First record of Entyloma guaraniticum (Entylomatales, Ustilaginomycotina) from Vietnam

Cover Page

Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription Access

Abstract

Entyloma guaraniticum was discovered on Bidens pilosa in the Ta Dung Nature Reserve in Vietnam in 2022. This record is new to Vietnam. The record is supported by morphological and molecular data. A description of the species and information on its distribution are provided.

About the authors

V. A. Dudka

Komarov Botanical Institute of the Russian Academy of Sciences

Email: vdudka@binran.ru
St. Petersburg, Russia

A. G. Fedosova

Komarov Botanical Institute of the Russian Academy of Sciences

Email: anna.fedosova@binran.ru
St. Petersburg, Russia

T. H. G. Pham

Joint Vietnam-Russia Tropical Science and Technology Research Centre

Email: giangvietnga@gmail.com
Hanoi, Vietnam

References

  1. Altschul S.F., Gish W., Miller W. et al. Basic local alignment search tool. J. Mol. Biol. 1990. V. 215 (3). P. 403–410. https://doi.org/10.1016/S0022-2836(05)80360-2
  2. Ballard R. Bidens pilosa complex (Asteraceae) in North and Central America. Amer. J. Bot. 1986. V. 73. P. 1452–1465. https://doi.org/10.1002/j.1537-2197.1986.tb10891
  3. Bauer R., Begerow D., Nagler A. et al. The Georgefischeriales: a phylogenetic hypothesis. Mycol. Res. 2001. V. 105 (4). P. 416–424. https://doi.org/10.1017/S0953756201003690
  4. Begerow D., Lutz M., Oberwinkler F. Implications of molecular characters for the phylogeny of the genus Entyloma. Mycol. Res. 2002. V. 106 (12). P. 1392–1399. https://doi.org/10.1017/S0953756202006962
  5. Capella-Gutiérrez S., Silla-Martinéz J.M., Gabaldón T. TrimAl: A tool for automated alignment trimming in large-scale phylogenetic analyses. Bioinformatics. 2009. V. 25 (15). P. 1972–1973. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btp348
  6. De Bary A. Protomyces microsporus und seine Verwandten. Bot. Zeitung. 1874. V. 32. P. 97–108.
  7. Denchev T.T., Denchev C.M., Kemler M. et al. Entyloma eranthidis sp. nov. on Eranthis longistipitata from Uzbekistan. 2021. Mycotaxon. V. 136 (2). P. 373–385. https://doi.org/10.5248/136.373
  8. Denchev T.T., Denchev C.M., Shivas R.G. Two new Entyloma species (Entylomatales) from USA. Mycobiota. 2013. V. 3. P. 35–39. https://doi.org/10.12664/mycobiota.2013.03.04
  9. Gardes M., Bruns T.D. ITS primers with enhanced specificity for basidiomycetes – application to the identification of mycorrhizae and rusts. Molec. Ecology. 1993. V. 2 (2). P. 113–118. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.1993.tb00005.x
  10. Guindon S., Dufayard J.F., Lefort V. et al. New algorithms and methods to estimate maximum-likelihood phylogenies: assessing the performance of PhyML 3.0. Systematic biology. 2010. V. 59 (3). P. 307–321. https://doi.org/10.1093/sysbio/syq010
  11. Katoh K., Rozewicki J., Yamada K.D. MAFFT online service: multiple sequence alignment, interactive sequence choice and visualization. Brief Bioinform. 2019. V. 20 (4). P. 1160–1166. https://doi.org/10.1093/bib/bbx108
  12. Kruse J., Piątek M., Lutz M. et al. Broad host range species in specialised pathogen groups should be treated with suspicion – a case study on Entyloma infecting Ranunculus. Persoonia. 2018. V. 41. P. 175–201. https://doi.org/10.3767/persoonia.2018.41.09
  13. Kruse J., Thines M. Entyloma lagoeciae: a new smut fungus occurring on the annual Apiaceae Lagoecia cuminoides, Nova Hedwigia. 2019. V. 108 (1–2). P. 173–184. https://doi.org/10.1127/nova_hedwigia/2018/0503
  14. Kumar S., Stecher G., Tamura K. MEGA7: molecular evolutionary genetics analysis version 7.0 for bigger datasets. Mol. Biol. Evol. 2016. V. 33 (7). P. 1870–1874. https://doi.org/10.1093/molbev/msw054
  15. Lanfear R., Calcott B., Ho S.Y. et al. Partitionfinder: combined selection of partitioning schemes and substitution models for phylogenetic analyses. Molecular biology and evolution. 2012. V. 29 (6). P. 1695–1701. https://doi.org/10.1093/molbev/mss020
  16. Lanfear R., Frandsen P.B., Wright A.M. et al. Finder 2: new methods for selecting partitioned models of evolution for molecular and morphological phylogenetic analyses. Mol. Biol. Evol. 2017. V. 34 (3). P. 772–773. https://doi.org/10.1093/molbev/msw260
  17. Lutz M., Piątek M. Phylogenetic placement, DNA barcoding, morphology and evidence for the spreading of Entyloma cosmi. Eur. J. Plant. Pathol. 2016. V. 145. P. 857–869. https://doi.org/10.1007/s10658-016-0874-1
  18. Patouillard N. Contributions à la flore mycologique du Tonkin. Journal de Botanique. 1890. V. 4 (3). P. 53–60.
  19. Patouillard N. Contributions а la flore mycologique du Tonkin (3’ serie). J. Bot.. 1897. V. 11 (22–23). P. 367–374.
  20. Piepenbring M. New and poorly known smut fungi in Cuba. Mycol. Res. 1999. V. 103 (4). P. 459–467. https://doi.org/10.1017/S0953756298007370
  21. Piximètre. La mesure de dimensions sur images. 2020. http://www.piximetre.fr
  22. Rambaut A., Drummond A.J., Xie D. et al. Posterior summarization in bayesian phylogenetics using Tracer 1.7. Systematic Biol. 2018. V. 67 (5). P. 901–904. https://doi.org/10.1093/sysbio/syy032
  23. Richter C., Yurkov A.M., Boekhout T. et al. Diversity of Tilletiopsis-like fungi in Exobasidiomycetes (Ustilaginomycotina) and description of six novel species. Front. Microbiol. 2019. V. 10. (online). https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.02544
  24. Rojas-Sandoval J. Bidens pilosa (blackjack). CABI Compendium. 9148. 2018. https://doi.org/10.1079/cabicompendium.9148
  25. Ronquist F., Teslenko M., van der Mark P. et al. MrBayes 3.2: efficient Bayesian phylogenetic inference and model choice across a large model space. Systematic Biol. 2012. V. 61 (3). P. 539–542. https://doi.org/10.1093/sysbio/sys029
  26. Rooney-Latham S., Lutz M., Blomquist C.L. et al. Entyloma helianthi: identification and characterization of the causal agent of sunflower white leaf smut. Mycologia. 2017. V. 109 (3). P. 520–528. https://doi.org/10.1080/00275514.2017.1362314
  27. Savchenko K.G., Carris L.M., Castlebury L.A. et al. Revision of Entyloma (Entylomatales, Exobasidiomycetes) on Eryngium. Mycologia. 2014. V. 106 (4). P. 797–810. https://doi.org/10.3852/13-317
  28. Savchenko K.G., Carris L.M., Castlebury L.A. et al. Entyloma scandicis, a new smut fungus on Scandix verna from Mediterranean forests of Israel. Mycotaxon. 2015. V. 130 (4). P. 1061–1071. https://doi.org/10.5248/130.1061
  29. Savchenko K.G., Carris L.M. Two new Entyloma (Entylomataceae, Basidiomycota) species on North American Sanicula. Phytotaxa. 2017. V. 327 (2). P. 191–195. http://dx.doi.org/10.11646/phytotaxa.327.2.8
  30. Savile D.B.O. A study of the species of Entyloma on North American Composites. Canad. J. Res. Sect. C, Bot. Sci. 1947. V. 25. P. 105–120.
  31. Shivas R.G., Vánky K., Vánky C. et al. An annotated check list of Ustilaginomycetes in Papua New Guinea. Australasian Plant Pathol. 2001. V. 30 (3). P. 231–237. https://doi.org/10.1071/AP01029
  32. Spegazzini C. Fungi Guaranitici. I. Anales de la Sociedad Cientí- fica Argentina. 1884. V. 17 (3). P. 119–134.
  33. Stamatakis A. RAxML–VI-HPC: maximum likelihood-based phylogenetic analyses with thousands of taxa and mixed models. Bioinformatics (Oxford, England). 2006. V. 22 (21). P. 2688–2690. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btl446
  34. Trịnh T.K., Bảo T.T.T. Large variety of Vietnamese mushrooms and their resource value. Science Report First National Conference Vietnam Nature Museum system. Ha Noi, 2011. P. 97–104.
  35. Trịnh T.K., Đang V.T., Hà M.T. Class Ustomycetes-charcoal bushings. In: list of plants of Vietnam: V. 1. Agriculture. National University of Hanoi. Resource and Environmental Center. Ha Noi. 2001, pp. 226–229.
  36. Vánky K. Taxonomical studies on Ustilaginales. XXIII. Myco- taxon. 2003. V. 85. P. 1–65.
  37. Vánky K., Lutz M. Entyloma majewskii sp. nov. (Entylomataceae) on Ranunculus ficaria from Iran. Polish Bot. J. 2010. V. 55 (2). P. 271–279.
  38. Vánky K. Smut fungi of the world. APS Press, St. Paul, 2012.
  39. Vánky K., Vánky C., Denchev C. Smut fungi in Africa – a check- list. Mycol. Balcanica. 2011. V. 8. P. 1–77.
  40. White T.J., Bruns T.D., Lee S.B. et al. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: M.A. Innis etc. (eds). PCR protocols: A guide to methods and applications, Academic Press, N.Y., 1990, pp. 315–322.
  41. Zambettakis C. Recherches sur les Ustilaginales d’Afrique. Bull. Soc. Mycol. France. 1970. V. 86. P. 305–692.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2025 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».