The genome of Staphylococcus epidermidis Isolated from Caseous Tuberculoma
- Authors: Sinkov V.V.1, Orlova E.A.1, Ogarkov O.B.1, Suzdalnitsky A.E.2,3, Kondratov I.G.1, Belkova N.L.1, Rychkova L.V.1
-
Affiliations:
- Scientific Сentre for Family Health and Human Reproduction Problems
- Irkutsk Tuberculosum-prevention hospital
- Irkutsk State Medical University
- Issue: Vol 60, No 10 (2024)
- Pages: 129-134
- Section: КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
- URL: https://journals.rcsi.science/0016-6758/article/view/273896
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0016675824100139
- EDN: https://elibrary.ru/wefylg
- ID: 273896
Cite item
Full Text
Abstract
A number of facultative-anaerobic lipophilic microorganisms, including representatives of Corynebacterium and Staphylococcaceae, inhabit the necrotic contents of tuberculomas. A strain of Staphylococcus epidermidis was isolated from caseum, fully genome sequenced, and gene-mapped. The coagulase-negative Staphylococcus belonged to the MLST 73 genotype and was resistant to two antituberculosis drugs. The strain phenotypically had urease, gelatinase and beta-hemolytic activities and possessed the corresponding genes. Similar to S. epidermidis O47, its genome consists of a single chromosome containing approximately 2.4 million base pairs, and oriC has the same orientation. A total of 2333 genes were identified, of which 2206 were coding genes. In contigs of the genome, sequences of plasmid replication genes were found: rep7a, rep13, rep5b and pSK1. Phylogenetic analysis indicates the closeness of the analyzed genome with a large group of European strains. Considering the biochemical and microbiological properties of the isolated strain, we hypothesize that staphylococci and other facultative-anaerobic satellite microorganisms of tuberculosis foci may play an important role in caseum liquefaction due to their own proteolytic activity and attraction of neutrophils to the focus of inflammation.
Full Text
Микробиота глубоких отделов легких сильно отличается от микробиоты верхних дыхательных путей гораздо более низкой биомассой и динамическим разнообразием [1]. Внутри туберкулезного очага происходит резкое снижение биоразнообразия сателлитной микробиоты [2]. Полученные нами метагеномные данные позволили разделить исследуемые сообщества микроорганизмов туберкулезных очагов на два типа: (i) – микобактериальная казеома (туберкулема), в которой 70% и более геномов соответствует микобактериям туберкулеза, и (ii) – полимикробное сообщество, в котором концентрация микобактерий туберкулеза варьирует от 0 до 10% [3]. При этом в одном из казеумов (некротический центр туберкулезного очага) было выявлено преобладание представителей семейства Staphylococcaceae [3]. Туберкулема является наиболее часто встречающейся патологической формой при туберкулезе легких и квалифицируется как объемное казеозно-некротическое образование, отграниченное от прилежащей ткани капсулой. Культивирование пяти казеозных образцов из туберкулем (отличных от использованных в настоящем исследовании) при пониженном парциальном давлении кислорода позволило нам выделить и идентифицировать по результатам полногеномного секвенирования липофильную Corynebacterium kefirresidentii [4]. Выделение из туберкулезных некротических очагов липофильных факультативно-анаэробных бактерий вместе с результатами метагеномных исследований [2–4] свидетельствует о вероятной роли нетуберкулезной сателлитной микрофлоры в процессах разжижения казеозного некроза. Это может иметь важное патофизиологическое значение и, вероятно, должно рассматриваться как неблагоприятный исход при туберкулезе легких. Мы предполагаем, что микробное сообщество туберкулезного очага формируется в результате изоляции иммунной системой пациента вместе с возбудителем туберкулеза [5] других бактерий из нижних дыхательных путей. При этом условия внутри туберкулезного очага создают возможности для развития преимущественно факультативно-анаэробной липофильной микробиоты.
Цель настоящего исследования – выделение и полногеномное секвенирование представителя Staphylococcaceae как одного из наиболее распространенных сателлитных обитателей казеозного некроза в очагах при туберкулезе легких.
Настоящее исследование одобрено Этическим комитетом ФГБНУ НЦ ПЗСРЧ. Все образцы операционного материала были получены во время операций по иссечению туберкулем.
Образцы помещались в 50-милилитровую стерильную пластиковую пробирку в условиях операционной и затем хранились при температуре –80 °C до момента исследования. После медленного оттаивания при 4 °C максимально доступное количество некротического материала из туберкулезного очага помещали в стерильные пробирки с 5-ю мл LB (Luria-BertaniMedium, BD Difco) под вазелиновым маслом. Через две недели 100 мкл осадка засевали газоном на чашку Петри с LB-агаром (BD Difco). Инкубацию проводили при 37 °C в течение трех дней в инкубационном контейнере BD GasPak EZ с AnaeroGasPac (Россия) до образования видимых колоний бактерий. Один штамм из образца 2206 дал стабильный и воспроизводимый рост на чашках Петри.
Штамм 2206-2 был первично идентифицирован с помощью секвенирования по Сэнгеру генов 16S рРНК и rpoB. Для амплификации и секвенирования по Сэнгеру гена rpoB рода Staphylococcus были использованы праймеры 1418st F: 5’-ATCTCAATTYATGGACCAAGC, 3241st R: 5’-GCTACGTGTTCCATACCTGT [6], а также универсальные бактериальные праймеры для гена 16S рРНК EUB27 L: 5’-AGAGTTTGATCATGGCTCAG и EUB518 R: 5’-ATTACCGCGGCTGCTGG [7]. Идентичность по генам rpoB и 16S рРНК с видами S. epidermidis образца 2206-2 и составила 100% (GenBank accession numbers: 2206-2 16S rRNA OP893659, rpoB OP893660).
Полногеномное секвенирование осуществлено на NGS-секвенаторе DNBSeq-G400 компанией “Геномед”. Первичные последовательности генома размещены в NCBI, проект PRJNA1074084. Сборку геномных прочтений в скаффолды проводили с помощью программы Spades v. 3.11.1. Аннотация контигов осуществлялась при помощи пакета программ PGAP. Идентификация генов, кодирующих 16S рРНК и 23S рРНК исследуемых штаммов в сборке, проводилась с помощью программного пакета SqueezeMeta. Гены факторов вирулентности определяли программой Vfanalyzer. Предсказание oriC в исследуемом геноме осуществлялось с использованием программы Ori-Finder 2. Для определения нуклеотидных последовательностей плазмидных генов репликации использовали программу PlasmidFinder.
Биоинформационный поиск потенциальной множественной устойчивости к антибиотикам осуществляли программами ResFinder 4.1 и CARD 3.2.9 (https://card.mcmaster.ca/analyze/rgi). Филогенетическое древо построено программой IQ-TREE с 1000 итераций. Биохимические свойства штамма изучали с использованием биохимических тест-систем «STAPHY test 16» (Erba Lachema s. r. o., Чехия). Липазную активность определяли посевом на сердечно-мозговой агар (HIMEDIA, Индия) с добавлением 1%-ного Tween-80 и 10 мМ CaCl2, как описано ранее [4]. Фенотипическая устойчивость к антибиотикам против микобактерий определялась с помощью тест-систем TREK DiagnosticSystems, Thermo Fisher Scientific (США) RAPMYCO для быстрорастущих и SLOWMYCO для медленнорастущих микобактерий по протоколам производителя.
Таблица 1. Сводная таблица биохимических и микробиологических свойств выделенного штамма
Параметры | 2206-2 | Параметр | 2206-2 |
STAPHYtest 16 (ErbaLachema) | Sensititre RAPMYCO | ||
VPT Acetoin | yes | Trimethoprim | Res |
H Urease URE | yes | Ciprofloxacin | Sus |
G Arginine ARG | no | Moxifloxacin | Sus |
F Ornithine ORN | no | Cefoxitin | Sus |
E β-GalactosidasebGA | no | Amikacin | Sus |
D β-Glucuronidase GLR | no | Doxycycline | Sus |
C Esculin ESL | no | Tigecycline | Sus |
B Nitrate NIT | no | Clarithromycin | Res |
A Phosphatase PHS | no | Linezolid | Sus |
H Galactose GAL | yes | Imipenem | Sus |
G Sacharose SUC | yes | Cefepime | Sus |
F Trehalose TRE | no | Amoxicillin | Sus |
E Mannitol MAN | no | Ceftriaxone | Sus |
D Xylose XYL | no | Minocycline | Sus |
C Maltose MLT | yes | Tobramycin | Sus |
B Mannose MNS | yes | Sensititre SLOWMYCO | |
A Lactose LAC | yes | Rifabutin | Sus |
Микробиологические тесты | Ethambutol | Res | |
Gelatinase | yes | Isoniazid | Res |
Coagulase | no | Rifampin | Sus |
Hemolysis | yes (β-type) | Streptomycin | Sus |
Lipase | no | Ethionamide | Sus |
Примечание. Sus – susceptibility (чувствительность), Res – resistance (устойчивость).
Штамм относится к коагулазонегативным стафилококкам (табл. 1). Обращает на себя внимание фенотипическая устойчивость к двум противотуберкулезным препаратам, а также уреазная, желатиназная и гемолитическая активности. По результатам секвенирования по Сэнгеру и полногеномного секвенирования, штамм относится к MLST 73 [8] – достаточно широко распространенный в мире генотип у людей, но не встречавшийся ранее в России. Так же как и у S. epidermidis O47 [9], его геном состоит из одной хромосомы, содержащей около 2.4 млн п. н., а oriC имеет ту же направленность. В общей сложности были идентифицированы 2333 гена, из которых 2206 являлись кодирующими. В контигах исследуемого генома обнаружены последовательности плазмидных репликационных генов: rep7a, rep13, rep5b и pSK1. Визуально при электрофорезе тотальной ДНК наблюдались три дискретные (отличные от геномной) полосы, которые могут быть плазмидами (данные не приводятся). Биоинформационный анализ, выполненный программами ResFinder 4.1 и CARD 3.2.9, предполагает множественную лекарственную устойчивость исследуемого штамма к широкому кругу антибиотиков, включая макролиды, за счет наличия генов fosB, msr(A), mph(C) иtet(K), с большой вероятностью кодируемых плазмидами.
Рис. 1. Maximum Parsimony (MP) – филогенетическое древо с бутстреп-анализом. Фоном выделен геном исследуемого штамма и кластер геномов S. epidermidis из Европы (BioProject PRJEB31403), к которому принадлежит выделенный в настоящем исследовании штамм.
На рис. 1 приведено MP филогенетическое древо 180 геномов S. epidermidis из NCBI и генома выделенного штамма. Затемнением выделен кластер геномов S. epidermidis из Европы (BioProject PRJEB31403). Таким образом, выделенный штамм S. epidermidis обладал весьма умеренной токсичностью и вирулентностью (табл. 2), продуцировал биофильм при культивировании на жидкой среде, был крайне устойчив к различным химическим воздействиям (данные не приводятся) и обладал множественной лекарственной устойчивостью, включая устойчивость к этамбутолу и изониазиду.
Таблица 2. Обнаруженные гены факторов вирулентности
Группа факторов вирулентности | Фактор вирулентности | Соответствующий ген [9] | 2206-2 рамка считывания |
Adherence | Autolysin | atl | orf01481 |
Cell wall associated fibronectin binding protein | ebh | orf00155 | |
Elastinbindingprotein | ebp | orf00118 | |
Ser-Asp rich fibrinogenbinding proteins | sdrF | orf01195 | |
sdrG | orf00844 | ||
sdrH | orf01386 | ||
Enzyme | Cysteineprotease | sspB | orf01711 |
Lipase | geh | orf01204 | |
lip | orf02238 | ||
Serine V8 protease | sspA | orf02100 | |
Thermonuclease | nuc | orf00275 | |
Toxin | Betahemolysin | hlb | orf01227 |
Мы предполагаем, что микробное сообщество легких в силу своего непостоянства и транзиторного характера попадает внутрь туберкулезного очага в известной мере случайно. Однако попадание липофильных факультативно-анаэробных бактерий может драматическим образом изменять организацию некротического содержимого туберкулезного очага. По всей видимости, благоприятное течение связано со “стерильной” кальцификацией некроза, в рамках которой никакая посторонняя микробиота внутри казеоза не размножается. Микобактерии туберкулеза в анаэробных условиях казеума остаются жизнеспособными, но теряют способность к размножению, при этом они демонстрируют чрезвычайную толерантность к противотуберкулезным препаратам [10].
Можно также предполагать, что в некротическом содержимом способна развиваться “патологическая сукцессия”, когда к бактериям с высокой активностью липаз [4] присоединяются другие бактерии, имеющие в том числе коллагеназную (желатиназа) активность, например стафилококки. Разрушение коллагеновой стромы легкого является необратимым процессом, ведущим в конечном итоге к образованию каверн. Мы ожидаем, что выделенные нами из казеума туберкулем липофильные факультативно-анаэробные микроорганизмы в дальнейшем могут послужить источником биологически активных веществ с адьювантными и/или иммуномодулирующими свойствами, пригодными для создания специфических иммунологических препаратов, в том числе для усиления эффекта субъединичных вакцин, разрабатываемых для профилактики туберкулеза. В пользу этой возможности говорит многолетняя и успешная история исследования грамположительной анаэробной палочки Corynebacterium parvum, которая принадлежит к нормальной микробиоте кожи [11].
Настоящая работа выполнена при участии группы геномных исследований и биоинформационного анализа ФГБНУ НЦ ПЗСРЧ с использованием оборудования ЦКП “Центр разработки прогрессивных персонализированных технологий здоровья” ФГБНУ НЦ ПЗСРЧ.
Исследование выполнено при финансовой поддержке гранта РНФ 23-15-00280.
Настоящая статья не содержит каких-либо исследований с использованием в качестве объекта людей и животных.
Авторы заявляют, что у них нет конфликта интересов.
About the authors
V. V. Sinkov
Scientific Сentre for Family Health and Human Reproduction Problems
Email: obogarkov@mail.ru
Russian Federation, Irkutsk, 664003
E. A. Orlova
Scientific Сentre for Family Health and Human Reproduction Problems
Email: obogarkov@mail.ru
Russian Federation, Irkutsk, 664003
O. B. Ogarkov
Scientific Сentre for Family Health and Human Reproduction Problems
Author for correspondence.
Email: obogarkov@mail.ru
Russian Federation, Irkutsk, 664003
A. E. Suzdalnitsky
Irkutsk Tuberculosum-prevention hospital; Irkutsk State Medical University
Email: obogarkov@mail.ru
Russian Federation, Irkutsk, 664039; Irkutsk, 664003
I. G. Kondratov
Scientific Сentre for Family Health and Human Reproduction Problems
Email: obogarkov@mail.ru
Russian Federation, Irkutsk, 664003
N. L. Belkova
Scientific Сentre for Family Health and Human Reproduction Problems
Email: obogarkov@mail.ru
Russian Federation, Irkutsk, 664003
L. V. Rychkova
Scientific Сentre for Family Health and Human Reproduction Problems
Email: obogarkov@mail.ru
Russian Federation, Irkutsk, 664003
References
- Natalini J.G., Singh S., Segal L.N. The dynamic lung microbiome in health and disease. // Nat. Rev. Microbiol. 2023. V. 21. P. 222–235. https://doi.org/10.1038/s41579-022-00821-x
- Орлова Е.А., Огарков О.Б., Кондратов И.Г. и др. Анализ разнообразия и функционального потенциала бактериальных сообществ туберкулезных очагов // Клеточ. техн. в биол. и медицине. 2024. № 1. С. 29–36. https://doi.org/10.47056/1814-3490-2024-1-29-36. Cell Technologies in Biology and Medicine 2024. № 1. С. 29–36.)
- Орлова Е.А., Огарков О.Б., Суздальницкий А.Е. и др. Анализ микробного разнообразия казеозного некроза туберкулезных очагов // Мол. генетика, микробиология и вирусология. 2021. Т. 39. № 3. С. 18–24. https://doi.org/10.17116/molgen20213903118 https://doi.org/10.3103/S0891416821030058)
- Огарков О.Б., Суздальницкий А.Е., Кондратов И.Г. и др. Выделение и полногеномное секвенирование липофильной анаэробной бактерии, представителя видового комплекса Corynebacterium tuberculostearicum, из туберкулезного очага //Acta Biomedica Scientifica. 2023. Т. 8. № 4. С. 12–19. http://dx.doi.org/10.29413/ABS.2023-8.4.2
- Russell D.G., Cardona P.J., Kim M.J., Allain S., Altare F. Foamy macrophages and the progression of the human tuberculosis granuloma // Nat. Immunol. 2009. V. 10. № 9. P. 943–948. https://doi.org/10.1038%2Fni.1781
- Mellmann A., Becker K., von Eiff C. et al. Sequencing and staphylococci identification // Emerg. Infect. Dis. 2006. V. 12 № 2 P. 333–336. https://doi.org/10.3201%2Feid1202.050962
- Sun D.L., Jiang X., Wu Q.L., Zhou N.Y. Intragenomic heterogeneity of 16S rRNA genes causes overestimation of prokaryotic diversity // Appl. Environ. Microbiol. 2013. V. 79. № 19. P. 5962–5969. https://doi.org/10.1128/aem.01282-13
- Jolley K.A., Bray J.E., Maiden M.C.J. Open-access bacterial population genomics: BIGSdb software, the PubMLST.org website and their applications // Wellcome Open Res. 2018. V. 24. № 3. P. 124. https://doi.org/10.12688/wellcomeopenres.14826.1
- Raue S., Fan S.H., Rosenstein R. et al. The Genome of Staphylococcus epidermidis O47 // Front. Microbiol. 2020. V. 25. № 11. https://doi.org/10.3389%2Ffmicb.2020.02061
- Sarathy J.P., Dartois V. Caseum: А niche for Mycobacterium tuberculosis drug-tolerant persisters // Clin. Microbiol. Rev. 2020. V. 33 № 3. https://doi.org/10.1128/cmr.00159-19
- Palmieri B., Vadalà M., Roncati L. et al. The long-standing history of Corynebacterium parvum, immunity, and viruses // J. Med. Virol. 2020 V. 92. № 11. P. 2429–2439. https://doi.org/10.1002%2Fjmv.26100
Supplementary files



