PTEN knockout leads to premature senescence of human endometrial stromal cells

Capa

Citar

Texto integral

Resumo

One of the defense mechanisms against neoplastic transformation of cells in response to oncogenic stimuli is cellular senescence. However, the ability of cells to activate this defense reaction depends on their nature and is not inherent in all cell types. Within the present study, we investigated reaction of human endometrial stromal cells (EnSC) towards classical oncogenic stimulus – PTEN inactivation. By using CRISPR/Cas9 genome editing technology, we generated EnSC line with PTEN knockout. We showed that reduced PTEN expression results in proliferation loss, cell hypertrophy, accumulation of lipofuscin and disturbed redox balance. Together these data favors senescence induction in PTEN-knockout EnSC. While studying the molecular mechanisms, we established the key role of the PI3K/AKT signaling pathway in the implementation of the EnSC senescence program under conditions of PTEN knockout. Inhibiting this signaling pathway by LY294002 prevented both the phenotypic manifestations of premature senescence and cell cycle arrest in PTEN-knockout EnSC. Thus, the development of premature senescence in response to reduced expression of the oncosuppressor PTEN can be considered as a protective mechanism that prevents malignant transformation of EnSC.

Texto integral

Принятые сокращения: АФК – активные формы кислорода; эСК – эндометриальные стромальные клетки человека; DCF и H2DCF-DA – дихлорофлуоресцеин и диацетат 2′,7′-DCF соответственно; DHR123 – дигидрородамин 123; LY – LY294002 (ингибитор киназы AKT); PI – йодистый пропидий, PICS – клеточное старение, индуцированное потерей PTEN; PIP3 – фосфатидилинозитол-3,4,5-трифосфат; Rho123 – родамин 123; SA-β-Gal – бета-галактозидаза, ассоциированная со старением.

Согласно современным представлениям, клеточное старение, наряду с апоптозом или некрозом, принято рассматривать как важнейшую физиологическую реакцию клеток на стресс (Campisi et al., 1996). Принципиальным отличием этой стресс-реакции является необратимая потеря пролиферации при сохранении жизнеспособности и метаболической активности клеток, что предотвращает распространение поврежденных клеток и, таким образом, препятствует их возможному злокачественному перерождению (Campisi et al., 1996).

За более чем полувековую историю изучения феномена старения клеток ученым удалось идентифицировать различные его формы, включая репликативную, стресс-индуцированную и онкоген-индуцированную (Huang et al., 2022). Однако и по сей день появляются экспериментальные свидетельства существования новых индукторов и форм клеточного старения. Так, сравнительно недавно было обнаружено, что потеря экспрессии онкосупрессоров, в частности белка PTEN, может приводить к запуску старения в различных типах клеток (Alimonti et al., 2010; Parisotto et al., 2018a; Jung et al., 2019).

PTEN представляет собой фосфатазу с двойной субстратной специфичностью, основные биологические эффекты которой определяются способностью дефосфорилировать липидный субстрат – фосфатидилинозитол-3,4,5-трифосфат (PIP3). Результатом дефосфорилирования PIP3 является ингибирование сигнального пути PI3K/AKT – основного пути роста и выживания клеток, что и опосредует онкосупрессорную активность PTEN (Chen Z. et al., 2005; Chen C. et al., 2018; Jung et al., 2019). Установлено, что мутации, приводящие к потере (снижению) экспрессии PTEN и соответственно к конститутивной гиперактивации сигнального пути PI3K/AKT, способствуют онкогенезу и часто встречаются при различных видах рака (Li et al., 1997; Alimonti et al., 2010). Так, снижение экспрессии PTEN в результате мутаций обнаруживается в более чем половине случаев эндометриальных карцином (Kappes et al., 2001; Steelman et al., 2011).

Наряду с данными о последствиях сниженного уровня PTEN в прогрессии рака появляется все больше свидетельств того, что потеря экспрессии PTEN может приводить к преждевременному клеточному старению (Kim et al., 2007; Alimonti et al., 2010; Jung et al., 2019). Такой тип старения был выделен в отдельную форму и получил название клеточного старения, индуцированного потерей PTEN (PICS) (Chen et al., 2005; Alimonti et al., 2010). Считается, что PICS реализуется через р53-зависимый молекулярный механизм, но может возникать в клетках в отсутствие повреждений ДНК, что отличает эту форму старения от его классических форм (Alimonti et al., 2010). Сегодня индукцию старения в результате потери экспрессии PTEN рассматривают как один из важнейших противораковых механизмов, реализующихся на самых ранних этапах формирования опухоли (Bousset, Gil, 2022).

Как сказано ранее, мутации, приводящие к потере экспрессии PTEN, играют важную роль в патогенезе эндометриальных карцином, однако практически не встречаются в случаях эндометриальных сарком (рака стромального компартмента эндометрия) (Kappes et al., 2001; Lancaster et al., 2001; Steelman et al., 2011). Кроме того, согласно нашим предыдущим данным, преимущественным ответом эндометриальных стромальных клеток (эСК), являющихся основным структурным компонентом стромы эндометрия, на различные стрессы и экспрессию онкогена HRASG12V является индукция старения (Borodkina et al., 2014; Toropov et al., 2023). Совместно эти наблюдения позволяют предположить, что потеря экспрессии PTEN может приводить к запуску преждевременного старения в эСК и препятствовать онкогенезу, что, в свою очередь, может обусловливать отсутствие связи между прогрессией эндометриальных сарком и мутациями в гене PTEN (Lancaster et al., 2001; Steelman et al., 2011). Таким образом, в рамках нашей работы мы исследовали возможность индукции преждевременного старения эСК в результате нокаута гена PTEN.

Материал и методика

Культивирование и обработка клеток. В нашей работе использовали эСК человека (линия 2804), полученные и охарактеризованные сотрудниками Института цитологии ранее (Земелько и др., 2011). ЭСК культивировали в питательной среде DMEM/F12 (Gibco, США), содержащей 10% эмбриональной сыворотки (HyClone, США), 1% раствора пенициллина и стрептомицина (Gibco, США) и 1% глутамакса (Gibco, США), в атмосфере 5% СО2 при 37 °С. Использовали эСК на ранних пассажах (с 6-го по 9-й). В экспериментах с использованием ингибитора киназы AKT полную ростовую среду эСК дополняли веществом LY294002 (LY) в концентрации 5, 10 или 20 мкМ (Sigma, США). Ингибитор LY добавляли через 10 сут после трансдукции эСК; схема обработки описана нами ранее (Грюкова и др., 2017).

Для продукции рекомбинантных лентивирусных частиц использовали клетки HEK293T. Их культивировали на среде DMEM (“Биолот”, Россия) с 10% эмбриональной сыворотки (HyClone, США) в атмосфере 5% СО2 при 37 °С.

Для наработки плазмид использовали бактерии Escherichia coli штамма Stbl3. Бактерии культивировали при 37 °С в питательной среде 2-YT следующего состава: 1.6% триптона (Amresco, США), 1% дрожжевого экстракта (Amresco, США), 0.5% NaCl при pH 7.0; для подготовки агаризованных чашек Петри питательную среду дополняли 2.5%-ным агаром (Amresco, США).

Все клеточные линии были получены из коллекции клеточных культур Института цитологии РАН. Все клетки рутинно проверяли на протяжении исследования на заражение микоплазмой при помощи ПЦР.

Разработка и клонирование генетически кодируемой системы для CRISPR/Cas9-опосредованного нокаута PTEN. 1. Дизайн последовательностей гидРНК. Последовательности гидРНК были разработаны при помощи веб-приложений CCTop-CRISPR/Cas9 и CRISPR-ERA в соответствии с общепринятыми рекомендациями, а именно: выбором кандидатных вариантов гидРНК, наиболее эффективно отжигающихся на целевую последовательность; выбором кандидатных вариантов гидРНК, обладающих минимальными нецелевыми эффектами (off-target активность); проектированием последовательностей гидРНК из 20 нуклеотидов соответственно структуре 5′-GN18G-3′ при PAM-мотиве NGG. Последовательности гидРНК подбирали к региону первого конститутивного экзона гена PTEN. Всего было подобрано три последовательности гидРНК. Последовательности олигонуклеотидов для клонирования гидРНК кодирующих фрагментов приведены в табл. 1. Синтез олигонуклеотидов был осуществлен в компании “Евроген” (Россия). В качестве контроля был использован исходный лентивектор, несущий несмысловую гидРНК.

 

Таблица 1. Олигонуклеотидные последовательности гидРНК

№ гидРНК

Олигонуклеотидная последовательноcть

Состав последовательности

1

Прямая

caccgAAACAAAAGGAGATATCAAG

Обратная

aaacCTTGATATCTCCTTTTGTTTc

2

Прямая

caacgGCTAACGATCTCTTTGATGA

Обратная

aaacTCATCAAAGAGATCGTTAGCc

3

Прямая

caccgAGATCGTTAGCAGAAACAAAAGG

Обратная

caccgAGATCGTTAGCAGAAACAAAAGG

 

2. Молекулярное клонирование. Последовательности, кодирующие гидРНК, были клонированы в шаблонный лентивектор pCC_01-hU6-BsmBI-sgRNA(E+F)-barcode-EFS-Cas9-NLS-2A-Puro-WPRE (139086; Addgene, США; с любезного позволения Dr. Neville, Sanjana, США) (Legut et al., 2020). Стратегия клонирования последовательностей, кодирующих гидРНК, в лентивирусную конструкцию, заключалась в выполнении следующих операций: рестрикции лентивектора; сборки фрагментов ДНК, кодирующих последовательности гидРНК; вставки собранных фрагментов в разрезанный лентивектор посредством лигирования.

Реакционная смесь для рестрикции содержала 2 мкл раствора лентивектора (1 мкг/мкл), 3 мкл 10-кратного буферного раствора, 0.4 мкл раствора DDT (100 мМ; Fermentas, США), 21.6 мкл ddH2O (“Евроген”, Россия), и по 1.5 мкл растворов рестриктазы BsmB1 (Fermentas, США) и фосфатазы FastAP (Fermentas, США). Рестрикцию проводили при 37 °С в течение 1 ч. Полученные фрагменты ДНК очищали с помощью электрофореза в агарозном геле и последующей очистки из геля при помощи набора QIAquick Gel Extraction Kit (QIAGEN, Нидерланды) по протоколу производителя.

Сборку фрагментов ДНК, кодирующих последовательности гидРНК, осуществляли путем попарного отжига комплементарных олигонуклеотидов друг на друга и фосфорилирования их свободных липких концов. Реакции проводили в течение 30 мин при 37 °С с последующей инактивацией ферментов при 95 °С в течение 5 мин. Реакционные смеси готовили следующим образом: 1 мкл 100 мкМ прямого олигонуклеотида, 1 мкл 100 мкМ обратного олигонуклеотида, 1 мкл 10-кратного буфера T4 (Ligation Buffer; NEB, США), 0.5 мкл 10 ед/мкл полинуклеотидкиназы T4 PNK (NEB, США) и 6.5 мкл ddH2O.

Лигирование фрагментов шаблонного лентивектора и фрагментов, кодирующих последовательности гидРНК, производили непосредственно перед трансформацией бактерий при комнатной температуре в течение 10 мин. Реакционные смеси готовили следующим образом: 50 нг фрагмента BsmBI-разрезанного лентивектора, 1 мкл разведенных в 200 раз дуплексов олигонуклеотидов, 5 мкл 2-кратного буфера Quick Ligase Buffer (NEB, США), 1 мкл смеси лигаз Quick Ligase (NEB, США) и ddH2O (“Евроген”, Россия) до общего объема 10 мкл.

3. Амплификация лентивекторов в бактериях. Амплификацию лентивирусных конструкций проводили в бактериях E. coli штамма Stbl3. Трансформацию бактерий проводили классическим методом теплового шока, используя 5 мкл лигазных смесей. Для селекции трансформированных бактерий использовали ампициллин (“Биолот”, Россия) в рабочей концентрации 100 мкг/мл. Амплифицированные плазмидные конструкции выделяли из биомассы бактерий, наращенной классическим щелочным методом, с последующей очисткой стандартной фенол-хлороформной экстракцией. Чистоту и концентрацию препаратов плазмидных конструкций определяли спектрофотометрически при помощи Thermo Scientific NanoDrop 2000 (Thermo Scientific, США) и гель-электрофореза ДНК. В качестве маркера длин ДНК использовали молекулярную лестницу GeneRuler 1 kb DNA Ladder (Thermo Scientific, США). Для визуализации плазмидных конструкций агарозные гели окрашивали 0.5 мкг/мл бромистого этидия в трис-ацетатном буфере и далее анализировали при помощи гель-документирующией системы Chemidock Touch BioRad (BioRad, США).

Лентивирусная трансдукция эСК. Доставку генетически-кодируемой системы для нокаута PTEN в эСК производили путем лентивирусной трансдукции при нагрузке 20 частиц на клетку в присутствии 20 мкг/мл протаминсульфата (Sigma-Aldrich, США). Сборку лентивирусных частиц проводили посредством ко-трансфекции продуцирующей линии клеток HEK293T пакующим вектором psPAX2 (12260; Addgene, США), оболочечным вектором pMD2.G (12259; Addgene, США: оба вектора – с любезного позволения Dr. Didier, Trono, Италия) и смысловым вектором. Все операции культивирования и ко-трансфекции HEK293T, а также сборку, фильтрацию концентрирование, подготовку стоков и флуоресцентного титрования вирусов проводили в соответствии с подробным описанием в нашей предыдущей работе (Deryabin et al., 2019). Селекцию клеток проводили спустя 5 сут после трансдукции добавлением в культуральную среду 2 мкг/мл пуромицина (Invitrogen, США) на 5 сут. Таким образом, анализ влияния нокаута PTEN на свойства эСК проводили через 10 сут после трансдукции.

Проточная цитофлуориметрия. Прикрепленные клетки промывали раствором PBS (“Биолот”, Россия), снимали смесью трипсин-Версена (0.05%; “Биолот”, Россия) и ресуспендировали в PBS. Для анализа жизнеспособных клеток образцы окрашивали йодистым пропидием (PI; 50 мкг/мл) и анализировали на цитофлуориметре CytoFlex или CytoFLEX S (Backman Coulter, США). Данные собирали и обрабатывали с помощью программы CytExpert (versions 1.2; 2.0).

  1. Анализ пролиферативной активности, размера и автофлуоресценции клеток. Данные о количестве клеток собирали для жизнеспособных (PI-негативных) клеток. Изменение размера клеток оценивали по изменению прямого светорассеяния (FS) живых клеток. Накопление липофусцина оценивали по среднему значению его автофлуоресценции в зеленом канале (лазер 488 нм, фильтр 525/40 нм).
  2. Оценка уровня внутриклеточных активных форм кислорода (АФК), уровня митохондриальных АФК и митохондриального мембранного потенциала. Для детекции внутриклеточных АФК прикрепленные клетки промывали PBS и обрабатывали PBS с 5 мкМ цитоплазматического красителя диацетата 2′,7′-дихлордигидрофлуоресцеина (H2DCF-DA) (Invitrogen, США) в течение 20 мин в темноте при 37 °С. Для измерения уровня митохондриальных АФК прикрепленные клетки промывали PBS и окрашивали в PBS, содержащем 30 мкМ митохондриального красителя дигидрородамина 123 (DHR123) (Invitrogen, США) в течение 30 мин в темноте при 37 °С. Флуоресценцию окисленных продуктов дихлорофлуоресцеина (DCF) и родамина 123 (Rho123) соответственно фиксировали в зеленом канале (лазер 488 нм, фильтр 525/40 нм). Для измерения мембранного потенциала митохондрий прикрепленные клетки промывали PBS и инкубировали в PBS с 5 мкМ красителя JC-1 (Thermo Scientific, США) в течение 30 мин при 37 °С. Потенциал-зависимое накопление аггрегированного красителя в митохондриях регистрировали по рациометрическому показателю смещения эмиссии мономерной формы красителя в зеленой области спектра в пользу эмиссии агрегатов JC-1 в красной области (лазер 488 нм, фильтры 525/40 и 585/42 нм).

Оценка активности β-галактозидазы (SA-β-Gal). Активность SA-β-Gal, ассоциированную со старением, выявляли с помощью фирменного набора Senescence-galactosidase staining kit (Cell Signaling, США). Все процедуры осуществляли в соответствии с инструкцией фирмы-производителя. Клетки на чашках промывали PBS, фиксировали в течение 10 мин при комнатной температуре 1-кратным фиксирующим раствором, после чего дважды промывали PBS и окрашивали в β-галактозидазном растворе при 37 °С в течение ночи.

Об активности SA-β-Gal судили по появлению синих гранул в цитоплазме клеток. Количественный анализ изображений проводили с использованием среды MatLab, согласно алгоритму, описанному в методологической статье (Shlush et al., 2011). Для каждой экспериментальной точки вручную отмечали и анализировали минимум 100 случайно выбранных клеток.

Электрофорез и иммуноблотинг. Пробоподготовка, электрофорез и иммуноблоттинг проводили в соответствии с процедурой, подробно описанной в нашей предыдущей работе (Deryabin et al., 2019). Для специфического выявления белков использовали антитела против глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназы GAPDH (clone 14C10, #2118, Cell Signaling, США); pр53 (Ser15) (клон 16G8) (#9286, Cell Signaling, США); p21Waf1/Cip1 (клон 12D1) (#2947, Cell Signaling, США); pRb (Ser807/811) (#8516, Cell Signaling, США); pAKT (Thr308) (#4056, Cell Signaling, США); pAKT (Ser473) (#4060, Cell Signaling, США). В качестве вторичных антител применяли козьи антитела, выработанные против иммуноглобулинов кролика или мыши. Антитела были приобретены в фирме Cell Signaling (США). В работе использовали неорганические соли производства фирмы Sigma (США).

Обратная транскрипция и ПЦР в реальном времени. Выделение РНК, обратную транскрипцию и ПЦР в реальном времени проводили в соответствии с процедурой, подробно описанной в нашей предыдущей работе (Toropov et al., 2023). Для проведения ПЦР в реальном времени использовали специфические олигонуклеотидные праймеры для PTEN: прямой 5’-TTGAAGACCATAACCCACCA-3’ и обратный 5’-CACATAGCGCCTCTGACTG-3’, температура отжига 58°C; в качестве референсного гена использовали GAPDH с праймерами: прямым 5’-GAGGTCAATGAAGGGGTCAT-3’ и обратным 5’-AGTCAACGGATTTGGTCGTA-3’, температура отжига 57°C. Все праймеры получены из фирмы “Евроген” (Россия).

Статистическая обработка данных. Анализ выполняли с использованием программных пакетов R-Studio (R-версия 4.2.0) и GraphPad Prism (версия 6.0). Данные представлены в виде средних значений и их стандартных отклонений (n = 3). При установлении достоверности различий между двумя группами использовали t-тест Уэлча, для множественных сравнений между группами применяли однофакторный дисперсионный анализ (ANOVA) с поправкой Тьюки.

Результаты

Создание линии эСК с нокаутом PTEN. Для подавления экспрессии гена PTEN в эСК мы воспользовались модифицированной версией системы CRISPR/Cas9, которая была разработана в 2020 г. (Legut et al., 2020). Основу этой версии составил классический лентивектор lentiCRISPR v2, несущий кодон-оптимизированный для человека Cas9 от Streptococcus pyogenes. Преимуществом модифицированной системы является наличие нуклеотидных замен в последовательности скаффолда для гидРНК, которые улучшают стабильность самого скаффолда и положительно влияют на его связывание с Cas9.

Три разработанные последовательности гидРНК, которые должны наводить Cas9 на область первого экзона гена PTEN и, таким образом, нарушать транскрипцию гена и последующее образование белкового продукта, были клонированы в шаблонный лентивектор. В качестве контроля был использован исходный лентивектор, несущий несмысловую гидРНК. Полученные в ходе молекулярного клонирования варианты лентивекторов использовали для получения вирусных частиц и последующей трансдукции эСК. Согласно результатам, представленным на рис. 1а, б, использование первой гидРНК приводило к наибольшему снижению уровня мРНК PTEN и практически полному отсутствию соответствующего белкового продукта. Таким образом, нам удалось получить линию эСК с нокаутом PTEN, которую мы использовали в дальнейших экспериментах.

 

Рис. 1. Подтверждение эффективности работы системы нокаута гена PTEN. К – контрольные эСК с несмысловой гидРНК; 1–3 – эСК, несущие систему нокаута с тремя различными гидРНК; а – экспрессия мРНК гена PTEN; значения экспрессии PTEN нормированы на уровень экспрессии референсного гена GAPDH. Представлены средние значения и их стандартные отклонения (n = 3, n – число повторов реакции); ** – отличия от контроля достоверны при – р < 0.01 по сравнению с контролем, тест ANOVA с поправкой по Тьюки; б – уровни экспрессии белка PTEN, выявленные с помощью специфических антител; справа указаны мол. массы; в качестве контроля нагрузки использовали GAPDH.

 

Анализ маркеров преждевременного старения в линии эСК с нокаутом PTEN. Получив линию эСК со сниженной экспрессией PTEN, мы далее проверили наше предположение о развитии преждевременного старения в модифицированных эСК. Одним из ключевых признаков клеточного старения является остановка пролиферации (Campisi et al., 1996; Huang et al., 2022). Действительно, эСК со сниженной экспрессией PTEN демонстрировали практически полное отсутствие пролиферативной активности (рис. 2а). На молекулярном уровне остановка пролиферации в стареющих клетках в большинстве случаев реализуется через сигнальный путь p53/p21Waf1/Cip1/Rb (Campisi et al., 1996; Huang et al., 2022). Подавление экспрессии PTEN в эСК ожидаемо приводило к фосфорилированию p53, повышению экспрессии p21Waf1/Cip1 и гипофосфорилированию Rb (рис. 2г).

 

Рис. 2. Снижение экспрессии PTEN приводит к запуску преждевременного старения в эСК. К – контрольные эСК с несмысловой гидРНК; а – кривые роста; б – средний размер клеток, определенный по прямому светорассеянию (СР); в – интенсивность автофлуоресценции (ИФ) клеток, отражающей накопление липофусциновых гранул; г – уровни фосфорилирования белков p53 (pp53) и Rb (pRb), а также экспрессии белка p21Waf1/Cip1 (p21), выявленные с помощью специфических антител; справа указаны молекулярные массы; в качестве контроля нагрузки использовали GAPDH; д, е – соответственно количественная оценка цитохимической окраски SA-β-Gal и микрофотографии; а–в – представлены средние значения и стандартные отклонения из трех повторов измерения; д – оценивали окраску 100 клеток; *** – отличия от контроля достоверны при р < 0.001 (t-тест Уэлча).

 

Помимо необратимого блока цикла клеточное старение характеризуется рядом других типичных признаков, включая гипертрофию, накопление поврежденных белков и других макромолекул, повышение активности SA-β-Gal и нарушения функционирования митохондрий (Campisi et al., 1996; Borodkina et al., 2014; Huang et al., 2022). Анализ размера клеток, проведенный при помощи проточной цитофлуориметрии, выявил стабильное увеличение размера эСК, нокаутных по PTEN, по сравнению с контрольными клетками (рис. 2б). Обнаружено также заметное повышение автофлуоресценции модифицированных клеток, что отражает накопление липофусциновых аггрегатов, состоящих из поврежденных макромолекул (рис. 2в). Кроме того, эСК с нокаутом по гену PTEN характеризовались существенным увеличением активности SA-β-Gal (рис. 2д, е). Наконец, с помощью набора флуоресцентных красителей в эСК с нокаутом PTEN был детектирован рост уровней внутриклеточных и митохондриальных АФК и одновременное снижение мембранного потенциала митохондрий (рис. 3а–в). Эти результаты свидетельствуют о нарушениях в работе митохондрий в эСК в условиях пониженной экспрессии PTEN.

 

Рис. 3. Изменения редокс-баланса и функционирования митохондрий в контрольных эСК с несмысловой гидРНК (К) и в эСК при нокауте гена PTEN; а – уровни внутриклеточных АФК, определенные по интенсивности флуоресценции (ИФ) красителя DCF; б – уровни митохондриальных АФК, установленные по ИФ красителя DHR123; в – изменение митохондриального мембранного потенциала, определенное по ИФ красителя JC-1. Представлены средние значения и их стандартные отклонения из трех повторов измерения; отличия от контроля достоверны при р < 0.001 (***) или р < 0.01 (**); t-тест Уэлча.

 

Суммируя данные, представленные в этом разделе, можно заключить, что снижение экспрессии PTEN приводит к запуску преждевременного старения в эСК.

Молекулярный механизм PICS в эСК. Согласно данным литературы, функциональная активность PTEN реализуется преимущественно за счет ингибирования сигнального пути PI3K/AKT (Chen et al., 2005; Chen et al., 2018; Jung et al., 2019). Логично предположить, что нокаут гена PTEN должен приводить к активации участников этого сигнального каскада. Было предсказуемо, что эСК, нокаутные по PTEN, характеризовались усилением фосфорилирования киназы AKT по обоим активационным сайтам (Ser308 и Ser473) (рис. 4а). Эти данные свидетельствуют в пользу вовлеченности сигнального каскада PI3K/AKT в реализацию программы старения в эСК в условиях сниженной экспрессии PTEN.

В большинстве случаев стабильность состояния клеточного старения поддерживается сразу несколькими дублирующими молекулярными механизмами. Зачастую подавление активности одного из сигнальных путей является недостаточным для преодоления старения (Грюкова и др., 2017). В связи с этим для подтверждения роли сигнального каскада PI3K/AKT в реализации PICS в эСК далее мы использовали специфический ингибитор киназы AKT (LY). Интересно, что подавление активности AKT в PTEN-нокаутных клетках приводило к снижению экспрессии p21Waf1/Cip1 и восстановлению фосфорилирования Rb (рис. 4а). Принимая во внимание эти результаты, а также учитывая ключевую роль сигнального пути p21Waf1/Cip1/Rb в установлении ареста клеточного цикла в стареющих клетках, можно было ожидать, что ингибирование AKT будет способствовать восстановлению пролиферации PTEN-нокаутных эСК. Действительно, PTEN-нокаутные эСК характеризовались заметным улучшением пролиферации в присутствии ингибитора LY (рис. 4б). Более того, добавление ингибитора позволило предотвратить увеличение размера, автофлуоресценции и активности SA-β-Gal (рис. 4в, г, рис. 5). Полученные результаты демонстрируют ключевую роль киназы AKT в инициации и прогрессии PICS в эСК.

 

Рис. 4. Активность сигнального пути PI3K/AKT в PTEN-регулируемой индукции старения эСК и его модуляция ингибитором LY в контрольных эСК с несмысловой гидРНК (К) и в эСК с нокаутом гена PTEN (Нок.). Клетки с нокаутом гена PTEN обрабатывали LY в концентрациях 5 мкМ (LY 5), 10 мкМ (LY 10) или 20 мкМ (LY 20) в течение 6 сут; а – уровни фосфорилирования AKT и Rb, а также и экспрессии белка p21Waf1/Cip1 (р21), выявленные с помощью специфических антител; справа указаны молекулярные массы; в качестве контроля нагрузки использовали GAPDH; б – кривые роста; в – средний размер клеток, определенный по прямому светорассеянию (СР); г – интенсивность автофлуоресценции (ИФ) клеток, отражающая накопление липофусциновых гранул. Представлены средние значения и их стандартные отклонения из трех повторов измерения; отличия от контроля достоверны при р < 0.001 (***) или р < 0.01(**), тест ANOVA с поправкой на множественные сравнения по Тьюки.

 

Рис. 5. Ингибирование AKT предотвращает повышение активности SA-β-Gal в эСК нокаутом гена PTEN. Показаны контрольные эСК с несмысловой гидРНК (К), эСК с нокаутом гена PTEN (Нок.) и эСК с нокаутом гена PTEN, обработанные 20 мкМ LY (Нок. + LY20); а, б – соответственно микрофотографии эСК и количественная оценка цитохимической окраски SA-β-Gal; 6 сут после добавления ингибитора. Представлены средние значения и их стандартные отклонения (оценивали окраску 100 клеток); отличия от контроля достоверны при р < 0.001 (***); тест ANOVA с поправкой на множественные сравнения по Тьюки.

 

Согласно полученным в нашей работе данным, можно заключить, что в эСК подавление экспрессии онкосупрессора PTEN приводит к запуску преждевременного старения через активацию AKT-зависимого сигнального пути.

Обсуждение

Хотя термин PICS впервые упоминался в литературе только в 2010 г., наблюдения о взаимосвязи сниженной экспрессии PTEN с клеточным старением появились значительно раньше. Так, в одной из ранних работ было установлено, что инактивация PTEN вызывает р53-зависимый арест цикла и старение в клетках рака простаты (Chen et al., 2005). Чуть позже появились данные о том, что стабильное подавление экспрессии PTEN приводит к повышению экспрессии р53 и аресту пролиферации в нормальных нетрансформированных фибробластах и эпителиальных клетках человека (Kim et al., 2007). Стоит отметить, что вплоть до 2010 г. считалось, что старение, развивающееся в ответ на подавление экспрессии PTEN, можно классифицировать как один из частных случаев онокоген-индуцированного старения. Однако в работе 2010 г. на мышиных эмбриональных фибробластах было экспериментально установлено, что старение в результате потери PTEN не сопровождается гиперрепликацией и повреждениями ДНК в отличие от онкоген-индуцированной формы старения, в соответствии с чем его стали классифицировать как отдельный независимый тип, получивший название PICS (Alimonti et al., 2010).

С того времени количество публикаций, освещающих феномен PICS и молекулярные механизмы его развития в различных типах клеток, значительно увеличилось. Так, установлено, что индукция клеточного старения в результате утраты экспрессии PTEN характерна для клеток аденокарциномы молочной железы MCF-7, мезенхимных клеток человека и клеток рака простаты (Alimonti et al., 2010; Duan et al., 2015; Parisotto et al., 2018a, 2018b; Jung et al., 2019). Одновременно с этим индукцию преждевременного старения в ответ инактивацию PTEN все же нельзя рассматривать как универсальную защитную реакцию, присущую всем клеточным типам. Например, нокаут PTEN в культуре нервных стволовых клеток приводит к их ускоренному росту, морфологическим изменениям, усилению миграционной активности и устойчивости к апоптозу, что свидетельствует о развитии неопластического потенциала (Duan et al., 2015). Более того, введение таких клеток в полосатое тело мозга мыши приводит к образованию внутричерепных опухолей (Duan et al., 2015).

Мы обнаружили, что эСК в ответ на потерю PTEN развивают фенотип старения со всеми характерными признаками, включая потерю пролиферации, увеличение размера, автофлуоресценции и активности SA-β-Gal, а также нарушения работы митохондрий. Аналогично другим клеточным типам, для которых показана индукция старения в ответ на подавление экспрессии PTEN, в случае эСК с нокаутом PTEN старение развивалось преимущественно через сигнальный путь PI3K/AKT (Alimonti et al., 2010; Duan et al., 2015; Parisotto et al., 2018a, 2018b; Jung et al., 2019).

Важно, что подавление активности этого молекулярного пути практически полностью предотвращало развитие преждевременного старения в эСК. В отличие от этих данных, в наших предыдущих исследованиях, посвященных изучению механизмов преждевременного старения эСК, индуцированного окислительным стрессом, ингибирование пути PI3K/AKT не приводило к восстановлению пролиферации клеток, а лишь предотвращало фенотипические проявления старения (Грюкова и др., 2017).

Выявленная разница свидетельствует об отличиях в сигнальной регуляции программ стресс-индуцированного старения и PICS в эСК, которая может заключаться в наличии или отсутствии повреждений ДНК. Действительно, в случае старения эСК, индуцированного окислительным стрессом, мы наблюдали персистентные фокусы повреждения ДНК и постоянную активность киназы ATM, что обусловливало конститутивную активацию сигнального пути p53/p21Waf1/Cip1/Rb и стабильность ареста клеточного цикла (Borodkina et al., 2014). В случае PICS, согласно данным литературы, не детектируются ни фокусы повреждения ДНК, ни повышенная активность ATM (Alimonti et al., 2010). Более того, нокдаун АТМ при помощи малой интерферирующей РНК не влияет на развитие PICS (Alimonti et al., 2010). Отсутствие конститутивного сигналинга от повреждений ДНК в случае PICS может обусловливать меньшую стабильность блока цикла и возможность его отменить.

Совершенно другие результаты описаны для линий эндометриальной карциномы с инактивированным PTEN – RL 95-2 и Ishikawa (St-Germain et al., 2004a, 2004b). Во-первых, в этих клеточных типах сниженная экспрессия PTEN и, как следствие, повышенная активность AKT не сказываются на их пролиферативной активности и не вызывают преждевременного старения. Более того, ингибирование активности AKT приводит к индукции апоптоза в этих клетках (St-Germain et al., 2004a, 2004b).

Существует несколько возможных объяснений того, как сниженная экспрессия PTEN может, с одной стороны, приводить к индукции преждевременного старения, а с другой стороны, способствовать неопластической трансформации клеток. Так, авторы одной из работ продемонстрировали, что инактивация PTEN in vitro и in vivo приводит к аресту клеточного цикла и старению (Chen et al., 2005). Однако в случае одновременного снижения экспрессии р53 авторы наблюдали трансформацию клеток и развитие высокоинвазивной летальной формы рака при трансплантации этих клеток животным. На основании этих результатов исследователи заключили, что для злокачественной трансформации PTEN-дефицитных клеток необходимо дополнительное подавление экспрессии опухолевого супрессора р53. Авторы другого изыскания нашли иное объяснение роли PTEN в индукции старения и канцерогенезе (Alimonti et al., 2010). Согласно их наблюдениям, полная потеря PTEN может приводить к запуску преждевременного старения в клетках, тогда как гаплонедостаточность этого гена будет способствовать их трансформации.

Наши результаты хорошо согласуются с этим предположением. Использование системы CRISPR/Cas9 для нокаута приводит к полной потере PTEN в эСК, стабильно экспрессирующих Cas9, и, как видно из наших результатов, такие клетки демонтируют все признаки клеточного старения.

Финансирование работы

Работа финансирована Российским научным фондом (проект 19-74-10038).

Соблюдение этических стандартов

В работе отсутствуют исследования человека или животных.

Конфликт интересов

Авторы заявляют, что у них нет конфликта интересов.

×

Sobre autores

P. Parfenova

Institute of Cytology RAS

Email: borodkina618@gmail.com

Группа механизмов клеточного старения

Rússia, St. Petersburg, 194064

P. Deryabin

Institute of Cytology RAS

Email: borodkina618@gmail.com

Группа механизмов клеточного старения

Rússia, St. Petersburg, 194064

D. Pozdnyakov

Institute of Cytology RAS

Email: borodkina618@gmail.com

Группа механизмов клеточного старения

Rússia, St. Petersburg, 194064

A. Borodkina

Institute of Cytology RAS

Autor responsável pela correspondência
Email: borodkina618@gmail.com

Группа механизмов клеточного старения

Rússia, St. Petersburg, 194064

Bibliografia

  1. Грюкова А.А., Шатрова А.Н., Дерябин П.И., Бородкина А.В., Князев Н.А., Никольский Н.Н., Бурова Е.Б. 2017. Модуляция фенотипических признаков старения стволовых эндометриальных клеток в условиях ингибирования mTOR и MAP-киназных сигнальных путей. Цитология. Т. 59. № 6. С. 410. (Grukova A.A., Shatrova A.N., Deryabin P.I., Borodkina A.V., Knyazev N.A., Nikolsky N.N., Burova E.B. 2017. Modulation of senescence phenotype of human endometrial stem cells under inhibition of mtor and map-kinase signaling pathways. Tsitologiia. V. 59. P. 410.)
  2. Земелько В.И., Гринчук Т.М., Домнина А.П., Арцыбашева И.В., Зенин В.В., Кирсанов А.А., Бичевая Н.К., Корсак В.С., Никольский Н.Н. 2011. Мультипотентные мезенхимные стволовые клетки десквамированного эндометрия. Выделение, характеристика и использование в качестве фидерного слоя для культивирования эмбриональных стволовых линий человека. Цитология. Т. 53. № 12. С. 919. (Zemelko V.I., Grinchuk T.M., Domnina A.P., Artzibasheva I.V., Zenin V.V., Kirsanov A.A., Bichevaia N.K., Korsak V.S., Nikolsky N.N. 2011. Multipotent mesenchymal stem cells of desquamated endometrium: Isolation, characterization, and application as a feeder layer for maintenance of human embryonic stem cells. Tsitologiia. V. 53. P. 919.)
  3. Alimonti A., Nardella C., Chen Z., Clohessy J.G., Carracedo A., Trotman L.C., Cheng K., Varmeh S., Kozma S.C., Thomas G., Rosivatz E., Woscholski R., Cognetti F., Scher H.I., Pandolfi P.P. 2010. A novel type of cellular senescence that can be enhanced in mouse models and human tumor xenografts to suppress prostate tumorigenesis. J. Clin. Invest. V. 120. P. 681.
  4. Borodkina A., Shatrova A., Abushik P., Nikolsky N., Burova E. 2014. Interaction between ROS dependent DNA damage, mitochondria and p38 MAPK underlies senescence of human adult stem cells. Aging. V. 6. P. 481.
  5. Bousset L., Gil J. 2022. Targeting senescence as an anticancer therapy. Mol. Oncol. V. 16. P. 3855.
  6. Campisi J., Dimri G., Hara E. 1996. Handbook of the biology of aging. N.-Y., USA: Academic Press.
  7. Chen C.-Y., Chen J., He L., Stiles B.L. 2018. PTEN: tumor suppressor and metabolic regulator. Front. Endocrino. V. 9. P. 338.
  8. Chen Z., Trotman L.C., Shaffer D., Lin H.-K., Dotan Z.A., Niki M., Koutcher J.A., Scher H.I., Ludwig T., Gerald W., Cordon-Cardo C., Pandolfi P.P. 2005. Crucial role of p53-dependent cellular senescence in suppression of PTEN-deficient tumorigenesis. Nature. V. 436. P. 725.
  9. Deryabin P., Griukova A., Shatrova A., Petukhov A., Nikolsky N., Borodkina A. 2019. Optimization of lentiviral transduction parameters and its application for CRISPR-based secretome modification of human endometrial mesenchymal stem cells. Cell Cycle. V. 18. P. 742.
  10. Duan S., Yuan G., Liu X., Ren R., Li J., Zhang W., Wu J., Xu X., Fu L., Li Y., Yang J., Zhang W., Bai R., Yi F., Suzuki K., et al., 2015. PTEN deficiency reprogrammes human neural stem cells towards a glioblastoma stem cell-like phenotype. Nature Commun. V. 6. P. 10068.
  11. Huang W., Hickson L.J., Eirin A., Kirkland J.L., Lerman L.O. 2022. Cellular senescence: the good, the bad and the unknown. Nat. Rev. Nephrol. V. 18. P. 611.
  12. Jung S.H., Hwang H.J., Kang D., Park H.A., Lee H.C., Jeong D., Lee K., Park H.J., Ko Y.G., Lee J.S. 2019. mTOR kinase leads to PTEN-loss-induced cellular senescence by phosphorylating p53. Oncogene. V. 38. P. 1639.
  13. Kappes H., Goemann C., Bamberger A.M., Löning T., Milde-Langosch K. 2001. PTEN expression in breast and endometrial cancer: correlation with steroid hormone receptor status. Pathobiology. V. 69. P. 136.
  14. Kim J.S., Lee C., Bonifant C.L., Ressom H., Waldman T. 2007. Activation of p53-dependent growth suppression in human cells by mutations in PTEN or PIK3CA. Mol. Cell Biol. V. 27. P. 662.
  15. Lancaster J.M., Risinger J.I., Carney M.E., Barrett J.C., Berchuck A. 2001. Mutational analysis of the PTEN gene in human uterine sarcomas. Am. J. Obstet. Gynecol. V. 184. P. 1051.
  16. Legut M., Daniloski Z., Xue X., McKenzie D., Guo X., Wessels H.-H., Sanjana N.E. 2020. High-Throughput Screens of PAM-Flexible Cas9 Variants for Gene Knockout and Transcriptional Modulation. Cell reports. V. 30. P. 2859.
  17. Li J., Yen C., Liaw D., Podsypanina K., Bose S., Wang S.I., Puc J., Miliaresis C., Rodgers L., McCombie R., Bigner S.H., Giovanella B.C., Ittmann M., Tycko B., Hibshoosh H., Wigler M.H., Parsons R. 1997. PTEN, a putative protein tyrosine phosphatase gene mutated in human brain, breast, and prostate cancer. Science. V. 275. P. 1943.
  18. Parisotto M., Grelet E., El Bizri R., Metzger D. 2018a. Senescence controls prostatic neoplasia driven by PTEN loss. Mol. Cell Oncol. V. 6. P. 1511205.
  19. Parisotto M., Grelet E., El Bizri R., Dai Y., Terzic J., Eckert D., Gargowitsch L., Bornert J.-M., Metzger D. 2018b. PTEN deletion in luminal cells of mature prostate induces replication stress and senescence in vivo. J. Exper. Med. V. 215. P. 1749.
  20. Shlush L., Itzkovitz S., Cohen A., Rutenberg A., Berkovitz R., Yehezkel S., Shahar H., Selig S., Skorecki K. 2011. Quantitative digital in situ senescence-associated β-galactosidase assay. BMC Cell Biol. V. 12. P. 16.
  21. St-Germain M.E., Gagnon V., Mathieu I., Parent S., Asselin E. 2004a. Akt regulates COX-2 mRNA and protein expression in mutated-PTEN human endometrial cancer cells. Int. J. Oncol. V. 24. P. 1311.
  22. St-Germain M.E., Gagnon V., Parent S., Asselin E. 2004b. Regulation of COX-2 protein expression by Akt in endometrial cancer cells is mediated through NF-kappaB/IkappaB pathway. Mol. Cancer. V. 3. P. 7.
  23. Steelman L.S., Chappell W.H., Abrams S.L., Kempf R.C., Long J., Laidler P., Mijatovic S., Maksimovic-Ivanic D., Stivala F., Mazzarino M.C., Donia M., Fagone P., Malaponte G., Nicoletti F., Libra M., et al., 2011. Roles of the Raf/MEK/ERK and PI3K/PTEN/Akt/mTOR pathways in controlling growth and sensitivity to therapy-implications for cancer and aging. Aging (Albany NY). V. 3. P. 192.
  24. Toropov A.L., Deryabin P.I., Shatrova A.N., Borodkina A.V. 2023. Oncogene-induced senescence is crucial antitumor defense mechanism of human endometrial stromal cells. Int. J. Mol. Sci. V. 24. P. 14089.

Arquivos suplementares

Arquivos suplementares
Ação
1. JATS XML
Baixar
2. Fig. 1. Confirmation of the effectiveness of the PTEN gene knockout system. K – control eSCs with nonsense guideRNA; 1–3 – eSCs carrying a knockout system with three different guideRNAs; a – PTEN gene mRNA expression; PTEN expression values are normalized to the expression level of the reference gene GAPDH. The average values and their standard deviations are presented (n = 3, n is the number of reaction repetitions); ** – differences from control are significant at – p < 0.01 compared to control, ANOVA test with Tukey’s correction; b – PTEN protein expression levels detected using specific antibodies; on the right are the piers. masses; GAPDH was used as a loading control.

Baixar (115KB)
Metadados
3. Fig. 2. A decrease in PTEN expression leads to the initiation of premature aging in eSCs. K – control eSCs with nonsense guideRNA; a – growth curves; b – average cell size determined by direct light scattering (SL); c – intensity of autofluorescence (AF) of cells, reflecting the accumulation of lipofuscin granules; d – levels of phosphorylation of proteins p53 (pp53) and Rb (pRb), as well as protein expression p21Waf1/Cip1 (p21), detected using specific antibodies; molecular weights are indicated on the right; GAPDH was used as a loading control; e, f – respectively, quantitative assessment of cytochemical staining SA-β-Gal and micrographs; a–c – mean values and standard deviations from three repeat measurements are presented; e – coloring of 100 cells was assessed; *** – differences from control are significant at p < 0.001 (Welch’s t-test).

Baixar (312KB)
Metadados
4. Fig. 3. Changes in redox balance and mitochondrial functioning in control eSCs with nonsense guideRNA (K) and in eSCs with PTEN gene knockout; a – levels of intracellular ROS determined by fluorescence intensity (FI) of the DCF dye; b – levels of mitochondrial ROS determined by the IF of the DHR123 dye; c – change in mitochondrial membrane potential determined by the IF of the JC-1 dye. Mean values and their standard deviations from triplicate measurements are presented; differences from control are significant at p < 0.001 (***) or p < 0.01 (**); Welch's t-test.

Baixar (131KB)
Metadados
5. Fig. 4. Activity of the PI3K/AKT signaling pathway in PTEN-regulated induction of eSC aging and its modulation by the LY inhibitor in control eSCs with nonsense guideRNA (K) and in eSCs with PTEN gene knockout (Nok.). Cells with a knockout of the PTEN gene were treated with LY at concentrations of 5 μM (LY 5), 10 μM (LY 10), or 20 μM (LY 20) for 6 days; a – levels of phosphorylation of AKT and Rb, as well as expression of the p21Waf1/Cip1 (p21) protein, detected using specific antibodies; molecular weights are indicated on the right; GAPDH was used as a loading control; b – growth curves; c – average cell size determined by direct light scattering (SL); d – autofluorescence intensity (AF) of cells, reflecting the accumulation of lipofuscin granules. Mean values and their standard deviations from triplicate measurements are presented; differences from the control are significant at p < 0.001 (***) or p < 0.01(**), ANOVA test corrected for multiple comparisons according to Tukey.

Baixar (424KB)
Metadados
6. Fig. 5. Inhibition of AKT prevents the increase in SA-β-Gal activity in eSCs by knockout of the PTEN gene. Shown are control eSCs with nonsense guideRNA (K), eSCs with PTEN gene knockout (Nok.), and eSCs with PTEN gene knockout treated with 20 μM LY (Nok. + LY20); a, b – microphotographs of eSCs and quantitative assessment of cytochemical staining SA-β-Gal, respectively; 6 days after adding the inhibitor. The average values and their standard deviations are presented (the color of 100 cells was assessed); differences from control are significant at p < 0.001 (***); ANOVA test with Tukey's correction for multiple comparisons.

Baixar (152KB)
Metadados

Declaração de direitos autorais © Russian Academy of Sciences, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».