Клеточные механизмы возраст-зависимого ремоделирования костной ткани

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Структурная целостность скелета обеспечена постоянным ремоделированием костной ткани, которое основано на функционировании и взаимодействии клеток остеолитических (остеокласты) и формирующих костную ткань (остеобласты/остеоциты). Несмотря на общее понимание, что степень минерализации костного матрикса определяет хрупкость скелета, на настоящий момент недостаточно информации о его возрастных изменениях, связанных с функционированием данных клеток. Цель обзора — оценка существующих данных о возрастных изменениях кости, связанных с функциональным состоянием мезенхимных стволовых клеток, остеобластов/остеоцитов и остеокластов. Критерии включения: рандомизированные или нерандомизированные контролируемые исследования, изучающие возраст-зависимое изменение кости. Поиск исследований в области состояния костной ткани осуществляли в электронных научных базах Google Scholar, Medline, PubMed, Scopus, Web of Science и Cochrane Library по ключевым словам и их сочетаниям, используя программу AMSTAR 2. Отбор публикаций (из 680 включено 59) производили случайным образом, после чего независимо три автора давали оценку их методологического качества. Основной патогенетический механизм, участвующий в потере костной массы с возрастом, — снижение образования остеобластов с нарушением их способности к остеогенной дифференцировке. Остеоциты в пожилом возрасте подвергаются чрезмерному и продолжительному стрессу, который вызывает несбалансированную аутофагию и апоптоз, что ведёт к изменению их способности к депонированию и минерализации внеклеточного органического матрикса. С возрастом происходит ускоренный остеокластогенез, опосредованный остеобластами, что приводит к усилению экспрессии определённых рецепторов на уровне костных стромальных клеток и остеобластов. Приведённые литературные данные демонстрируют убедительные доказательства того, что усиление резорбции кости вследствие сложных метаболических процессов с возрастом происходит на фоне повышения количества и активности остеокластов, апоптоза остеобластов при снижении их метаболической активности, а также перераспределения остеогенной дифференцировки мезенхимных стволовых клеток в направлении адипоцитов. Изложенные в обзоре результаты могут быть использованы в качестве основы разработки диагностических критериев для выявления сенильного остеопороза и риска переломов.

Об авторах

Наталья Геннадьевна Плехова

Тихоокеанский государственный медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: pl_nat@hotmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8701-7213
SPIN-код: 2685-9578

д-р биол. наук, доц., зав., Междисциплинарный научно-исследовательский центр

Россия, г. Владивосток

Полина Александровна Криволуцкая

Тихоокеанский государственный медицинский университет

Email: vpo12345@mail.ru
ORCID iD: 0009-0002-5900-3938

асп., Междисциплинарный научно-исследовательский центр

Россия, г. Владивосток

Иван Николаевич Черненко

Тихоокеанский государственный медицинский университет

Email: chernencrj2010@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5261-810X
SPIN-код: 7872-1554

мл. науч. сотр., Междисциплинарный научно-исследовательский центр

Россия, г. Владивосток

Список литературы

  1. Гантман А.А., Горблянский Ю.Ю., Конторович Е.П., Понамарева О.П. Концепция здорового старения на работе // Медицинский вестник Юга России. 2022. Т. 13, № 4. С. 5–13. doi: 10.21886/2219-8075-2022-13-4-5-13
  2. Fang H., Deng Z., Liu J., et al. The mechanism of bone remodeling after bone aging // Clin Interv Aging. 2022. Vol. 17. P. 405–415. doi: 10.2147/CIA.S349604
  3. Fernandez-Gonzalez F.J., Canigral A., López-Caballo J.L., et al. Recombinant osteoprotegerin effects during orthodontic movement in a rat model // Eur J Orthodontics. 2016. Vol. 38, N. 4. P. 379–385. doi: 10.1093/ejo/cjv056
  4. Jahani B., Vaidya R., Jin J.M., et al. Assessment of bovine cortical bone fracture behavior using impact microindentation as a surrogate of fracture toughness // JBMR Plus. 2024. Vol. 8, N. 2. P. ziad012. doi: 10.1093/jbmrpl/ziad012
  5. Rosenberg J.L., Woolley W., Elnunu I., et al. Effect of non-enzymatic glycation on collagen nanoscale mechanisms in diabetic and age-related bone fragility // Biocell. 2023 Vol. 47, N. 7. P. 1651–1659. doi: 10.32604/biocell.2023.028014
  6. Papastavrou A., Schmidt I., Deng K., Steinmann P. On age-dependent bone remodeling // J Biomech. 2020. Vol. 103. P. 109701. doi: 10.1016/j.jbiomech.2020.109701
  7. Zimmermann E.A., Schaible E., Bale H., et al. Age-related changes in the plasticity and toughness of human cortical bone at multiple length scales // Proc Natl Acad Sci USA. 2011. Vol. 108. P. 14416–14421. doi: 10.1073/pnas.1107966108
  8. Morgan E.F., Unnikrisnan G.U., Hussein A.I. Bone mechanical properties in healthy and diseased states // Annu Rev Biomed Eng. 2018. Vol. 20 P. 119–143. doi: 10.1146/annurevbioeng-062117-121139
  9. Koester K., Barth H., Ritchie R. Effect of aging on the transverse toughness of human cortical bone: Evaluation by R-curves // J Mech Beh Biomed Materials. 2011. Vol. 4. P. 1504–1513. doi: 10.1016/j.jmbbm.2011.05.020
  10. Garnero P. The contribution of collagen crosslinks to bone strength // Bonekey Rep. 2012. Vol. 182. P. 10. doi: 1038/bonekey.2012.182
  11. Zimmermann E.A., Schaible E., Gludovatz B., et al. Intrinsic mechanical behavior of femoral cortical bone in young, osteoporotic and bisphosphonate-treated individuals in low-and high energy fracture conditions // Sci Rep. 2016. P. 1–12. doi: 10.1038/srep21072
  12. Burr D.B. Changes in bone matrix properties with aging // Bone. 2019. Vol. 120. P. 85–93. doi: 10.1016/j.bone.2018.10.010
  13. Liu H., Jiang H., Liu X., Wang X. Physicochemical understanding of biomineralization by molecular vibrational spectroscopy: From mechanism to nature // Exploration (Beijing). 2023. Vol. 3, N. 6. P. 20230033. doi: 10.1002/EXP.20230033
  14. Pienkowski D., Wood C.L., Malluche H.H. Trabecular bone microcrack accumulation in patients treated with bisphosphonates for durations up to 16 years // J Orthop Res. 2023. Vol. 41, N. 5. P. 1033–1039. doi: 10.1002/jor.25441
  15. Wang X., Hua R., Ahsan A., et al. Age-related deterioration of bone toughness is related to diminishing amount of matrix glycosaminoglycans (Gags) // JBMR. 2018. Vol. 2. P. 164–173. doi: 10.1002/jbm4.10030
  16. Poundarik A.A., Boskey A., Gundberg C., Vashishth D. Biomolecular regulation, composition and nanoarchitecture of bone mineral // Sci Rep. 2018. Vol. 8. P. 1191. doi: 10.1038/s41598-018-19253-w
  17. Qin L., Liu W., Cao H., Xiao G. Molecular mechanosensors in osteocytes // Bone Res. 2020. Vol. 8. P. 23. doi: 10.1038/s41413-020-0099-y
  18. Lai P., Song Q., Yang C., et al. Loss of Rictor with aging in osteoblasts promotes age-related bone loss // Cell Death Dis. 2016. Vol. 7, N. 10. P. e2408. doi: 10.1038/cddis.2016.249
  19. Creecy A., Damrath J.G., Wallace J.M. Control of bone matrix properties by osteocytes // Front Endocrinol (Lausanne). 2021. Vol. 11. P. 578477. doi: 10.3389/fendo.2020.578477
  20. Zhang C., Xu S., Zhang S., et al. Ageing characteristics of bone indicated by transcriptomic and exosomal proteomic analysis of cortical bone cells // J Orthop Surg Res. 2019. Vol. 14, N. 1. P. 129. doi: 10.1186/s13018-019-1163-4
  21. Siddiqui J.A., Partridge N.C. Physiological bone remodeling: systemic regulation and growth factor involvement // Physiology (Bethesda). 2016. Vol. 31, N. 3. P. 233–245. doi: 10.1152/physiol.00061.2014
  22. Šromová V., Sobola D., Kaspar P. A brief review of bone cell function and importance // Cells. 2023. Vol. 12, N. 21. P. 2576. doi: 10.3390/cells12212576
  23. Katsimbri P. The biology of normal bone remodeling // Eur J Cancer Care (Engl). 2017. Vol. 26, N. 6. Р. 128–132. doi: 10.1111/ecc.12740
  24. Forte Y.S., Renovato-Martins M., Barja-Fidalgo C. Cellular and molecular mechanisms associating obesity to bone loss // Cells. 2023. Vol. 12, N. 4. P. 521. doi: 10.3390/cells12040521
  25. Rowe P., Koller A., Sharma S. Physiology, bone remodeling. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2024. PMID: 29763038.
  26. Almeida M. Aging mechanisms in bone // Bonekey Rep. 2012. Vol. 1. P. 102. doi: 10.1038/bonekey.2012.102
  27. Guyan F., Gianduzzo E., Waltenspül M., et al. Cortical thickness index and canal calcar ratio: A comparison of proximal femoral fractures and non-fractured femora in octogenarians to centenarians // J Clin Med. 2024. Vol. 13, N. 4. P. 981. doi: 10.3390/jcm13040981
  28. Chan C.K.F., Gulati G.S., Sinha R., et al. Identification of the human skeletal stem cell // Cell. 2018. Vol. 175, N. 1. P. 43–56.e21. doi: 10.1016/j.cell.2018.07.029
  29. Cardoneanu A., Rezus C., Tamba B.I., Rezus E. Bone cells metabolic changes induced by ageing // Subcell Biochem. 2023. Vol. 103. P. 13–29. doi: 10.1007/978-3-031-26576-1_2
  30. Paccou J., Penel G., Chauveau C., et al. Marrow adiposity and bone: Review of clinical implications // Bone. 2019. Vol. 118. P. 8–15. doi: 10.1016/j.bone.2018.02.008
  31. Qadir A., Liang S., Wu Z., et al. Senile osteoporosis: the involvement of differentiation and senescence of bone marrow stromal cells // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21. P. 349. doi: 10.3390/ijms21010349
  32. Al Saedi A., Bermeo S., Plotkin L., et al. Mechanisms of palmitate-induced lipotoxicity in osteocytes // Bone. 2019. Vol. 127. P. 353–359. doi: 10.1016/j.bone.2019.06.016
  33. Yu B., Huo L., Liu Y., et al. PGC-1α controls skeletal stem cell fate and bone-fat balance in osteoporosis and skeletal aging by inducing TAZ // Cell Stem Cell. 2018. Vol. 23. P. 615–623. doi: 10.1016/j.stem.2018.09.001
  34. Wang H., Chen Q., Lee S.H., et al. Impairment of osteoblast differentiation due to proliferation-independent telomere dysfunction in mouse models of accelerated aging // Aging Cell. 2012. Vol. 11. P. 704–713. doi: 10.1111/j.1474-9726.2012.00838.x
  35. Hoover M.Y., Ambrosi T.H., Steininger H.M., et al. Purification and functional characterization of novel human skeletal stem cell lineages // Nat Protoc. 2023. Vol. 18, N. 7. P. 2256–2282. doi: 10.1038/s41596-023-00836-5
  36. Tjempakasari A., Suroto H., Santoso D. Mesenchymal stem cell senescence and osteogenesis // Medicina (Kaunas). 2021. Vol. 58, N. 1. P. 61. doi: 10.3390/medicina58010061
  37. Li W., Jiang W.S., Su Y.R., et al. PINK1/Parkin-mediated mitophagy inhibits osteoblast apoptosis induced by advanced oxidation protein products // Cell Death Dis. 2023. Vol. 14, N. 2. P. 88. doi: 10.1038/s41419-023-05595-5
  38. Palumbo C., Ferretti M. The osteocyte: from “prisoner” to “orchestrator” // J Funct Morphol Kinesiol. 2021. Vol. 6, N. 1. P. 28. doi: 10.3390/jfmk6010028
  39. Ferretti M., Palumbo C. Static osteogenesis versus dynamic osteogenesis: A comparison between two different types of bone formation // Applied Sciences. 2021. Vol. 11, N. 5. P. 2025. doi: 10.3390/app11052025
  40. Tresguerres F.G.F., Torres J., López-Quiles J., et al. The osteocyte: A multifunctional cell within the bone // Ann Anat. 2020. Vol. 227. P. 151422. doi: 10.1016/j.aanat.2019.151422
  41. Corrado A., Cici D., Rotondo C., et al. Molecular basis of bone aging // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21, N. 10. P. 3679. doi: 10.3390/ijms21103679
  42. Dallas S.L., Prideaux M., Bonewald L.F. The osteocyte: An endocrine cell and more // Endocr Rev. 2013. Vol. 34, N. 5. P. 658–690. doi: 10.1210/er.2012-1026
  43. Kitase Y., Prideaux M. Targeting osteocytes vs osteoblasts // Bone. 2023. Vol. 170. P. 116724. doi: 10.1016/j.bone.2023.116724
  44. Tsourdi E., Jähn K., Rauner M., et al. Physiological and pathological osteocytic osteolysis // J Musculoskelet Neuronal Interact. 2018. Vol. 18, N. 3. P. 292–303. PMID: 30179206
  45. Kogawa M., Wijenayak A.R., Ormsby R., et al. Sclerostin regulates release of bone mineral by osteocytes by induction of carbonic anhydrase 2 // J Bone Miner Res. 2013. Vol. 28. P. 2436–2448. doi: 10.1002/jbmr.2003
  46. Shiflett L.A., Tiede-Lewis L.M., Xie Y., et al. Collagen dynamics during the process of osteocyte embedding and mineralization // Front Cell Dev Biol. 2019. Vol. 7. P. 178. doi: 10.3389/fcell.2019.00178
  47. Cui J., Shibata Y., Zhu T., et al. Osteocytes in bone aging: Advances, challenges, and future perspectives // Ageing Res Rev. 2022. Vol. 77. P. 101608. doi: 10.1016/j.arr.2022.101608
  48. Milovanovic P., Busse B. Phenomenon of osteocyte lacunar mineralization: Indicator of former osteocyte death and a novel marker of impaired bone quality? // Endocr Connect. 2020. Vol. 9, N. 4. Р. R70–R80. doi: 10.1530/EC-19-0531
  49. Zhu C., Shen S., Zhang S., et al. Autophagy in bone remodeling: A regulator of oxidative stress // Front Endocrinol (Lausanne). 2022. Vol. 13. P. 898634. doi: 10.3389/fendo.2022.898634
  50. Plotkin L.I. Apoptotic osteocytes and the control of targeted bone resorption // Curr Osteoporos Rep. 2014. Vol. 12. P. 121–126. doi: 10.1007/s11914-014-0194-3
  51. Daponte V., Henke K., Drissi H. Current perspectives on the multiple roles of osteoclasts: Mechanisms of osteoclast-osteoblast communication and potential clinical implications // Elife. 2024. Vol. 13. P. e95083. doi: 10.7554/eLife.95083
  52. Boyce B.F. Advances in the regulation of osteoclasts and osteoclast functions // J Dent Res. 2013. Vol. 92, N. 10. P. 860–867. doi: 10.1177/0022034513500306
  53. Teti A. Mechanisms of osteoclast-dependent bone formation // Bonekey Rep. 2013. Vol. 2. P. 449. doi: 10.1038/bonekey.2013.183
  54. Borggaard X.G., Nielsen M.H., Delaisse J.M., et al. Spatial organization of osteoclastic coupling factors and their receptors at human bone remodeling sites // Front Mol Biosci. 2022. Vol. 9. P. 896841. doi: 10.3389/fmolb.2022.896841
  55. Кабалык М.А. Биомаркёры и участники ремоделирования субхондральной кости при остеоартрозе // Тихоокеанский медицинский журнал. 2017. № 1. С. 36–41. doi: 10.17238/PmJ1609-1175.2017.1.37-41
  56. Sautchuk Jr.R., Eliseev R.A. Cell energy metabolism and bone formation // Bone Rep. 2022. Vol. 16. P. 101594. doi: 10.1016/j.bonr.2022.101594
  57. Omi M., Mishina Y. Roles of osteoclasts in alveolar bone remodeling // Genesis. 2022. Vol. 60, N. 8–9. P. e23490. doi: 10.1002/dvg.23490
  58. Yao Z., Getting S.J., Locke I.C. Regulation of TNF-induced osteoclast differentiation // Cells. 2021. Vol. 11, N. 1. P. 132. doi: 10.3390/cells11010132
  59. Wang X., Yamauchi K., Mitsunaga T. A review on osteoclast diseases and osteoclastogenesis inhibitors recently developed from natural resources // Fitoterapia. 2020. Vol. 142. P. 104482. doi: 10.1016/j.fitote.2020.104482
  60. Marques-Carvalho A., Kim H.N., Almeida M. The role of reactive oxygen species in bone cell physiology and pathophysiology // Bone Rep. 2023. Vol. 19. P. 101664. doi: 10.1016/j.bonr.2023.101664

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Фазы цикла ремоделирования кости

Скачать (254KB)
3. Рис. 2. Основные изменения клеток костной ткани, происходящие в пожилом возрасте; АТФ — аденозинтрифосфат

Скачать (257KB)

© 2024 Эко-Вектор





Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах