Клеточные механизмы возраст-зависимого ремоделирования костной ткани
- Авторы: Плехова Н.Г.1, Криволуцкая П.А.1, Черненко И.Н.1
-
Учреждения:
- Тихоокеанский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 105, № 4 (2024)
- Страницы: 648-660
- Тип: Обзоры
- URL: https://journals.rcsi.science/kazanmedj/article/view/263240
- DOI: https://doi.org/10.17816/KMJ632264
- ID: 263240
Цитировать
Аннотация
Структурная целостность скелета обеспечена постоянным ремоделированием костной ткани, которое основано на функционировании и взаимодействии клеток остеолитических (остеокласты) и формирующих костную ткань (остеобласты/остеоциты). Несмотря на общее понимание, что степень минерализации костного матрикса определяет хрупкость скелета, на настоящий момент недостаточно информации о его возрастных изменениях, связанных с функционированием данных клеток. Цель обзора — оценка существующих данных о возрастных изменениях кости, связанных с функциональным состоянием мезенхимных стволовых клеток, остеобластов/остеоцитов и остеокластов. Критерии включения: рандомизированные или нерандомизированные контролируемые исследования, изучающие возраст-зависимое изменение кости. Поиск исследований в области состояния костной ткани осуществляли в электронных научных базах Google Scholar, Medline, PubMed, Scopus, Web of Science и Cochrane Library по ключевым словам и их сочетаниям, используя программу AMSTAR 2. Отбор публикаций (из 680 включено 59) производили случайным образом, после чего независимо три автора давали оценку их методологического качества. Основной патогенетический механизм, участвующий в потере костной массы с возрастом, — снижение образования остеобластов с нарушением их способности к остеогенной дифференцировке. Остеоциты в пожилом возрасте подвергаются чрезмерному и продолжительному стрессу, который вызывает несбалансированную аутофагию и апоптоз, что ведёт к изменению их способности к депонированию и минерализации внеклеточного органического матрикса. С возрастом происходит ускоренный остеокластогенез, опосредованный остеобластами, что приводит к усилению экспрессии определённых рецепторов на уровне костных стромальных клеток и остеобластов. Приведённые литературные данные демонстрируют убедительные доказательства того, что усиление резорбции кости вследствие сложных метаболических процессов с возрастом происходит на фоне повышения количества и активности остеокластов, апоптоза остеобластов при снижении их метаболической активности, а также перераспределения остеогенной дифференцировки мезенхимных стволовых клеток в направлении адипоцитов. Изложенные в обзоре результаты могут быть использованы в качестве основы разработки диагностических критериев для выявления сенильного остеопороза и риска переломов.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Наталья Геннадьевна Плехова
Тихоокеанский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: pl_nat@hotmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8701-7213
SPIN-код: 2685-9578
д-р биол. наук, доц., зав., Междисциплинарный научно-исследовательский центр
Россия, г. ВладивостокПолина Александровна Криволуцкая
Тихоокеанский государственный медицинский университет
Email: vpo12345@mail.ru
ORCID iD: 0009-0002-5900-3938
асп., Междисциплинарный научно-исследовательский центр
Россия, г. ВладивостокИван Николаевич Черненко
Тихоокеанский государственный медицинский университет
Email: chernencrj2010@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5261-810X
SPIN-код: 7872-1554
мл. науч. сотр., Междисциплинарный научно-исследовательский центр
Россия, г. ВладивостокСписок литературы
- Гантман А.А., Горблянский Ю.Ю., Конторович Е.П., Понамарева О.П. Концепция здорового старения на работе // Медицинский вестник Юга России. 2022. Т. 13, № 4. С. 5–13. doi: 10.21886/2219-8075-2022-13-4-5-13
- Fang H., Deng Z., Liu J., et al. The mechanism of bone remodeling after bone aging // Clin Interv Aging. 2022. Vol. 17. P. 405–415. doi: 10.2147/CIA.S349604
- Fernandez-Gonzalez F.J., Canigral A., López-Caballo J.L., et al. Recombinant osteoprotegerin effects during orthodontic movement in a rat model // Eur J Orthodontics. 2016. Vol. 38, N. 4. P. 379–385. doi: 10.1093/ejo/cjv056
- Jahani B., Vaidya R., Jin J.M., et al. Assessment of bovine cortical bone fracture behavior using impact microindentation as a surrogate of fracture toughness // JBMR Plus. 2024. Vol. 8, N. 2. P. ziad012. doi: 10.1093/jbmrpl/ziad012
- Rosenberg J.L., Woolley W., Elnunu I., et al. Effect of non-enzymatic glycation on collagen nanoscale mechanisms in diabetic and age-related bone fragility // Biocell. 2023 Vol. 47, N. 7. P. 1651–1659. doi: 10.32604/biocell.2023.028014
- Papastavrou A., Schmidt I., Deng K., Steinmann P. On age-dependent bone remodeling // J Biomech. 2020. Vol. 103. P. 109701. doi: 10.1016/j.jbiomech.2020.109701
- Zimmermann E.A., Schaible E., Bale H., et al. Age-related changes in the plasticity and toughness of human cortical bone at multiple length scales // Proc Natl Acad Sci USA. 2011. Vol. 108. P. 14416–14421. doi: 10.1073/pnas.1107966108
- Morgan E.F., Unnikrisnan G.U., Hussein A.I. Bone mechanical properties in healthy and diseased states // Annu Rev Biomed Eng. 2018. Vol. 20 P. 119–143. doi: 10.1146/annurevbioeng-062117-121139
- Koester K., Barth H., Ritchie R. Effect of aging on the transverse toughness of human cortical bone: Evaluation by R-curves // J Mech Beh Biomed Materials. 2011. Vol. 4. P. 1504–1513. doi: 10.1016/j.jmbbm.2011.05.020
- Garnero P. The contribution of collagen crosslinks to bone strength // Bonekey Rep. 2012. Vol. 182. P. 10. doi: 1038/bonekey.2012.182
- Zimmermann E.A., Schaible E., Gludovatz B., et al. Intrinsic mechanical behavior of femoral cortical bone in young, osteoporotic and bisphosphonate-treated individuals in low-and high energy fracture conditions // Sci Rep. 2016. P. 1–12. doi: 10.1038/srep21072
- Burr D.B. Changes in bone matrix properties with aging // Bone. 2019. Vol. 120. P. 85–93. doi: 10.1016/j.bone.2018.10.010
- Liu H., Jiang H., Liu X., Wang X. Physicochemical understanding of biomineralization by molecular vibrational spectroscopy: From mechanism to nature // Exploration (Beijing). 2023. Vol. 3, N. 6. P. 20230033. doi: 10.1002/EXP.20230033
- Pienkowski D., Wood C.L., Malluche H.H. Trabecular bone microcrack accumulation in patients treated with bisphosphonates for durations up to 16 years // J Orthop Res. 2023. Vol. 41, N. 5. P. 1033–1039. doi: 10.1002/jor.25441
- Wang X., Hua R., Ahsan A., et al. Age-related deterioration of bone toughness is related to diminishing amount of matrix glycosaminoglycans (Gags) // JBMR. 2018. Vol. 2. P. 164–173. doi: 10.1002/jbm4.10030
- Poundarik A.A., Boskey A., Gundberg C., Vashishth D. Biomolecular regulation, composition and nanoarchitecture of bone mineral // Sci Rep. 2018. Vol. 8. P. 1191. doi: 10.1038/s41598-018-19253-w
- Qin L., Liu W., Cao H., Xiao G. Molecular mechanosensors in osteocytes // Bone Res. 2020. Vol. 8. P. 23. doi: 10.1038/s41413-020-0099-y
- Lai P., Song Q., Yang C., et al. Loss of Rictor with aging in osteoblasts promotes age-related bone loss // Cell Death Dis. 2016. Vol. 7, N. 10. P. e2408. doi: 10.1038/cddis.2016.249
- Creecy A., Damrath J.G., Wallace J.M. Control of bone matrix properties by osteocytes // Front Endocrinol (Lausanne). 2021. Vol. 11. P. 578477. doi: 10.3389/fendo.2020.578477
- Zhang C., Xu S., Zhang S., et al. Ageing characteristics of bone indicated by transcriptomic and exosomal proteomic analysis of cortical bone cells // J Orthop Surg Res. 2019. Vol. 14, N. 1. P. 129. doi: 10.1186/s13018-019-1163-4
- Siddiqui J.A., Partridge N.C. Physiological bone remodeling: systemic regulation and growth factor involvement // Physiology (Bethesda). 2016. Vol. 31, N. 3. P. 233–245. doi: 10.1152/physiol.00061.2014
- Šromová V., Sobola D., Kaspar P. A brief review of bone cell function and importance // Cells. 2023. Vol. 12, N. 21. P. 2576. doi: 10.3390/cells12212576
- Katsimbri P. The biology of normal bone remodeling // Eur J Cancer Care (Engl). 2017. Vol. 26, N. 6. Р. 128–132. doi: 10.1111/ecc.12740
- Forte Y.S., Renovato-Martins M., Barja-Fidalgo C. Cellular and molecular mechanisms associating obesity to bone loss // Cells. 2023. Vol. 12, N. 4. P. 521. doi: 10.3390/cells12040521
- Rowe P., Koller A., Sharma S. Physiology, bone remodeling. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2024. PMID: 29763038.
- Almeida M. Aging mechanisms in bone // Bonekey Rep. 2012. Vol. 1. P. 102. doi: 10.1038/bonekey.2012.102
- Guyan F., Gianduzzo E., Waltenspül M., et al. Cortical thickness index and canal calcar ratio: A comparison of proximal femoral fractures and non-fractured femora in octogenarians to centenarians // J Clin Med. 2024. Vol. 13, N. 4. P. 981. doi: 10.3390/jcm13040981
- Chan C.K.F., Gulati G.S., Sinha R., et al. Identification of the human skeletal stem cell // Cell. 2018. Vol. 175, N. 1. P. 43–56.e21. doi: 10.1016/j.cell.2018.07.029
- Cardoneanu A., Rezus C., Tamba B.I., Rezus E. Bone cells metabolic changes induced by ageing // Subcell Biochem. 2023. Vol. 103. P. 13–29. doi: 10.1007/978-3-031-26576-1_2
- Paccou J., Penel G., Chauveau C., et al. Marrow adiposity and bone: Review of clinical implications // Bone. 2019. Vol. 118. P. 8–15. doi: 10.1016/j.bone.2018.02.008
- Qadir A., Liang S., Wu Z., et al. Senile osteoporosis: the involvement of differentiation and senescence of bone marrow stromal cells // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21. P. 349. doi: 10.3390/ijms21010349
- Al Saedi A., Bermeo S., Plotkin L., et al. Mechanisms of palmitate-induced lipotoxicity in osteocytes // Bone. 2019. Vol. 127. P. 353–359. doi: 10.1016/j.bone.2019.06.016
- Yu B., Huo L., Liu Y., et al. PGC-1α controls skeletal stem cell fate and bone-fat balance in osteoporosis and skeletal aging by inducing TAZ // Cell Stem Cell. 2018. Vol. 23. P. 615–623. doi: 10.1016/j.stem.2018.09.001
- Wang H., Chen Q., Lee S.H., et al. Impairment of osteoblast differentiation due to proliferation-independent telomere dysfunction in mouse models of accelerated aging // Aging Cell. 2012. Vol. 11. P. 704–713. doi: 10.1111/j.1474-9726.2012.00838.x
- Hoover M.Y., Ambrosi T.H., Steininger H.M., et al. Purification and functional characterization of novel human skeletal stem cell lineages // Nat Protoc. 2023. Vol. 18, N. 7. P. 2256–2282. doi: 10.1038/s41596-023-00836-5
- Tjempakasari A., Suroto H., Santoso D. Mesenchymal stem cell senescence and osteogenesis // Medicina (Kaunas). 2021. Vol. 58, N. 1. P. 61. doi: 10.3390/medicina58010061
- Li W., Jiang W.S., Su Y.R., et al. PINK1/Parkin-mediated mitophagy inhibits osteoblast apoptosis induced by advanced oxidation protein products // Cell Death Dis. 2023. Vol. 14, N. 2. P. 88. doi: 10.1038/s41419-023-05595-5
- Palumbo C., Ferretti M. The osteocyte: from “prisoner” to “orchestrator” // J Funct Morphol Kinesiol. 2021. Vol. 6, N. 1. P. 28. doi: 10.3390/jfmk6010028
- Ferretti M., Palumbo C. Static osteogenesis versus dynamic osteogenesis: A comparison between two different types of bone formation // Applied Sciences. 2021. Vol. 11, N. 5. P. 2025. doi: 10.3390/app11052025
- Tresguerres F.G.F., Torres J., López-Quiles J., et al. The osteocyte: A multifunctional cell within the bone // Ann Anat. 2020. Vol. 227. P. 151422. doi: 10.1016/j.aanat.2019.151422
- Corrado A., Cici D., Rotondo C., et al. Molecular basis of bone aging // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21, N. 10. P. 3679. doi: 10.3390/ijms21103679
- Dallas S.L., Prideaux M., Bonewald L.F. The osteocyte: An endocrine cell and more // Endocr Rev. 2013. Vol. 34, N. 5. P. 658–690. doi: 10.1210/er.2012-1026
- Kitase Y., Prideaux M. Targeting osteocytes vs osteoblasts // Bone. 2023. Vol. 170. P. 116724. doi: 10.1016/j.bone.2023.116724
- Tsourdi E., Jähn K., Rauner M., et al. Physiological and pathological osteocytic osteolysis // J Musculoskelet Neuronal Interact. 2018. Vol. 18, N. 3. P. 292–303. PMID: 30179206
- Kogawa M., Wijenayak A.R., Ormsby R., et al. Sclerostin regulates release of bone mineral by osteocytes by induction of carbonic anhydrase 2 // J Bone Miner Res. 2013. Vol. 28. P. 2436–2448. doi: 10.1002/jbmr.2003
- Shiflett L.A., Tiede-Lewis L.M., Xie Y., et al. Collagen dynamics during the process of osteocyte embedding and mineralization // Front Cell Dev Biol. 2019. Vol. 7. P. 178. doi: 10.3389/fcell.2019.00178
- Cui J., Shibata Y., Zhu T., et al. Osteocytes in bone aging: Advances, challenges, and future perspectives // Ageing Res Rev. 2022. Vol. 77. P. 101608. doi: 10.1016/j.arr.2022.101608
- Milovanovic P., Busse B. Phenomenon of osteocyte lacunar mineralization: Indicator of former osteocyte death and a novel marker of impaired bone quality? // Endocr Connect. 2020. Vol. 9, N. 4. Р. R70–R80. doi: 10.1530/EC-19-0531
- Zhu C., Shen S., Zhang S., et al. Autophagy in bone remodeling: A regulator of oxidative stress // Front Endocrinol (Lausanne). 2022. Vol. 13. P. 898634. doi: 10.3389/fendo.2022.898634
- Plotkin L.I. Apoptotic osteocytes and the control of targeted bone resorption // Curr Osteoporos Rep. 2014. Vol. 12. P. 121–126. doi: 10.1007/s11914-014-0194-3
- Daponte V., Henke K., Drissi H. Current perspectives on the multiple roles of osteoclasts: Mechanisms of osteoclast-osteoblast communication and potential clinical implications // Elife. 2024. Vol. 13. P. e95083. doi: 10.7554/eLife.95083
- Boyce B.F. Advances in the regulation of osteoclasts and osteoclast functions // J Dent Res. 2013. Vol. 92, N. 10. P. 860–867. doi: 10.1177/0022034513500306
- Teti A. Mechanisms of osteoclast-dependent bone formation // Bonekey Rep. 2013. Vol. 2. P. 449. doi: 10.1038/bonekey.2013.183
- Borggaard X.G., Nielsen M.H., Delaisse J.M., et al. Spatial organization of osteoclastic coupling factors and their receptors at human bone remodeling sites // Front Mol Biosci. 2022. Vol. 9. P. 896841. doi: 10.3389/fmolb.2022.896841
- Кабалык М.А. Биомаркёры и участники ремоделирования субхондральной кости при остеоартрозе // Тихоокеанский медицинский журнал. 2017. № 1. С. 36–41. doi: 10.17238/PmJ1609-1175.2017.1.37-41
- Sautchuk Jr.R., Eliseev R.A. Cell energy metabolism and bone formation // Bone Rep. 2022. Vol. 16. P. 101594. doi: 10.1016/j.bonr.2022.101594
- Omi M., Mishina Y. Roles of osteoclasts in alveolar bone remodeling // Genesis. 2022. Vol. 60, N. 8–9. P. e23490. doi: 10.1002/dvg.23490
- Yao Z., Getting S.J., Locke I.C. Regulation of TNF-induced osteoclast differentiation // Cells. 2021. Vol. 11, N. 1. P. 132. doi: 10.3390/cells11010132
- Wang X., Yamauchi K., Mitsunaga T. A review on osteoclast diseases and osteoclastogenesis inhibitors recently developed from natural resources // Fitoterapia. 2020. Vol. 142. P. 104482. doi: 10.1016/j.fitote.2020.104482
- Marques-Carvalho A., Kim H.N., Almeida M. The role of reactive oxygen species in bone cell physiology and pathophysiology // Bone Rep. 2023. Vol. 19. P. 101664. doi: 10.1016/j.bonr.2023.101664