенное сравнительное иммуногистохимическое исследование с использованием антител против макрофагальных маркеров Iba-1 и CD68 и белка промежуточных филаментов виментина позволило показать, что клетки Колмера у трех исследованных групп животных различаются по своей функциональной активности. У крыс линий Wistar-Kyoto и SHR отмечали не только признаки активации клеток Колмера, заключающиеся в исчезновении отростков и приобретении клетками округлой формы, но и присутствие в активированных клетках виментина. Полученный результат свидетельствует о взаимосвязи экспрессии виментина с активацией фагоцитирующих клеток головного мозга.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Д. Э. Коржевский

Институт экспериментальной медицины

Email: valeriya.raz@yandex.ru
Россия, Санкт-Петербург

В. А. Разенкова

Институт экспериментальной медицины

Автор, ответственный за переписку.
Email: valeriya.raz@yandex.ru
Россия, Санкт-Петербург

О. В. Кирик

Институт экспериментальной медицины

Email: valeriya.raz@yandex.ru
Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Кирик О.В., Цыба Д.Л., Алексеева О.С., Колпакова М.Э., Яковлева А.А., Коржевский Д.Э. 2021. Изменения клеток Колмера у крыс линии SHR после ишемии головного мозга. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. Т. 107. № 2. С. 177. https://doi.org/10.31857/S0869813921010052 (Kirik O.V., Tsyba D.L., Alekseeva O.S., Kolpakova M.E., Jakovleva A.A., Korzhevskii D.E. 2021. Alterations in Kolmer cells in SHR line rats after brain ischemia. Ross. Fiziol. Zh. im. I. M. Sechenova. V. 107. No 2. P. 177)
  2. Al-Sarraf H., Philip L. 2003. Effect of hypertension on the integrity of blood brain and blood CSF barriers, cerebral blood flow and CSF secretion in the rat. Brain Res. V. 975. P. 179. https://doi.org/10.1016/S0006-8993(03)02632-5
  3. Amenta F., Di Tullio M.A., Tomassoni D. 2003. Arterial hypertension and brain damage — evidence from animal models (review). Clin. Exp. Hypertens. V. 25. P. 359. https://doi.org/10.1081/CEH-120023545
  4. Beneš P., Macečková V., Zdráhal Z., Konečná H., Zahradníčková E., Mužík J., Šmarda J. 2006. Role of vimentin in regulation of monocyte/macrophage differentiation. Differentiation. V. 74. P. 265. https://doi.org/10.1111/J.1432-0436.2006.00077.X
  5. Castro-Muñozledo F., Meza-Aguilar D.G., Domínguez-Castillo R., Hernández-Zequinely V., Sánchez-Guzmán E. 2017. Vimentin as a marker of early differentiating, highly motile corneal epithelial cells. J. Cell. Physiol. V. 232. P. 818. https://doi.org/10.1002/JCP.25487
  6. Fujishima M., Ibayashi S., Fujii K., Mori S., Fujishima M. 1995. Cerebral blood flow and brain function in hypertension. Hypertens. Res. V. 18. P. 111. https://doi.org/10.1291/HYPRES.18.111
  7. González-Marrero I., Castañeyra-Ruiz L., González-Toledo J.M., Castañeyra-Ruiz A., De Paz-Carmona H., Castro R., Hernandez-Fernaud J.R., Castañeyra-Perdomo A., Carmona-Calero E.M. 2013. High blood pressure effects on the blood to cerebrospinal fluid barrier and cerebrospinal fluid protein composition: a two-dimensional electrophoresis study in spontaneously hypertensive rats. Int. J. Hypertens. V. 2013: 164653. https://doi.org/10.1155/2013/164653
  8. González-Marrero I., Castañeyra-Ruiz L., M. González-Toledo J., Castañeyra-Ruiz A., de Paz-Carmona H., Ruiz-Mayor L., Castañeyra-Perdomo A., M. Carmona-Calero E. 2012. High blood pressure effects on the brain barriers and choroid plexus secretion. Neurosci. Med. V. 3. P. 60. https://doi.org/10.4236/NM.2012.31009.
  9. Gonzalez-Marrero I., Hernández-Abad L.G., Castañeyra-Ruiz L., Carmona-Calero E.M., Castañeyra-Perdomo A. 2022. Changes in the choroid plexuses and brain barriers associated with high blood pressure and ageing. Neurología (English Edition). V. 37. P. 371. https://doi.org/10.1016/J.NRLENG.2020.05.007
  10. H’Doubler P.B., Peterson M., Shek W., Auchincloss H., Abbott W.M., Orkin R.W. 1991. Spontaneously hypertensive and Wistar Kyoto rats are genetically disparate. Lab. Anim. Sci. V. 41. P. 471. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1666150/
  11. Jiang S.X., Slinn J., Aylsworth A., Hou S.T. 2012. Vimentin participates in microglia activation and neurotoxicity in cerebral ischemia. J. Neurochem. V. 122. P. 764. https://doi.org/10.1111/J.1471-4159.2012.07823.X
  12. Korzhevskii D.E., Kirik O.V. 2016. Brain microglia and microglial markers. Neurosci. Behav. Physiol. V. 46. P. 284. https://doi.org/10.1007/S11055-016-0231-Z/METRICS
  13. Korzhevskii D.E., Kirik O.V., Alekseeva O.S., Sukhorukova E.G., Syrtsova M.A. 2017. Intranuclear accumulation of Iba-1 protein in microgliocytes in the human brain. Neurosci. Behav. Physiol. V. 47. P. 435. https://doi.org/10.1007/S11055-017-0417-Z/METRICS
  14. Korzhevskii D.E., Sukhorukova E.G., Kirik O. V., Grigorev I.P. 2015. Immunohistochemical demonstration of specific antigens in the human brain fixed in zinc-ethanol-formaldehyde. Eur. J. Histochem. V. 59. P. 5. https://doi.org/10.4081/EJH.2015.2530
  15. Levinger I.M. 1971. The cerebral ventricles of the rat. J. Anat. V. 108. P. 447.
  16. Li Q., Barres B.A. 2017. Microglia and macrophages in brain homeostasis and disease. Nat. Rev. Immunol. V. 18. P. 225. https://doi.org/10.1038/nri.2017.125
  17. Ling E.-A., Kaur C., Lu J. 1998. Origin, nature, and some functional considerations of intraventricular macrophages, with special reference to the epiplexus cells. Microsc. Res. Tech. V. 41. P. 43. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-0029(19980401)41:1
  18. Mahesh P.P., Retnakumar R.J., Mundayoor S. 2016. Downregulation of vimentin in macrophages infected with live Mycobacterium tuberculosis is mediated by reactive oxygen species. Sci. Rep. V. 6. 6 P. 21526. https://doi.org/10.1038/srep21526
  19. Maslieieva V., Thompson R.J. 2014. A critical role for pannexin-1 in activation of innate immune cells of the choroid plexus. Channels (Austin). V. 8. P. 131. https://doi.org/10.4161/CHAN.27653
  20. Millard S.J., Weston-Green K., Newell K.A. 2020. The Wistar-Kyoto rat model of endogenous depression: A tool for exploring treatment resistance with an urgent need to focus on sex differences. Prog. Neuro-Psychopharmacol. Biol. Psychiatry. V. 101. P. 1. https://doi.org/10.1016/J.PNPBP.2020.109908
  21. Mor-Vaknin N., Punturieri A., Sitwala K., Markovitz D.M. 2002. Vimentin is secreted by activated macrophages. Nat. Cell Biol. V. 5. P. 59. https://doi.org/10.1038/ncb898
  22. Paxinos G., Watson C. 1982. The rat brain in stereotaxic coordinates. Academic Press. 480 p.
  23. Ruchoux M.M., Rosati C., Gelot A., Lhuintre Y., Garay R. 1992. Ultrastructural study of the choroid plexus of spontaneously hypertensive rats. Am. J. Hypertens. V. 5. P. 851. https://doi.org/10.1093/AJH/5.11.851
  24. Rueden C.T., Schindelin J., Hiner M.C., DeZonia B.E., Walter A.E., Arena E.T., Eliceiri K.W. 2017. ImageJ2: ImageJ for the next generation of scientific image data. BMC Bioinf. V. 18. P. 529. https://doi.org/10.1186/s12859-017-1934-z
  25. Yang F., Li H., Du Y., Shi Q., Zhao L. 2017. Downregulation of microRNA-34b is responsible for the elevation of blood pressure in spontaneously hypertensive rats. Mol. Med. Rep. V. 15. P. 1031. https://doi.org/10.3892/MMR.2017.6122

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Фрагменты сосудистого сплетения боковых желудочков головного мозга крыс линии Wistar (a), Wistar-Kyoto (б), SHR (в). Иммуноцитохимическая реакция на белок Iba-1 с подкраской ядер гематоксилином. Объектив Plan-Apochromat 10×/0.22. Стрелки указывают на клетки Колмера. Масштабный отрезок равен 20 мкм

Скачать (2MB)
Метаданные
3. Рис. 2. Виментин-иммунопозитивные клетки, ассоциированные с сосудистым сплетением в желудочках крыс линии Wistar (a), Wistar-Kyoto (б), SHR (в). Иммуноцитохимическая реакция на белок виментин с подкраской ядер гематоксилином. Объектив Plan-Apochromat 100×/1.25 Oil (масляная иммерсия). Стрелки указывают на виментин-положительные клетки. Масштабный отрезок равен 20 мкм

Скачать (1MB)
Метаданные
4. Рис. 3. Совместная локализация Iba-1 и CD68 в клетках сосудистого сплетения крысы SHR на последовательных срезах. Иммуноцитохимическая реакция на белок Iba-1 (а) и CD68 (б) с подкраской ядер гематоксилином. Стрелки указывают на клетки Колмера, звездочки — топографические маркеры, указывающие на одни и те же структуры на а, б. Объектив Plan-Apochromat 40×/0.65. Масштабный отрезок равен 50 мкм

Скачать (933KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Клетки Колмера в сосудистом сплетении бокового желудочка в головном мозге крысы линии Wistar (а, г), WKY (б, д) и SHR (в, е). Двойная иммунофлуоресцентная окраска на Iba-1 и виментин, визуализация при помощи флуорохромов RRX (красный цвет) и Cy2 (зеленый цвет) соответственно. Конфокальная лазерная микроскопия. Объектив Plan-Apochromat 63×/1.40 Oil DICM27 (масляная иммерсия); а–в — общий вид. Рамки ограничивают области, представленные на г–е. Масштабный отрезок — 10 мкм. г, д, е — отдельные клетки Колмера на поверхности сосудистого сплетения крыс линии Wistar (г), WKY (д) и SHR (е). Масшабный отрезок равен 5 мкм

Скачать (2MB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах