Морфогенез гравидарной трансформации эндометрия (обзор литературы)
- Авторы: Траль Т.Г.1, Круглова Д.Д.1, Толибова Г.Х.1
-
Учреждения:
- Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
- Выпуск: Том 72, № 5 (2023)
- Страницы: 105-114
- Раздел: Обзоры
- URL: https://journals.rcsi.science/jowd/article/view/255160
- DOI: https://doi.org/10.17816/JOWD531483
- ID: 255160
Цитировать
Аннотация
Гравидарная трансформация эндометрия является завершающим этапом циклической трансформации эндометрия при наступлении беременности. Морфогенез трансформации складывается из четко скоординированных гормонально-рецепторных взаимодействий с участием иммунологических, ангиогенных и апоптотических факторов, необходимых для прогрессирования беременности. Патология этого морфогенеза может быть причиной нарушения имплантации и репродуктивных потерь в ранние сроки гестации, что актуализирует данную проблему как медико-социальную.
Цель обзора — проанализировать данные литературы о морфогенезе трансформации эндометрия в I триместре беременности. Источниками информации были полнотекстовые публикации в свободном доступе из баз данных PubMed и eLibrary, а также российских профильных журналов, выпущенных с 1999 по 2021 г.
Морфогенез трансформации эндометрия в I триместре беременности определяется полноценностью циклической трансформации эндометрия и оптимальным эмбрионально-эндометриальным взаимодействием под влиянием множества факторов. Комплексный подход к изучению основных звеньев морфогенеза гравидарной трансформации эндометрия (стероидогенеза, иммуногенеза, ангиогенеза и апоптоза) позволит выявить молекулярно-структурные механизмы прекращения развития беременности, обусловленные нарушением формирования децидуальной оболочки.
Фундаментальное значение молекулярных механизмов трансформации эндометрия в понимании патогенеза репродуктивных неудач вызывает необходимость исследования морфогенеза трансформации эндометрия в условиях перепрограммирования и ремоделирования при беременности.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Татьяна Георгиевна Траль
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: ttg.tral@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-8948-4811
SPIN-код: 1244-9631
канд. мед. наук
Россия, Санкт-ПетербургДарья Дмитриевна Круглова
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: das5188@mail.ru
Россия, Санкт-Петербург
Гулрухсор Хайбуллоевна Толибова
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Автор, ответственный за переписку.
Email: gulyatolibova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-6216-6220
SPIN-код: 7544-4825
д-р мед. наук
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Фролова Н.И, Белокриницкая Т.Е. Эпигенетические факторы и молекулярные маркеры риска ранних потерь беременности // Гинекология. 2019. Т. 21. № 3. С. 9–16. doi: 10.26442/20795696.2019.4.190523
- Кушубекова А.К., Самигуллина А.Э., Бообекова А.А. Невынашивание беременности: гистологическое исследование соскобов из полости матки // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2019. № 5. С. 66–71. doi: 10.17513/mjpfi.12740
- Popescu F., Jaslow C.R., Kutteh W.H. Recurrent pregnancy loss evaluation combined with 24-chromosome microarray of miscarriage tissue provides a probable or definite cause of pregnancy loss in over 90% of patients // Hum. Reprod. 2018. Vol. 33. No. 4. P. 579–587. doi: 10.1093/humrep/dey021
- Траль Т.Г., Толибова Г.Х., Сердюков С.В., и др. Морфофункциональная оценка причин замершей беременности в первом триместре // Журнал акушерства и женских болезней. 2013. Т. 62. № 3. C. 83–87. doi: 10.17816/JOWD62383-87
- Shaulov T., Sierra S., Sylvestre C. Recurrent implantation failure in IVF: a canadian fertility and andrology society clinical practice guideline // Reprod. Biomedю Online. 2020. Vol. 41. No. 5. Р. 819–833. doi: 10.1016/j.rbmo.2020.08.007
- Ticconi C., Pietropolli A., Di Simone N., et al. Endometrial immune dysfunction in recurrent pregnancy loss // Int. J. Mol. Sci. 2019. Vol. 2. No. 21. doi: 10.3390/ijms20215332
- Фаррахова К.Л. Течение беременности и родов у первородящих женщин старшего репродуктивного возраста // Смоленский медицинский альманах. 2018. № 2. С. 146–147.
- Михалева Л.М., Болтовская М.Н., Михалев С.А., и др. Клинико-морфологические аспекты эндометриальной дисфункции, обусловленной хроническим эндометритом // Архив патологии. 2017. Т. 79. № 6. С. 22–29. doi: 10.17116/patol201779622-29
- Тапильская Н.И., Будиловская О.В., Крысанова А.А., и др. Микробиота эндометрия женщин с хроническим эндометритом и идиопатическим бесплодием // Акушерство и гинекология. 2020. № 4. С. 72–81 doi: 10.18565/aig.2020.4.72-81
- Patel B., Elguero S., Thakore S., et al. Role of nuclear progesterone receptor isoforms in uterine pathophysiology // Hum. Reprod. Update 2015. Vol. 21. Р. 155–173. doi: 10.1093/humupd/dmu056
- Толибова Г.Х. Эндометриальная дисфункция у женщин с бесплодием патогенетические детерминанты и клинико-морфологическая диагностика: дис. … д-ра мед. наук. Санкт-Петербург, 2018 [дата обращения 03.07.2023]. Доступ по ссылке: https://ott.ru/files/news/pg/2018_tolibova/dissertatsiia_tolibovoy.pdf
- Траль Т.Г., Толибова Г.Х. Морфологические и иммуногистохимические особенности неразвивающейся беременности I триместра // Журнал акушерства и женских болезней. 2014. Т. 63. № 4. С. 60–67. doi: 10.17816/JOWD63460-68
- Milne S.A., Henderson T.A., Kelly R.W., et al. Leukocyte populations and steroid receptor expression in human first-trimester decidua; regulation by antiprogestin and prostaglandin E analog // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2005. Vol. 90. No. 7. Р. 4315–4321. doi: 10.1210/jc.2004-2338
- Ранние сроки беременности / под ред. В.Е. Радзинского, А.А. Оразмурадова. Москва: Status Praesens, 2009.
- Okada H., Tsuzuki T., Murata H. Decidualization of the human endometrium // Reprod. Med. Biol. 2018. Vol. 17. Р. 220–227. doi: 10.1002/rmb2.12088
- Mori M., Bogdan A., Balassa T., et al. The decidua-the maternal bed embracing the embryo-maintains the pregnancy // Semin. Immunopathol. 2016. Vol. 38. No. 6. Р. 635–649. doi: 10.1007/s00281-016-0574-0
- Coulam C. What about superfertility, decidualization, and natural selection? // J. Assist. Reprod. Genet. 2016. Vol. 33. Р. 577–580. doi: 10.1007/s10815-016-0658-8
- Chen G.T., Getsios S., MacCalman C.D. Cadherin-11 is a hormonally regulated cellular marker of decidualization in human endometrial stromal cells // Mol. Reprod. Dev. 1999. Vol. 52. No. 2. Р. 158–165. doi: 10.1002/(SICI)1098-2795(199902)52:2<158::AID-MRD6>3.0.CO;2-3
- Sternberg A.K., Buck V.U., Classen-Linke I., et al. How mechanical forces change the human endometrium during the menstrual cycle in preparation for embryo implantation // Cells. 2021. Vol. 10. No. 8. doi: 10.3390/cells10082008
- Vinketova K. Mourdjeva M., Oreshkova T. Human decidual stromal cells as a component of the implantation niche and a modulator of maternal immunity // J. Pregnancy. 2016. Vol. 2016. doi: 10.1155/2016/8689436
- Ng S.W., Norwitz G.A., Pavlicev M., et al. Endometrial decidualization: the primary driver of pregnancy health // Int. J. Mol. Sci. 2020. Vol. 2. No. 11. doi: 10.3390/ijms21114092
- Nakagawa K., Kwak-Kim J., Ota K., et al. Immunosuppression with tacrolimus improved reproductive outcome of women with repeated implantation failure and elevated peripheral blood TH1/TH2 cell ratios // Am. J. Reprod. Immunol. 2015. Vol. 73. Р. 353–361. DOI: DOI.ORG/10.1111/aji.12338
- Ander S.E., Diamond M.S., Coyne C.B. Immune responses at the maternal-fetal interface // Sci. Immunol. 2019. Vol. 4. doi: 10.1126/sciimmunol.aat6114
- Salker M.S., Nautiyal J., Steel J.H., et al. Disordered IL-33/ST2 activation in decidualizing stromal cells prolongs uterine receptivity in women with recurrent pregnancy loss // PLoS One. 2012. Vol. 7. No. 12. doi: 10.1371/journal.pone.0052252
- Santos E.D., Moindjie H., Sérazin V., et al. Preimplantation factor modulates trophoblastic invasion throughout the decidualization of human endometrial stromal cells // Reprod. Biol. Endocrinol. 2021. Vol. 19. No. 1. doi: 10.1186/s12958-021-00774-5
- Balassa T., Berta G., Jakab L., et al. The effect of the Progesterone-Induced Blocking Factor (PIBF) on E-cadherin expression, cell motility and invasion of primary tumour cell lines // J. Reprod. Immunol. 2018. Vol. 125. Р. 8–15. doi: 10.1016/j.jri.2017.10.047
- Mulac-Jericevic B., Sucurovic S., Gulic T., et al. The involvement of the progesterone receptor in PIBF and Gal-1 expression in the mouse endometrium // Am. J. Reprod. Immunol. 2019. Vol. 81. doi: 10.1111/aji.13104
- Szekeres-Bartho J. The role of progesteronein feto-maternal immunological cross talk // Med. Princ. Pract. 2018. Vol. 27. No. 4. Р. 301–307. doi: 10.1159/000491576
- Quinn K.E., Ashley A.K., Reynolds L.P., et al. Activation of the CXCL12/CXCR4 signaling axis may drive vascularization of the ovine placenta // Domest. Anim. Endocrinol 2014. Vol. 47. Р. 11–21. doi: 10.1016/j.domaniend.2013.12.004
- Lu J., Zhou W.H., Ren L., et al. CXCR4, CXCR7 and CXCL12 are associated with trophoblastic cells apoptosis and linked to pathophysiology of severe preeclampsia // Exp. Mol. Pathol. 2016. Vol. 100. No. 1. Р. 184–191. doi: 10.1016/j.yexmp.2015.12.013
- Park D.W., Lee H.J., Park C.W., et al. Peripheral blood NK cells reflect changes in decidual NK cells in women with recurrent miscarriages // Am. J. Reprod. Immunol. 2010. Vol. 63. No. 2. Р. 173–180. doi: 10.1111/j.1600-0897.2009.00777.x
- Windsperger K., Dekan S., Pils S., et al. Extravillous trophoblast invasion of venous as well as lymphatic vessels is altered in idiopathic, recurrent, spontaneous abortions // Hum. Reprod. (Oxford, England). 2017. Vol. 32. No. 6. P. 1208–1217. doi: 10.1093/humrep/dex058
- Jiang S., Du L., Liu J., et al. Conditioned medium from primary cytotrophoblasts, primary placenta-derived mesenchymal stem cells, or sub-cultured placental tissue promoted HUVEC angiogenesis in vitro // Stem. Cell Res. Ther. 2021. Vol. 12. No. 1. doi: 10.1186/s13287-021-02192-1
- Kuo C.Y., Shevchuk M., Opfermann J., et al. Trophoblast–endothelium signaling involves angiogenesis and apoptosis in a dynamic bioprinted placenta model // Biotechnol. Bioeng. 2019. Vol. 16. Р. 181–192. doi: 10.1002/bit.26850
- Moser G., Windsperger K., Pollheimer J., et al. Human trophoblast invasion: new and unexpected routes and functions // Histochem. Cell Biol. 2018. Vol. 150. No. 4. Р. 361–370. doi: 10.1007/s00418-018-1699-0
- Huang Q., Ding J., Gong M., et al. Effect of miR-30e regulating NK cell activities on immune tolerance of maternal-fetal interface by targeting PRF1 // Biomed. Pharmacother. 2019. Vol. 109. Р. 1478–1487. doi: 10.1016/j.biopha.2018.09.172
- Chen X., Liu Y., Cheung W.C., et al. Increased expression of angiogenic cytokines in CD56+ uterine natural killer cells from women with recurrent miscarriage // Cytokine. 2018. Vol. 110. Р. 272–276. doi: 10.1016/j.cyto.2018.01.013
- Moser G., Weiss G., Sundl M., et al. Extravillous trophoblasts invade more than uterine arteries: evidence for the invasion of uterine veins // Histochem. Cell Biol. 2017. Vol. 147. No. 3. Р. 353–366. doi: 10.1007/s00418-016-1509-5
- Huhn O., Zhao X., Esposito L., et al. How do uterine natural killer and innate lymphoid cells contribute to successful pregnancy? // Front. Immunol. 2021. Vol. 21. No. 12. doi: 10.3389/fimmu.2021.607669
- Huppertz B., Weiss G., Moser G. Trophoblast invasion and oxygenation of the placenta: Measurements versus presumptions // J. Reprod. Immunol. 2014. Vol. 101–102. Р. 74–79. doi: 10.1016/j.jri.2013.04.003
- Burton G.J., Jauniaux E. Placentation in the human and higher primate // Adv. Anat. Embryol. Cell Biol. 2021. Vol. 234. Р. 223–254. doi: 10.1007/978-3-030-77360-1_11
- Hussain T., Murtaza G., Metwally E., et al. The role of oxidative stress and antioxidant balance in pregnancy // Mediators Inflamm. 2021. Vol. 2021. doi: 10.1155/2021/9962860
- Sidney L.E., Branch M.J., Dunphy S.E., et al. Concise review: evidence for CD34 as a common marker for diverse progenitors // Stem. Cells. 2014. Vol. 32. No. 6. Р. 1380–1309. doi: 10.1002/stem.1661
- Plaisier M., Dennert I., Rost E., et al. Decidual vascularization and the expression of angiogenic growth factors and proteases in first trimester spontaneous abortions // Hum. Reprod. 2009. Vol. 24. No. 1. Р. 185–97. doi: 10.1093/humrep/den296
- Matsumoto L., Hirota Y., Saito-Fujita T., et al. HIF2α in the uterine stroma permits embryo invasion and luminal epithelium detachment //J. Clin. Investig. 2018. Vol. 128. Р. 3186–3197. doi: 10.1172/JCI98931
- Babawale M.O., Mobberley M.A., Ryder T.A., et al. Ultrastructure of the early human feto-maternal interface co-cultured in vitro // Hum. Reprod. 2002. Vol. 17. Р. 1351–1357. doi: 10.1093/humrep/17.5.1351
- Riddell M.R., Winkler-Lowen B., Guilbert L.J. The contribution of apoptosis-inducing factor (AIF) to villous trophoblast differentiation // Placenta. 2012. Vol. 33. No. 2. Р. 88–93. doi: 10.1016/j.placenta.2011.11.008
- Hempstock J., Jauniaux E., Greenwold N., et al. The contribution of placental oxidative stress to early pregnancy failure // Hum. Pathol. 2003. Vol. 34. doi: 10.1016/j.humpath.2003.08.006
- He H., Zhang H., Li Q., et al. Low oxygen concentrations improve yak oocyte maturation and enhance the developmental competence of preimplantation embryos // Theriogenology. 2020. Vol. 156. Р. 46–58. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.06.022
- Ramos-Ibeas P., Heras S., Gómez-Redondo I., et al. Embryo responses to stress induced by assisted reproductive technologies // Mol. Reprod. 2019. Vol. 86. Р. 1292–1306. doi: 10.1002/mrd.23119
- Адамян Л.В., Артымук Н.В., Белокриницкая Т.Е., и др. Выкидыш в ранние сроки беременности: диагностика и тактика ведения. Клинические рекомендации (протокол лечения). 2016 [дата обращения 06.04.2023]. Доступ по ссылке: http://uklcrb.ru/doc/010419_1504.pdf
- Траль Т.Г., Толибова Г.Х. Морфологические варианты гравидарной трансформации эндометрия при неразвивающейся беременности после экстракорпорального оплодотворения // Клиническая и экспериментальная морфология. 2021. Т. 10. № 4S. С. 40–49. doi: 10.31088/CEM2021.10.S4.42-51