Микробная деструкция изделий из полипропилена и поливинилхлорида в анаэробных условиях

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Важнейшее преимущество материалов из синтетических полимеров – устойчивость к биоразложению – является одновременно и причиной их накопления, и загрязнения окружающей среды. Тем не менее, некоторые пластики в аэробных условиях подвергаются медленной микробной деструкции, однако об анаэробном разложении пластиков практически ничего не известно. В рамках настоящей работы был исследован рост анаэробных умеренно термофильных (55°С) консорциумов в присутствии образцов изделий из полипропилена (ПП) и поливинилхлорида (ПВХ). Установлено, что в присутствии пластиков увеличивалось количество микробной биомассы по сравнению с контролем, образовывались продукты анаэробного разложения (СО2, Н2 и Н2S), а масса образцов уменьшалась по сравнению с контролем на 4.4% (ПП) и 6.5% (ПВХ). Бактериальные клетки адгезировались и формировали колонии и биопленки на поверхности пластика. Анализ состава микробных сообществ показал, что в них значительно увеличилась численность анаэробных гидролитиков рода Tepidimicrobium, потенциальных синтрофных бактерий рода Tepidanaerobacter и, в особенности, сульфатвосстанавливающих бактерий (Desulfohalotomaculum). Исследования, проведенные с помощью дифференциальной сканирующей калориметрии и инфракрасной Фурье-спектроскопии, показали, что уменьшение массы пластика происходит, в основном, за счет гидролиза присутствующих в изделиях добавок (пластификаторов), однако в случае ПВХ наблюдали также изменение структуры пластика. Обсуждается роль таких микробных сообществ в водной среде и глубинных слоях полигонов твердых бытовых отходов, где в анаэробных условиях и при повышенной температуре возможна трансформация отходов ПП и ПВХ.

Об авторах

Д. В. Малахова

Кафедра микробиологии биологического факультета МГУ им. М.В. Ломоносова

Email: tsavkelova@mail.ru
Россия, 119234, Москва

М. А. Егорова

Кафедра микробиологии биологического факультета МГУ им. М.В. Ломоносова

Email: tsavkelova@mail.ru
Россия, 119234, Москва

М. Р. Леонтьева

Кафедра микробиологии биологического факультета МГУ им. М.В. Ломоносова

Email: tsavkelova@mail.ru
Россия, 119234, Москва

А. Г. Ельченинов

Институт микробиологии им. С.Н. Виноградского, Федеральный исследовательский центр
“Фундаментальные основы биотехнологии” Российской академии наук

Email: tsavkelova@mail.ru
Россия, 119071, Москва

Т. В. Панова

Кафедра высокомолекулярных соединений химического факультета МГУ
им. М.В. Ломоносова

Email: tsavkelova@mail.ru
Россия, 119991, Москва

Ю. Д. Александров

Кафедра коллоидной химии химического факультета МГУ им. М.В. Ломоносова

Email: tsavkelova@mail.ru
Россия, 119991, Москва

Е. А. Цавкелова

Кафедра микробиологии биологического факультета МГУ им. М.В. Ломоносова

Автор, ответственный за переписку.
Email: tsavkelova@mail.ru
Россия, 119234, Москва

Список литературы

  1. Котова И.Б., Тактарова Ю.В., Цавкелова Е.А., Егорова М.А., Бубнов И.А., Малахова Д.В., Ширинкина Л.И., Соколова Т.Г., Бонч-Осмоловская, Е.А. Микробная деградация пластика и пути ее интенсификации // Микробиология. 2021. Т. 90. С. 627‒659.
  2. Kotova I.B., Taktarova Yu.V., Tsavkelova E.A., Egorova M.A., Bubnov I.A., Malakhova D.V., Shirinkina L.I., Sokolova T.G., Bonch-Osmolovskaya E.A. Microbial degradation of plastics and approaches to make it more efficient // Microbiology (Moscow). 2021. V. 90. P. 671‒701.
  3. Плакунов В.К., Ганнесен А.В., Мартьянов С.В., Журина М.В. Биокоррозия синтетических пластмасс: механизмы деградации и способы защиты // Микробиология. 2020. Т. 89. С. 631‒645.
  4. Plakunov V.K., Gannesen A.V., Mart’yanov S.V., Zhurina M.V. Biocorrosion of synthetic plastics: degradation mechanisms and methods of protection // Microbiology (Moscow). 2020. V. 89. P. 647‒659.
  5. Цавкелова Е.А., Егорова М.А., Петрова Е.В., Нетрусов А.И. Образование биогаза микробными сообществами при разложении целлюлозы и пищевых отходов // Прикл. биохимия и микробиология. 2012. Т. 48. № 4. С. 417‒424.
  6. Tsavkelova E.A., Egorova M.A., Petrova E.V., Netrusov A.I. Biogas production by microbial communities via decomposition of cellulose and food waste // Appl. Biochem. Microbiol. 2012. V. 48. P. 377‒384.
  7. Ali M.I., Ahmed S., Robson G., Javed I., Ali N., Atiq N., Hameed A. Isolation and molecular characterization of polyvinyl chloride (PVC) plastic degrading fungal isolates // J. Basic Microbiol. 2014. V. 54. P. 18–27.
  8. Anwar M.S., Kapri A., Chaudhry V., Mishra A., Ansari M.W., Souche Y., Nautiyal C.S., Zaidi M.G.H., Goel R. Response of indigenously developed bacterial consortia in progressive degradation of polyvinyl chloride // Protoplasma. 2016. V. 253. P. 1023–1032.
  9. Auta H.S., Emenike C.U., Jayanthi B., Fauziah S.H. Growth kinetics and biodeterioration of polypropylene microplastics by Bacillus sp. and Rhodococcus sp. isolated from mangrove sediment // Mar. Poll. Bull. 2018. V. 127. P. 15–21.
  10. Baran B. Resource (in)efficiency in the EU: a case of plastic waste // Ekonomia i Prawo. Economics and Law. 2022. V. 21. № 1. P. 45‒62.
  11. Callahan B.J., McMurdie P.J., Rosen M.J., Han A.W., Johnson A.J., Holmes S.P. DADA2: High-resolution sample inference from Illumina amplicon data // Nat. Methods. 2016. V. 13. P. 581‒583.
  12. Geyer R., Jambeck J.R., Law K.L. Production, use, and fate of all plastics ever made // Sci. Adv. 2017. V. 3. P. e1700782.
  13. Giacomucci L., Raddadi N., Soccio M., Lotti N., Fava F. Polyvinyl chloride biodegradation by Pseudomonas citronellolis and Bacillus flexus // New Biotechnol. 2019. V. 52. P. 35–41.
  14. Manzoor S., Bongcam-Rudloff E., Schnürer A., Müller B. First genome sequence of a syntrophic acetate-oxidizing bacterium, Tepidanaerobacter acetatoxydans strain Re1 // Genome Announc. 2013. V. 1. P. e00213-12.
  15. Matsuura N., Ohashi A., Tourlousse D.M., Sekiguchi Y. Draft genome sequence of the syntrophic lactate-degrading bacterium Tepidanaerobacter syntrophicus JLT // Genome Announc. 2016. V. 4. P. e01712-15.
  16. McMurdie P.J., Holmes S. Phyloseq: an R package for reproducible interactive analysis and graphics of microbiome census data // PLoS One. 2013. V. 8. P. e61217.
  17. Meckenstock R.U., Boll M., Mouttaki H., Koelschbach J.S., Tarouco P.C., Weyrauch P., Dong X., Himmelberg A.M. Anaerobic degradation of benzene and polycyclic aromatic hydrocarbons // Microb. Physiol. 2016. V. 26. P. 92‒118.
  18. Mihreteab M., Stubblefield B.A., Gilbert E.S. Microbial bioconversion of thermally depolymerized polypropylene by Yarrowia lipolytica for fatty acid production // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2019. V. 103. P. 7729‒7740.
  19. Muyzer G., Stams A. The ecology and biotechnology of sulphate-reducing bacteria // Nat. Rev. Microbiol. 2008. V. 6. P. 441‒454.
  20. Mohanan N., Montazer Z., Sharma P.V., Levin D.B. Microbial and enzymatic degradation of synthetic plastics // Front. Microbiol. 2020. V. 11. P. 580709.
  21. Niu L., Song L., Liu X., Dong X. Tepidimicrobium xylanilyticum sp. nov., an anaerobic xylanolytic bacterium, and emended description of the genus Tepidimicrobium // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2009. V. 59. P. 2698‒2701.
  22. Perevalova A.A., Kublanov I.V., Baslerov R., Zhang G., Bonch-Osmolovskaya E.A. Brockia lithotrophica gen. nov., sp. nov., an anaerobic thermophilic bacterium from a terrestrial hot spring // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2013. V. 63. P. 479‒483.
  23. Quast C., Pruesse E., Yilmaz P., Gerken J., Schweer T., Yarza P., Peplies J., Glöckner F.O. The SILVA ribosomal RNA gene database project: improved data processing and web-based tools // Nucl. Acids Res. 2013. V. 41. P. 590‒596.
  24. Rana A.K., Thakur M.K., Saini A.K., Mokhta S.K., Moradi O., Rydzkowski T., Alsanie W.F., Wang Q, Grammatikos S., Thakur V.K. Recent developments in microbial degradation of polypropylene: integrated approaches towards a sustainable environment // Sci. Total Environ. 2022. V. 826. P. 154056.
  25. Ru J., Huo Y., Yang Y. Microbial degradation and valorization of plastic wastes // Front. Microbiol. 2020. V. 11. P. 442.
  26. Sekiguchi Y., Imachi H., Susilorukmi A., Muramatsu M., Ohashi A., Harada H., Hanada S., Kamagata Y. Tepidanaerobacter syntrophicus gen. nov. sp. nov., an anaerobic, moderately thermophilic, syntrophic alcohol- and lactate-degrading bacterium isolated from thermophilic digested sludges // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2006. V. 56. P. 1621–1629.
  27. Skariyachan S., Patil A.A., Shankar A., Manjunath M., Bachappanavar N., Kiran S. Enhanced polymer degradation of polyethylene and polypropylene by novel thermophilic consortia of Brevibacillus sps. and Aneurinibacillus sp. screened from waste management landfills and sewage treatment plants // Polym. Degrad. Stab. 2018. V. 149. P. 52–68.
  28. Slobodkin A.I., Tourova T.P., Kostrikina N.A., Lysenko A.M., German K.E., Bonch-Osmolovskaya E.A., Birkeland N.K. Tepidimicrobium ferriphilum gen. nov., sp. nov., a novel moderately thermophilic, Fe(III)-reducing bacterium of the order Clostridiales // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2006. V. 56. P. 369‒372.
  29. Trüper H.G., Schlegel H.G. Sulphur metabolism in Thiorhodaceae I. Quantitative measurements on growing cells of Chromatium okenii // Antonie van Leeuwenhoek. 1964. V. 30. P. 225‒238.
  30. Tsavkelova E., Prokudina L., Egorova M., Leontieva M., Malakhova D., Netrusov A. The structure of the anaerobic thermophilic microbial community for the bioconversion of the cellulose-containing substrates into biogas // Process Biochem. 2018. V. 66. P. 183‒196.
  31. Vortsepneva E., Chevaldonné P., Klyukina A., Naduvaeva E., Todt C., Zhadan A., Tzetlin A., Kublanov I. Microbial associations of shallow-water Mediterranean marine cave Solenogastres (Mollusca) // Peer J. 2021. V. 9. e12655.
  32. Wang Q., Garrity G.M., Tiedje J.M., Cole J.R. Naïve Bayesian classifier for rapid assignment of rRNA sequences into the new bacterial taxonomy // Appl. Environ. Microbiol. 2007. V. 73. P. 5261‒5267.
  33. Watanabe M., Kojima H., Fukui M. Review of Desulfotomaculum species and proposal of the genera Desulfallas gen. nov., Desulfofundulus gen. nov., Desulfofarcimen gen. nov. and Desulfohalotomaculum gen. nov. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2018. V. 68. P. 2891‒2899.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2.

Скачать (65KB)
3.

4.

Скачать (75KB)

© Д.В. Малахова, М.А. Егорова, М.Р. Леонтьева, А.Г. Ельченинов, Т.В. Панова, Ю.Д. Александров, Е.А. Цавкелова, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах