Коллоидные свойства дисперсии плодов софоры японской

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Лекарственное растительное сырье является важным источником биологически активных веществ (БАВ), которые применяются в фармацевтической, косметической, пищевой и других отраслях промышленности. Плоды софоры японской содержат комплекс БАВ, наибольшее количество из которых составляют флавоноиды. В работе представлены данные по изучению коллоидных свойств измельченных плодов софоры японской (далее софоры) с целью улучшения извлечения БАВ. Для достижения цели были поставлены следующие задачи: изучение ζ-потенциала частиц софоры при различном времени контакта частиц с экстрагентом и pH средой; определение изоэлектрической точки (ИЭТ) частиц софоры методом электрофореза; определение точки нулевого заряда (ТНЗ) частиц софоры при помощи потенциометрического титрования; изучение влияния pH среды, размера частиц софоры, температуры, присутствия поверхностно-активных веществ и ионов, природы экстрагента на процесс набухания софоры. Точка нулевого заряда pHтнз водной дисперсии софоры составляет 5.8, экстрагируемых флавоноидов – 5.2, что близко по значению с pHиэт. Набухание частиц софоры – ограниченное и сопровождается постепенным разрушением растительной клетки. Адсорбционное равновесие достигается в течение 30 мин. В щелочной области и в присутствии спирта набухание частиц софоры ухудшается, а при воздействии температуры и в присутствии ионов NaI набухание возрастает.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

П. А. Васильева

ФГБОУ ВО Санкт-Петербургский химико-фармацевтический университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: polina.vasileva@spcpu.ru
Россия, 197376, Санкт-Петербург, ул. проф. Попова, д. 14

И. Б. Дмитриева

ФГБОУ ВО Санкт-Петербургский химико-фармацевтический университет

Email: polina.vasileva@spcpu.ru
Россия, 197376, Санкт-Петербург, ул. проф. Попова, д. 14

Список литературы

  1. Liga S., Paul C., Péter F. Flavonoids: Overview of biosynthesis, biological activity, and current extraction techniques // Plants. 2023. V. 12. № 14. P. 2732. https://doi.org/10.3390/plants12142732
  2. Bazarnova Ju., Chernikova D., Sevastyanova A., Đurović S. Extraction of polyphenolic compounds from the Juglans regia L. pellicles of using ultrasound // Khimija Rastitel’nogo Syr’ja. 2023. № 1. P. 273–278. https://doi.org/10.14258/jcprm.20230111970
  3. Локарев А.В., Кузякова Л.М., Огай М.А., Глижова Т.Н., Ковтун Е.В., Нам Н.Л. Сравнительный анализ содержания флавоноидов в извлечении из комплексного лекарственного растительного сырья при различных методах экстракции // Современная наука и инновации. 2020. № 2. С. 158–165.
  4. Тверитинов А.И., Головин А.В., Скрыпник Л.Н. Определение оптимальных условий экстракции флавоноидов из листьев пижмы обыкновенной Tanacetum vulgare L. методом математического планирования многофакторного эксперимента // ХимБиоSeasons 2023: Сб. тезисов докладов Всероссийского форума молодых исследователей, Кемерово. 2023. С. 83.
  5. Аслонова И.Ж., Кароматов И.Д. Лечебные свойства растения софора японская // Биология и интегративная медицина. 2017. № 11. С. 179–190.
  6. Уютова Е.В., Шишканов Д.В., Курманова Е.Н. Оценка капилляропротекторных свойств софоры японской // Современные тенденции развития технологий здоровьесбережения: Сб. научных трудов Х Международной научно-практической конференции молодых ученых, Москва. 2022. С. 421–424. https://doi.org/10.52101/9785870191058_421
  7. Aly S.H., Elissawy A.M., Mahmoud A.M.A., El-Tokhy F.S., Mageed S.S.A., Almahli H., Al-Rashood S.T., Binjubair F.A., Hassab M.A.E., Eldehna W.M. et al. Synergistic effect of Sophora japonica and Glycyrrhiza glabra flavonoid-rich fractions on wound healing: In vivo and molecular docking studies // Molecules. 2023. V. 28. № 7. P. 2994. https://doi.org/10.3390/molecules28072994
  8. Choi M.-J., Kim K.-M., Cho E.-J., Jeong T.-B., Jung J.-Ch. A practical registration procedure of Korean health functional food ingredient: The registration of Sophora japonica L., fruit extract for excellent female menopausal efficacy // Food supplements and biomaterials for health. 2021. V. 1. № 1. P. 1–10. https://doi.org/10.52361/fsbh.2021.1.e1
  9. Васильева П.А., Нестерова Д.И., Чеботова П.А., Дмитриева И.Б. Изучение влияния физико-химических характеристик экстрагента на процесс извлечения флавоноидов из плодов софоры японской // Бутлеровские сообщения. 2022. Т. 71 № 8. С. 118–125. https://doi.org/10.37952/ROI-jbc-01/22-71-8-118
  10. Быков И.И., Компанцев Д.В., Привало И.М. Экстрагирование биологически активных веществ из Zingiber officinalе roscoe в технологии фитопрепаратов (обзор) // Вестник Смоленской государственной медицинской академии. 2017. Т. 16. № 2. С. 170–180.
  11. Адекенов С.М., Хабаров И.А., Искаков А. Оптимизация технологии экстракции корней Peganum harmala L. // Химия растительного сырья. 2020. № 3. С. 279–284. https://doi.org/10.14258/jcprm.2020037763
  12. Новикова А.Е., Скрыпник Л.Н. Оптимизация условий мицеллярно-ферментативной экстракции пектина из плодов боярышника (Crataegus monogyna Jacq.) // Техника и технология пищевых производств. 2021. Т. 51. № 4. С. 733–742. https://doi.org/10.21603/2074-9414-2021-4-733-742
  13. Макарова Н.В., Еремеева Н.Б. Сравнительное изучение влияния ультразвуковых воздействий на экстракцию антиоксидантных соединений ягод черники (Vaccinium myrtillus L.) // Химия растительного сырья. 2020. № 1. С. 167–177. https://doi.org/10.14258/jcprm.2020014425
  14. Liu X.-m., Liu Y., Shan C.-h., Yang X.-q., Zhang Q., Xu N., Xu L.-y., Song W. Effects of five extraction methods on total content, composition, and stability of flavonoids in jujube // Food Chemistry. 2022. V. 14. P. 100287. https://doi.org/10.1016/j.fochx.2022.100287
  15. Кастерова Е.А., Прокопьева Е.С., Мудрикова А.Е., Кравцова С.С. Сравнительное изучение содержания полифенольных соединений в растениях видов Cirsium esculentum, Cirsium serratuloides и Ancathia igniaria (Asteraceae) // Растительные ресурсы. 2022. Т. 58. № 3. С. 261–271. https://doi.org/10.31857/S0033994622030062
  16. Kazub V.T., Kosheleva M.K., Rudobashta S.P. Kinetics of grinding of vegetable raw materials during electric discharge extraction // ChemChemTech. 2021. V. 64. № 6. P. 76–82. https://doi.org/10.6060/ivkkt.20216406.6385
  17. Бойко Н.Н., Макаревич Н.А., Писарев Д.И., Жилякова Е.Т., Новиков О.О. Роль сорбционных явлений в распределении экстрактивных веществ между Glycyrrhizae radices и экстрагентом // Сорбционные и хроматографические процессы. 2018. Т. 18. № 4. C. 479–487. https://doi.org/10.17308/sorpchrom.2018.18/555
  18. Котлярова И.А., Степина И.В. Кинетика набухания древесины сосны, модифицированной аминборатами // Вестник Белгородского технологического университета им. В.Г. Шухова. 2018. № 3. С. 81–88.
  19. Меледина Т.В., Маньшин Д.В., Головинская О.В., Харба Р.А., Иванова В.А., Морозов А.А. Факторы, влияющие на поверхностный электрический заряд дрожжевых клеток Saccharomyces cerevisiae // Хранение и переработка сельхозсырья. 2020. № 2. С. 73–84. https://doi.org/10.36107/spfp.2020.246
  20. Чухно А.С., Дмитриева И.Б., Силаева Д.С., Сенина А.С., Кошевенко А.С., Назипова А.Р. Сорбция ионов Н+ и ОН- на хлорофилле, влияние рН на устойчивость водных дисперсий хлорофилла // Бутлеровские сообщения. 2013. Т. 34. № 5. С. 124–130.
  21. Ab Rahman Z., Zaidan M.W.A.M., Othman A.N. et al. Optimizing extraction of phenolics and flavonoids from Solanum ferox fruit // Natural Science. 2019. V. 11. № 4. P. 99–105. https://doi.org/10.4236/ns.2019.114011
  22. Апаева А.В., Ямансарова Э.Т., Куковинец О.С. Исследование экстракции флавоноидов из плодовых оболочек гречихи в различных условиях // Вестник Башкирского университета. 2015. С. 1223–1225.
  23. Феськова Е.В., Леонтьев В.Н., Игнатовец О.С., Адамцевич Н.Ю., Бесараб А.Ю. Условия экстракции и идентификации флавоноидов, стимулирующих регенерацию тканей // Труды БГТУ. 2019 C. 49–53.
  24. Алексеева Т.В., Полянский К.К., Климова Е.А., Калгина Ю.О. Влияние кислотности среды на характер равновесного набухания биополимеров пищевой композиции в воде и технологических средах // Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2020. № 2. С. 5–15.
  25. Ji F., Zhou W., Zhang Z., Zhang B. Effects of relative molecular weight distribution and isoelectric point on the swelling behavior of gelatin films // Front. Chem. 2022. V. 10. P. 857976. https://doi.org/10.3389/fchem.2022.857976
  26. Miao L., Zhang H., Yang L., Chen L., Xie Y., Xiao J. Chapter 4.8 – Flavonoids // Antioxidants Effects in Health. 2022. P. 353–374. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-819096-8.00048-3

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Зависимость ζ-потенциала от времени контакта частиц софоры и растворителя при рН (2.80; 3.90; 5.29).

Скачать (129KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Зависимость ζ-потенциала частиц софоры от pH среды.

Скачать (89KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Кривые потенциометрического титрования водной дисперсии софоры, экстракта и фонового раствора.

Скачать (146KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Зависимость степени набухания частиц плодов софоры японской при различных pH от времени.

Скачать (142KB)
Метаданные
6. Рис. 5. Зависимость степени набухания софоры от времени контакта частиц с экстрагентом при различных размерах частиц.

Скачать (139KB)
Метаданные
7. Рис. 6. Зависимость максимальной степени набухания плодов софоры японской от размера частиц.

Скачать (107KB)
Метаданные
8. Рис. 7. Зависимость содержания флавоноидов в экстракте от размера частиц плодов софоры японской.

Скачать (85KB)
Метаданные
9. Рис. 8. Зависимость степени набухания частиц софоры японской при воздействии ультразвука и без.

Скачать (87KB)
Метаданные
10. Рис. 9. Зависимость степени набухания частиц плодов софоры от температуры.

Скачать (99KB)
Метаданные
11. Рис. 10. Влияние на набухание частиц плодов софоры японской добавления поверхностно-активных веществ в экстрагент: 1 – вода, 2 – кокамидопропиленгликольдиамонийхлоридфосфат, 3 – натрий лаурил саркозинат, 4 – лаурет-2.

Скачать (86KB)
Метаданные
12. Рис. 11. Влияние на выход флавоноидов при экстракции из плодов софоры японской поверхностно-активных веществ: 1 — вода, 2 – кокамидопропиленгликольдиамонийхлоридфосфат, 3 – натрий лаурил саркозинат, 4 – лаурет-2.

Скачать (110KB)
Метаданные
13. Рис. 12. Зависимость степени набухания плодов софоры японской в растворе электролитов от времени.

Скачать (139KB)
Метаданные
14. Рис. 13. Зависимость степени набухания частиц софоры японской в воде и 50% этиловом спирте от времени.

Скачать (103KB)
Метаданные
15. Рис. 14. Содержание флавоноидов в экстракте, полученном методом перколяции (1) и при нагревании (2).

Скачать (142KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах