Коллоидные свойства дисперсии плодов софоры японской

Cover Page

Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription Access

Abstract

Лекарственное растительное сырье является важным источником биологически активных веществ (БАВ), которые применяются в фармацевтической, косметической, пищевой и других отраслях промышленности. Плоды софоры японской содержат комплекс БАВ, наибольшее количество из которых составляют флавоноиды. В работе представлены данные по изучению коллоидных свойств измельченных плодов софоры японской (далее софоры) с целью улучшения извлечения БАВ. Для достижения цели были поставлены следующие задачи: изучение ζ-потенциала частиц софоры при различном времени контакта частиц с экстрагентом и pH средой; определение изоэлектрической точки (ИЭТ) частиц софоры методом электрофореза; определение точки нулевого заряда (ТНЗ) частиц софоры при помощи потенциометрического титрования; изучение влияния pH среды, размера частиц софоры, температуры, присутствия поверхностно-активных веществ и ионов, природы экстрагента на процесс набухания софоры. Точка нулевого заряда pHтнз водной дисперсии софоры составляет 5.8, экстрагируемых флавоноидов – 5.2, что близко по значению с pHиэт. Набухание частиц софоры – ограниченное и сопровождается постепенным разрушением растительной клетки. Адсорбционное равновесие достигается в течение 30 мин. В щелочной области и в присутствии спирта набухание частиц софоры ухудшается, а при воздействии температуры и в присутствии ионов NaI набухание возрастает.

Full Text

Restricted Access

About the authors

П. А. Васильева

ФГБОУ ВО Санкт-Петербургский химико-фармацевтический университет

Author for correspondence.
Email: polina.vasileva@spcpu.ru
Russian Federation, 197376, Санкт-Петербург, ул. проф. Попова, д. 14

И. Б. Дмитриева

ФГБОУ ВО Санкт-Петербургский химико-фармацевтический университет

Email: polina.vasileva@spcpu.ru
Russian Federation, 197376, Санкт-Петербург, ул. проф. Попова, д. 14

References

  1. Liga S., Paul C., Péter F. Flavonoids: Overview of biosynthesis, biological activity, and current extraction techniques // Plants. 2023. V. 12. № 14. P. 2732. https://doi.org/10.3390/plants12142732
  2. Bazarnova Ju., Chernikova D., Sevastyanova A., Đurović S. Extraction of polyphenolic compounds from the Juglans regia L. pellicles of using ultrasound // Khimija Rastitel’nogo Syr’ja. 2023. № 1. P. 273–278. https://doi.org/10.14258/jcprm.20230111970
  3. Локарев А.В., Кузякова Л.М., Огай М.А., Глижова Т.Н., Ковтун Е.В., Нам Н.Л. Сравнительный анализ содержания флавоноидов в извлечении из комплексного лекарственного растительного сырья при различных методах экстракции // Современная наука и инновации. 2020. № 2. С. 158–165.
  4. Тверитинов А.И., Головин А.В., Скрыпник Л.Н. Определение оптимальных условий экстракции флавоноидов из листьев пижмы обыкновенной Tanacetum vulgare L. методом математического планирования многофакторного эксперимента // ХимБиоSeasons 2023: Сб. тезисов докладов Всероссийского форума молодых исследователей, Кемерово. 2023. С. 83.
  5. Аслонова И.Ж., Кароматов И.Д. Лечебные свойства растения софора японская // Биология и интегративная медицина. 2017. № 11. С. 179–190.
  6. Уютова Е.В., Шишканов Д.В., Курманова Е.Н. Оценка капилляропротекторных свойств софоры японской // Современные тенденции развития технологий здоровьесбережения: Сб. научных трудов Х Международной научно-практической конференции молодых ученых, Москва. 2022. С. 421–424. https://doi.org/10.52101/9785870191058_421
  7. Aly S.H., Elissawy A.M., Mahmoud A.M.A., El-Tokhy F.S., Mageed S.S.A., Almahli H., Al-Rashood S.T., Binjubair F.A., Hassab M.A.E., Eldehna W.M. et al. Synergistic effect of Sophora japonica and Glycyrrhiza glabra flavonoid-rich fractions on wound healing: In vivo and molecular docking studies // Molecules. 2023. V. 28. № 7. P. 2994. https://doi.org/10.3390/molecules28072994
  8. Choi M.-J., Kim K.-M., Cho E.-J., Jeong T.-B., Jung J.-Ch. A practical registration procedure of Korean health functional food ingredient: The registration of Sophora japonica L., fruit extract for excellent female menopausal efficacy // Food supplements and biomaterials for health. 2021. V. 1. № 1. P. 1–10. https://doi.org/10.52361/fsbh.2021.1.e1
  9. Васильева П.А., Нестерова Д.И., Чеботова П.А., Дмитриева И.Б. Изучение влияния физико-химических характеристик экстрагента на процесс извлечения флавоноидов из плодов софоры японской // Бутлеровские сообщения. 2022. Т. 71 № 8. С. 118–125. https://doi.org/10.37952/ROI-jbc-01/22-71-8-118
  10. Быков И.И., Компанцев Д.В., Привало И.М. Экстрагирование биологически активных веществ из Zingiber officinalе roscoe в технологии фитопрепаратов (обзор) // Вестник Смоленской государственной медицинской академии. 2017. Т. 16. № 2. С. 170–180.
  11. Адекенов С.М., Хабаров И.А., Искаков А. Оптимизация технологии экстракции корней Peganum harmala L. // Химия растительного сырья. 2020. № 3. С. 279–284. https://doi.org/10.14258/jcprm.2020037763
  12. Новикова А.Е., Скрыпник Л.Н. Оптимизация условий мицеллярно-ферментативной экстракции пектина из плодов боярышника (Crataegus monogyna Jacq.) // Техника и технология пищевых производств. 2021. Т. 51. № 4. С. 733–742. https://doi.org/10.21603/2074-9414-2021-4-733-742
  13. Макарова Н.В., Еремеева Н.Б. Сравнительное изучение влияния ультразвуковых воздействий на экстракцию антиоксидантных соединений ягод черники (Vaccinium myrtillus L.) // Химия растительного сырья. 2020. № 1. С. 167–177. https://doi.org/10.14258/jcprm.2020014425
  14. Liu X.-m., Liu Y., Shan C.-h., Yang X.-q., Zhang Q., Xu N., Xu L.-y., Song W. Effects of five extraction methods on total content, composition, and stability of flavonoids in jujube // Food Chemistry. 2022. V. 14. P. 100287. https://doi.org/10.1016/j.fochx.2022.100287
  15. Кастерова Е.А., Прокопьева Е.С., Мудрикова А.Е., Кравцова С.С. Сравнительное изучение содержания полифенольных соединений в растениях видов Cirsium esculentum, Cirsium serratuloides и Ancathia igniaria (Asteraceae) // Растительные ресурсы. 2022. Т. 58. № 3. С. 261–271. https://doi.org/10.31857/S0033994622030062
  16. Kazub V.T., Kosheleva M.K., Rudobashta S.P. Kinetics of grinding of vegetable raw materials during electric discharge extraction // ChemChemTech. 2021. V. 64. № 6. P. 76–82. https://doi.org/10.6060/ivkkt.20216406.6385
  17. Бойко Н.Н., Макаревич Н.А., Писарев Д.И., Жилякова Е.Т., Новиков О.О. Роль сорбционных явлений в распределении экстрактивных веществ между Glycyrrhizae radices и экстрагентом // Сорбционные и хроматографические процессы. 2018. Т. 18. № 4. C. 479–487. https://doi.org/10.17308/sorpchrom.2018.18/555
  18. Котлярова И.А., Степина И.В. Кинетика набухания древесины сосны, модифицированной аминборатами // Вестник Белгородского технологического университета им. В.Г. Шухова. 2018. № 3. С. 81–88.
  19. Меледина Т.В., Маньшин Д.В., Головинская О.В., Харба Р.А., Иванова В.А., Морозов А.А. Факторы, влияющие на поверхностный электрический заряд дрожжевых клеток Saccharomyces cerevisiae // Хранение и переработка сельхозсырья. 2020. № 2. С. 73–84. https://doi.org/10.36107/spfp.2020.246
  20. Чухно А.С., Дмитриева И.Б., Силаева Д.С., Сенина А.С., Кошевенко А.С., Назипова А.Р. Сорбция ионов Н+ и ОН- на хлорофилле, влияние рН на устойчивость водных дисперсий хлорофилла // Бутлеровские сообщения. 2013. Т. 34. № 5. С. 124–130.
  21. Ab Rahman Z., Zaidan M.W.A.M., Othman A.N. et al. Optimizing extraction of phenolics and flavonoids from Solanum ferox fruit // Natural Science. 2019. V. 11. № 4. P. 99–105. https://doi.org/10.4236/ns.2019.114011
  22. Апаева А.В., Ямансарова Э.Т., Куковинец О.С. Исследование экстракции флавоноидов из плодовых оболочек гречихи в различных условиях // Вестник Башкирского университета. 2015. С. 1223–1225.
  23. Феськова Е.В., Леонтьев В.Н., Игнатовец О.С., Адамцевич Н.Ю., Бесараб А.Ю. Условия экстракции и идентификации флавоноидов, стимулирующих регенерацию тканей // Труды БГТУ. 2019 C. 49–53.
  24. Алексеева Т.В., Полянский К.К., Климова Е.А., Калгина Ю.О. Влияние кислотности среды на характер равновесного набухания биополимеров пищевой композиции в воде и технологических средах // Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2020. № 2. С. 5–15.
  25. Ji F., Zhou W., Zhang Z., Zhang B. Effects of relative molecular weight distribution and isoelectric point on the swelling behavior of gelatin films // Front. Chem. 2022. V. 10. P. 857976. https://doi.org/10.3389/fchem.2022.857976
  26. Miao L., Zhang H., Yang L., Chen L., Xie Y., Xiao J. Chapter 4.8 – Flavonoids // Antioxidants Effects in Health. 2022. P. 353–374. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-819096-8.00048-3

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download
2. Fig. 1. Dependence of the ζ-potential on the contact time of the sophora particles and the solvent at pH (2.80; 3.90; 5.29).

Download (129KB)
Indexing metadata
3. Fig. 2. Dependence of the ζ-potential of sophora particles on the pH of the medium.

Download (89KB)
Indexing metadata
4. Fig. 3. Curves of potentiometric titration of the aqueous dispersion of sophora, extract and background solution.

Download (146KB)
Indexing metadata
5. Fig. 4. Dependence of the degree of swelling of Japanese sophora fruit particles at different pH on time.

Download (142KB)
Indexing metadata
6. Fig. 5. Dependence of the degree of swelling of the sophora on the time of contact of particles with the extractant at different particle sizes.

Download (139KB)
Indexing metadata
7. Fig. 6. Dependence of the maximum degree of swelling of Japanese sophora fruits on the particle size.

Download (107KB)
Indexing metadata
8. Fig. 7. Dependence of the flavonoid content in the extract on the particle size of the fruits of Sophora Japonica.

Download (85KB)
Indexing metadata
9. Fig. 8. Dependence of the degree of swelling of Japanese sophora particles under the influence of ultrasound and without.

Download (87KB)
Indexing metadata
10. Fig. 9. Dependence of the degree of swelling of sophora fruit particles on temperature.

Download (99KB)
Indexing metadata
11. Fig. 10. The effect on the swelling of Japanese sophora fruit particles of the addition of surfactants to the extractant: 1 - water, 2 – cocamidopropylene glycol diamonium chloride phosphate, 3 – sodium lauryl sarcosinate, 4 – laureth-2.

Download (86KB)
Indexing metadata
12. Fig. 11. Effect on the yield of flavonoids during extraction of surfactants from the fruits of Sophora japonica: 1 — water, 2 – cocamidopropylene glycol diamonium chloride phosphate, 3 – sodium lauryl sarcosinate, 4 – laureth-2.

Download (110KB)
Indexing metadata
13. Fig. 12. Dependence of the degree of swelling of Japanese sophora fruits in electrolyte solution on time.

Download (139KB)
Indexing metadata
14. Fig. 13. Dependence of the degree of swelling of Japanese sophora particles in water and 50% ethyl alcohol on time.

Download (103KB)
Indexing metadata
15. Fig. 14. The content of flavonoids in the extract obtained by percolation (1) and by heating (2).

Download (142KB)
Indexing metadata


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies